Summary

合理化単細胞 TCR 分離し体外の Retroviral ベクトルの生成、人間 Tcr の生体内で発現

Published: September 10, 2017
doi:

Summary

単一のセル対人間 TCR アルファとベータ鎖シーケンスで現在のプロトコル結合合理化レトロウイルスベクターの in vitroin vivoの TCR 式と互換性の世代です。

Abstract

1 つの T 細胞からペアの T 細胞受容体 (TCR) アルファとベータ鎖の配列のためのいくつかの方法が開発されているが、どれもはこれまで TCR ヘテロの下流に資する生体内機能解析をされています。人間の TCR アルファとベータ鎖の可変領域を全体にまたがる PCR の製品の結果を持つ多重ネストの 2 段階 PCR に基づく改良されたプロトコルを開発しました。ユニークな制限のサイトを識別し、PCR のプライマーに組み込む、によって行った PCR の製品テンプレート レトロウイルスベクターに直接補助的クローニングと互換性があります。結果としてレトロ ウイルス構築キメラ人間/TCR を持つマウス マウス細胞やマウスモデルの生体内での機能はマウスの細胞内ドメインをエンコードします。全体的に、ここで説明されているプロトコルは生体外でそして生体内の TCR 式のレトロウイルスベクター容易に適応できるの合理化された世代対単一細胞 TCR アルファとベータ チェーン識別を組み合わせたものです。ビデオとそれに伴う材料は、重要なステップは続くと潜在的な落とし穴を回避できるように、単一セル PCR の非常に詳細な説明を与えるに設計されています。また、発現ベクターを生成に必要なクローン作成の手順の詳細な説明を提供します。一度マスター、TCR 式に並べ替え 1 つのセルから全体の手順は 2 週間の短期間で実行でした。

Introduction

T 細胞受容体 (TCR) は、開発、定常状態/恒常性やその周囲1,2,3の抗原的な刺激の中に T 細胞の運命の決定を決定します。深い技術の最近の展開は、抗原特異的 T 細胞応答内以前過小評価 TCR の多様性を発見しました。TCR の多様性では、機能的な T 細胞の反応の可能性を示唆しています。実験的システムと生体内でのモデル選択の後続機能解析のために利用に対応する TCR 機能アッセイと TCR シーケンス レパートリー解析を統合するためにシーケンスのアプローチを設計する必要があります。Tcr。人間の TCR シーケンスの分離のための効率的な方法を開発し、HLA ヒト化マウス4TCR 式と互換性のあるキメラマウス人間 TCR テンプレートのベクターへのクローニングはサブを合理化します。ヘテロ二量体型 Tcr の対応するアルファとベータ鎖の分離には、単一のセルから両方の鎖の PCR 増幅が必要です。とはいえ、いくつかの単一セル TCR のクローニング プロトコルが開発され利用どれもこれまでのところされている高スループット合理化された直接クローニングによる未知の Vα/Vβ Tcr の retroviral ベクトル再式の生体内での必要に簡単に互換性のあります。 4,5,6,7。以前の研究は、シーケンスを外挿法で推定したり、全体 TCR シーケンス4,5,6を増幅するための十分な TCR の限られた部分を選択的に増幅する 2 つの主要なアプローチを活用して,7します。 最初のアプローチを介して TCR 系列の下流の機能解析が必要です高価なインシリコアセンブリおよびde novoの建設、TCR。2 番目のアプローチでは、TCR の完全な配列を提供しています、人間の一定の領域はマウス モデルでクローンの Tcr の体内式と互換性ありません。我々 のアプローチは生体内機能解析 Tcr のマウスのモデルに対応する設計します。我々 は、効率的で合理化された単一電池直接補助的クローニング PCR のフラグメントのテンプレートの発現ベクターには、PCR のプロトコルを開発しました。

我々 のアプローチは、2 つの手順で実行される高感度多重入れ子に PCR 反応を利用しています。最初の多重反応 40 プライマーすべての V β 鎖の特定のプールと 44 プライマー シーケンス (表 1) の事前知識がなくて TCR アルファまたは TCR β を増幅するための V α 鎖すべての特定のプールをステップします。前方のプライマーが 5′ の PCR の製品に組み込まれているアダプターのシーケンスです。逆のプライマーは、TCR の一定した領域に基づいています。もとは、ユニークな制限のサイト人間変数またはジャンクション TCR 地域から欠席し、新しく再設計された TCRα と TCRβ のプライマー (図 1) にこれらを組み込みます。2 番目の入れ子になった反応アダプター シーケンスの特定のプライマーおよび一定した領域内で入れ子になった逆プライマーを使用して高められた特定性 (表 1、図 1) と TCR チェーンをさらに増幅します。単一細胞の分離後、2 つの PCR のラウンド (Vα と Vβ の両方のプライマーのプールと 2 番目アダプター プライマーの最初の反応) 直接補助的クローン作成できるテンプレート retroviral ベクトルに PCR の製品の結果します。1 つのオープンリーディング フレーム (ORF)、’自己切断’ 蛋白質シーケンスによって接続されているマウスの一定領域と組み合わせて人間の可変領域で、TCR の最終的な構成要素をエンコード P2A (hVα-mCα-P2A-hVβ-mCβ)8。P2A シーケンスは、複数のシステムで使用されている、Tcr8,9,10,11の表現のために具体的には広範囲にテストされています。とはいえ、P2A シーケンスの残物のほとんどに接続されている後の翻訳ベータ鎖信号シーケンスが追加プロリン、この変更適用範囲が広いリンカーによって接続されているアルファ鎖の C 末端に TCR 機能に有害な影響がないです。マウスの一定の領域が下流のシグナル伝達コンポーネント潜在的な変更された相互作用を避けるために人間ではなく構成要素で使用が場合再マウスの細胞で発現します。単一 ORF は、アルファおよびベータ鎖9,11の化学量論的個別式になります。現在のプロトコルは試薬および広く利用可能、アプローチに基づいており、合理的で効率的な方法で実行するように設計。このプロトコルは同定と人間 Tcr の特定の機能評価に広く適用することができますが、特に自己免疫性糖尿病に関与する自己反応性 T 細胞の Tcr を試金するこのテクニックを使いました、見込んでください。自己免疫性エピトープ、がん抗原や病原体とワクチンへの応答。

Protocol

1 です興味の T 細胞の人口を識別します。。 注: その増殖抗原的な刺激への応答に基づいて抗原 (のような Carboxyfluorescein サクシニミジルエステル、CFSE) 細胞分裂染料との組み合わせで特定の増殖は、T 細胞を分離する使用ことができます。PBMCs から始まって、7 日間 の in vitro 拡張は抗原特定 CFSE 低人口 12 を特定するのに足りるはず。 ミ…

Representative Results

多重ネスト PCR の反作用の効率は agarose のゲルの 5µL 2 番目の反応のうち実行している 3.2.7 (図 2) の手順でチェックします。TCR アルファ反応の効率は通常より低い、約 50% に 80% を前後になると TCR β 増幅の効率の予想平均4。TCR 式だけペア TCR アルファと TCR β 鎖使えますただし、すべての PCR の製品は、TCR シーケンスおよびレ?…

Discussion

現在のプロトコルの単一セルの TCR 増幅特性とそれに続く補助的クローニング ペアの TCR アルファとベータ鎖のテンプレート レトロ ウイルス発現ベクターに効率的な方法をについて説明します。単一セル PCR のいくつかのプロトコルが開発されているが、どれもはこれまで即時サブ表現のベクトルへのクローニングと互換性があるされています。ほとんどの場合、可変領域を推定する十分な?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

本研究は、JDRF 1-FAC-2014-243-A-N、ADA 7-14-ユニデン-07、NIH 5 P30 DK079638 05 パイロット PJ と、ロバートとジャニス ・ マクネイア財団によって賄われていた。

患者の募集、テクニカル サポート、博士ジョージ Makedonas 抗体とコントロール PCR の最適化に使用される DNA のギフトのためにサミュエル ・ ブラム、サンドラ ペーニャと Andrene マクドナルドに感謝します。

Materials

CFSE  eBioscience  65-0850-84 5 μM
anti-human CD4 (OKT4) BV421 Biolegend  317433 2 μg/mL
anti-human CD3 (OKT3) PerCP/Cy5.5 Biolegend  317336 2 μg/mL
anti-mouse CD3 AF647 Biolegend  100322 2.5 μg/mL
Recombinant RNAse inhibitor biotech grd 2.5KU   VWR 97068-158 0.7 U
Applied Biosystems High capaity cDNA RT kit  Invirtogen  4368814 9 U (RT enzyme) 
NF-H2O: Nuclease-free water 1000mL Invirtogen  AM9932
Gotaq DNA polymerase 2500U VWR PAM3008 1 U
96 Well Half Skirt PCR Plate Phenix MPX-96M2
MicroAmp Clear Adhesive Film  ThermoFisher  4306311
UltraPure Agarose  Invirtogen  15510-027
SnaBI New England Biolabs  R0130 15 U (insert) 30 U (vector)
SacII New England Biolabs  R0157 40 U (insert) 80 U (vector)
MfeI New England Biolabs  R3589S 40 U (insert) 80 U (vector)
BstBI New England Biolabs  R0519 40 U (insert) 80 U (vector)
Calf Intestinal Phosphatase (CIP) New England Biolabs  M0290S 10 U
Quick ligase  New England Biolabs  M2200S
Wizard Plus minipreps DNA purification systems  Promega  A1460
Wizard Plus midipreps DNA purification systems  Promega  A7640
DNA clean & concentrator-25 kit Genesee Scientific  11-304C
ZR-96 DNA clean & concentrator-5 kit Genesee Scientific  11-306A
QIAquick gel extraction kit Qiagen 28704
QIAquick PCR purification kit Qiagen 28104
Subcloning Efficiency DH5a Competent Cells  ThermoFisher  18265017
Transit LT-1 Reagent 1mL (transfection reagent) Mirus  MIR2300
BD FACS Aria II (sorter) BD
BD Fortessa (flow cytometer) BD 

References

  1. Germain, R. N. T-cell development and the CD4-CD8 lineage decision. Nat Rev Immunol. 2 (5), 309-322 (2002).
  2. Singer, A., Adoro, S., Park, J. H. Lineage fate and intense debate: myths, models and mechanisms of CD4- versus CD8-lineage choice. Nat Rev Immunol. 8 (10), 788-801 (2008).
  3. Tubo, N. J., et al. Single naive CD4+ T cells from a diverse repertoire produce different effector cell types during infection. Cell. 153 (4), 785-796 (2013).
  4. Sprouse, M. L., et al. Rapid identification and expression of human TCRs in retrogenic mice. J Immunol Methods. , (2016).
  5. Lennon, G. P., et al. T cell islet accumulation in type 1 diabetes is a tightly regulated, cell-autonomous event. Immunity. 31 (4), 643-653 (2009).
  6. Dash, P., et al. Paired analysis of TCRalpha and TCRbeta chains at the single-cell level in mice. J Clin Invest. 121 (1), 288-295 (2011).
  7. Kobayashi, E., et al. A new cloning and expression system yields and validates TCRs from blood lymphocytes of patients with cancer within 10 days. Nat Med. 19 (11), 1542-1546 (2013).
  8. Szymczak, A. L., et al. Correction of multi-gene deficiency in vivo using a single ‘self-cleaving’ 2A peptide-based retroviral vector. Nat Biotechnol. 22 (5), 589-594 (2004).
  9. Szymczak, A. L., Vignali, D. A. Development of 2A peptide-based strategies in the design of multicistronic vectors. Expert Opin Biol Ther. 5 (5), 627-638 (2005).
  10. Bettini, M. L., Bettini, M., Vignali, D. A. T-cell receptor retrogenic mice: a rapid, flexible alternative to T-cell receptor transgenic mice. Immunology. 136 (3), 265-272 (2012).
  11. Holst, J., Vignali, K. M., Burton, A. R., Vignali, D. A. Rapid analysis of T-cell selection in vivo using T cell-receptor retrogenic mice. Nat Methods. 3 (3), 191-197 (2006).
  12. Mannering, S. I., et al. A sensitive method for detecting proliferation of rare autoantigen-specific human T cells. J Immunol Methods. 283 (1-2), 173-183 (2003).
  13. James, E. A., LaFond, R., Durinovic-Bello, I., Kwok, W. Visualizing antigen specific CD4+ T cells using MHC class II tetramers. J Vis Exp. (25), (2009).
  14. Corthay, A., Nandakumar, K. S., Holmdahl, R. Evaluation of the percentage of peripheral T cells with two different T cell receptor alpha-chains and of their potential role in autoimmunity. J Autoimmun. 16 (4), 423-429 (2001).
  15. Lee, T., Shevchenko, I., Sprouse, M. L., Bettini, M., Bettini, M. L. Retroviral Transduction of Bone Marrow Progenitor Cells to Generate T-cell Receptor Retrogenic Mice. J Vis Exp. (113), (2016).
  16. Bettini, M. L., Bettini, M., Nakayama, M., Guy, C. S., Vignali, D. A. Generation of T cell receptor-retrogenic mice: improved retroviral-mediated stem cell gene transfer. Nat Protoc. 8 (10), 1837-1840 (2013).
  17. Cohen, C. J., Zhao, Y., Zheng, Z., Rosenberg, S. A., Morgan, R. A. Enhanced antitumor activity of murine-human hybrid T-cell receptor (TCR) in human lymphocytes is associated with improved pairing and TCR/CD3 stability. Cancer Res. 66 (17), 8878-8886 (2006).

Play Video

Cite This Article
Sprouse, M. L., Blahnik, G., Lee, T., Tully, N., Benarjee, P., James, E. A., Redondo, M. J., Bettini, M. L., Bettini, M. Streamlined Single Cell TCR Isolation and Generation of Retroviral Vectors for In Vitro and In Vivo Expression of Human TCRs. J. Vis. Exp. (127), e55379, doi:10.3791/55379 (2017).

View Video