Isolated working heart models can be used to measure the effect of loading conditions, heart rate, and medications on myocardial performance and oxygen consumption. We describe methods for preparation of a rodent left heart working model that permits study of systolic and diastolic performance and oxygen consumption under various conditions.
Isolated working heart models have been used to understand the effects of loading conditions, heart rate and medications on myocardial performance in ways that cannot be accomplished in vivo. For example, inotropic medications commonly also affect preload and afterload, precluding load-independent assessments of their myocardial effects in vivo. Additionally, this model allows for sampling of coronary sinus effluent without contamination from systemic venous return, permitting assessment of myocardial oxygen consumption. Further, the advent of miniaturized pressure-volume catheters has allowed for the precise quantification of markers of both systolic and diastolic performance. We describe a model in which the left ventricle can be studied while performing both volume and pressure work under controlled conditions.
In this technique, the heart and lungs of a Sprague-Dawley rat (weight 300-500 g) are removed en bloc under general anesthesia. The aorta is dissected free and cannulated for retrograde perfusion with oxygenated Krebs buffer. The pulmonary arteries and veins are ligated and the lungs removed from the preparation. The left atrium is then incised and cannulated using a separate venous cannula, attached to a preload block. Once this is determined to be leak-free, the left heart is loaded and retrograde perfusion stopped, creating the working heart model. The pulmonary artery is incised and cannulated for collection of coronary effluent and determination of myocardial oxygen consumption. A pressure-volume catheter is placed into the left ventricle either retrograde or through apical puncture. If desired, atrial pacing wires can be placed for more precise control of heart rate. This model allows for precise control of preload (using a left atrial pressure block), afterload (using an afterload block), heart rate (using pacing wires) and oxygen tension (using oxygen mixtures within the perfusate).
L'étude des organes isolés permet de contrôler les conditions physiologiques au – delà de ce qui est possible in vivo. Ex vivo des préparations cardiaques ont d' abord été décrits par Otto Langendorff, 1 qui a décrit un modèle isolé avec une perfusion rétrograde. Par la suite, d' autres ont décrit le modèle «travailler cœur», dans lequel le myocarde effectue à la fois la pression et le volume de travail. 2 Ces préparations ont joué un rôle dans les mécanismes d'action du myocarde, 3 métabolisme du myocarde, 4-6 et les effets des médicaments cardiotoniques élucidant. 7- 9
L'utilisation de médicaments qui améliorent la contractilité myocardique est fréquente chez les patients gravement malades. Cependant, peu de données sont disponibles pour comparer les effets relatifs de ces médicaments sur la contractilité et de la consommation en oxygène du myocarde, les données qui peuvent être utiles dans la prise en charge des patients présentant des signes cliniques d'insuffisance cardiaque de dans le cadre post-opératoire. 10 Cependant, parce que la plupart des médicaments cardiotoniques affectent non seulement le myocarde, mais aussi la résistance artériolaire, la capacité veineuse 11, et le taux métabolique d'un patient, 12 ex vivo modèles cardiaques isolés restent les meilleurs moyens par lesquels pour étudier les effets de ces médicaments sur le myocardique appropriée.
Nous décrivons l'utilisation d'un modèle ex vivo pour l'étude des médicaments inotropes sur la fonction cardiaque et la consommation d'oxygène indépendant de la charge. Coeurs de rats Sprague Dawley ont été canules en utilisant un modèle ventriculaire gauche travail cardiaque et perfusées en utilisant un perfusat Krebs Henseleit modifié. pressions auriculaires aortiques et gauche ont été contrôlés. Les cathéters pression-volume d'impédance ont été placés dans le ventricule gauche par ponction apicale pour la surveillance continue de la fonction systolique et diastolique. La consommation d'oxygène a été mesurée en continu comme la différence indexée de la teneur en oxygène entre perfus auriculaire gaucheate et l'effluent de l'artère pulmonaire. Les médicaments à tester ont été perfusé dans le bloc auriculaire gauche, et les variations du rendement et de l'oxygène métabolisme cardiaque ont été mesurés et comparés à une valeur de référence précédente.
Ce modèle de travail cardiaque évaluation de la performance ventriculaire permet un contrôle complet de la précharge ventriculaire et la postcharge, la tension d'oxygène du perfusat, ainsi que la fréquence cardiaque. Parmi d' autres facteurs, il permet d' évaluer les effets myocardiques intrinsèques des médicaments inotropes indépendants de précharge et la postcharge, qui moyens qui ne sont pas possibles en utilisant un modèle in vivo. Parce que ce modèle utilise un perfusat cristalloïde, il permet d' évaluer le myocarde sans interférence de l' hémoglobine, ce qui simplifie l' analyse spectroscopique des états d'énergie du myocarde, par exemple. 14 Dans ce modèle, l'oreillette droite est pas canulée dans le cadre de notre instrumentation, bien qu'il soit possible faire cela. Nous avons volontairement choisi de ne pas le faire dans le but de faciliter l'échantillonnage des flux de sinus coronaire pour l'évaluation de la consommation en oxygène du myocarde. Il est important, cependant, le cœur droit remplit toujours la pression et le volume de travail dans ce modèle comme il pompe le cosinus ronary se jettent dans la canule de l'artère pulmonaire. Fournir une certaine précharge ventriculaire droite améliore le positionnement du septum ventriculaire et améliore les performances du ventricule gauche, et est une composante importante de ce modèle. 15
Il y a plusieurs pièges expérimentaux à mentionner. Le premier est la canulation rétrograde initiale qui doit être effectuée de manière appropriée ( par exemple, en moins de 2 min) pour minimiser la période d'ischémie. La compétence la plus importante à maîtriser est l'isolement efficace, la préparation et la manipulation de l'aorte ascendante. Il est important que le moignon aortique pas être coupé trop court, en laissant suffisamment de place pour canulation au-dessus de la valve aortique. Cependant, il est également important que le moignon aortique ne soit pas trop long, ce qui peut provoquer radiculaire de l'aorte, autour de la canule. Il est également important que la canule de l'aorte et la racine aortique de façon appropriée être de taille adaptée. Une trop grande aorte sur une petite canule peut aussiconduire à radiculaire de la racine aortique sur la canule. L'artère sous-clavière droite prend généralement hors de l'aorte ascendante environ 7 mm au-dessus de la valve aortique. Identifier les vaisseaux brachiocéphaliques (environ 1 mm de diamètre) lors de la dissection et le rognage de l'aorte servent comme points de repère importants pour l'incision de l'aorte transverse. Découper l'aorte juste au-dessous du décollage de la première artère brachiocéphalique est conseillé. L'inclusion de ce navire dans la racine de l'aorte rognée conduit généralement à une fuite de KHB, et la perte de pression de la racine aortique lors de la transition vers le mode de travail du cœur.
Un autre aspect techniquement difficile de canulation est la canulation de l'oreillette gauche. Bien qu'il ne soit possible de cathétériser l'auricule cardiaque gauche, nous avons trouvé que la canule se coince fréquemment à l'intérieur de l'appendice, et ne passe pas facilement dans le corps de l'oreillette gauche. Ainsi, on préfère réaliser l'incision dans le corps de l'oreillette gauche, approximativement2 mm supérieure à la gorge. Auriculo-ventriculaire Il est important de positionner la canule auriculaire gauche dans le plan approprié avant l'insertion afin d'éviter de déchirer l'oreillette à paroi mince lors de la fixation de la canule.
Nous avons constaté que la taille idéale de l'incision de l'oreillette gauche était d'environ 3 mm. Création trop petite d'une incision peut également faire la mise en place de la canule auriculaire gauche plus difficile, et peut conduire à la déchirure de l'oreillette gauche. Nous utilisons une ligne droite, 8 mm, pièce biseautée de tube imperméable à l'oxygène (diamètre intérieur 2,9 mm) sur le bloc auriculaire gauche. Nous avons trouvé que l'utilisation de cela, plutôt que d'une canule avec un bord biseauté, conduit à canulation auriculaire la plus cohérente et facilite le processus de sécurisation du bloc auriculaire gauche. Quel que soit le tube utilisé, il est important de veiller à ce que l'extrémité du tube ne soit pas occulté par le septum auriculaire ou de la valve mitrale (comme décrit ci-dessus, nous avons trouvé que le tracé de l'oreillette gauche de la pression utile dans la présente regard), car même mouvement subtil de la canule auriculaire peut modifier de manière significative la précharge ventriculaire gauche et des mesures hémodynamiques résultantes. Pour la même raison, il est important de veiller à ce que l'oreillette gauche ne fuit pas, après l'ouverture du bloc auriculaire gauche. Il importe quel que soit le type de tube utilisé pour assurer que le tube à l'intérieur de ce système est imperméable à l'oxygène pour assurer l'apport d'oxygène adéquat vers le cœur.
Un autre aspect techniquement difficile de la procédure était la mise en place du cathéter de pression-volume (PV). Nous avons d'abord privilégié un placement rétrograde du cathéter à travers le bloc aortique. Bien que techniquement possible, nous avons trouvé qu'il est beaucoup plus simple et rapide pour placer le cathéter de PV par ponction transapical. Il faut prendre soin de surveiller la position du cathéter pendant la durée de l'expérience, au moment du cathéter peut se déplacer dans ou hors du ventricule gauche. Ceci peut être effectué en surveillant la PRESSUre et tracés de volume au fil du temps.
Enfin, il faut veiller à ce que la solution KHB est créé fraîche pour chaque expérience. Il est possible de peser sur les constituants de KHB et de les stocker dans des tubes coniques sous forme de poudre à l'avance. Le jour de l'expérimentation, ceux-ci peuvent être mélangés avec de l'eau stérilisée par filtration, le dioxyde de carbone / oxygène, puis calcium ajouté au mélange. Il est également important de se laver le système avec l'enzyme détergent en poudre actif tel que Tergazyme (ou similaire) et remplacer le filtre perfusat régulièrement.
Plusieurs limites de cette préparation expérimentale devraient être notés. En premier lieu, semblable à toutes les préparations de Langendorff cristalloïdes perfusé, KHB et d'autres perfusats asanguinous ont un oxygène diminué de manière significative la capacité de transport par rapport au sang. Bien que cela est partiellement compensée par la vasodilatation coronaire et le débit coronaire supraphysiologique, la préparation est pas tout à fait physiologic pour cette raison. En second lieu , en raison de la quasi infinie conformité de la chambre de Windkessel utilisée dans cet instrument, les pressions systoliques et diastoliques ne sont séparées au minimum (voir la figure 2A) et donc la pression de perfusion coronarienne est non physiologique. Cela peut être surmonté dans les futurs modèles en incorporant un composant élastance au bloc de post-charge. Troisièmement, comme avec toutes les préparations cardiaques isolées, le cœur subit une période définie (2 – 3 min) d'ischémie chaude qui est susceptible de créer une lésion du myocarde ou d'un dysfonctionnement. Minimiser cette blessure par la pratique de la technique est de la plus haute importance à des résultats représentatifs. En outre, bien que nécessaire pour le bien-être des animaux, les anesthésiques inhalés peuvent servir de coupe-infarctus précoce du processus de reperfusion, mais il est prévu que cet effet est rapidement supprimé comme le cœur est reperfusé avec KHB.
Le système de travail cardiaque décrit permet une grande variété de Physiolenquêtes ogic pertinents pour les soins aux patients, la recherche et l'enseignement. Avec quelques modifications supplémentaires, le système peut également être utilisé pour simuler la physiologie importants concernant les maladies cardiaques congénitales, y compris l'hypertension pulmonaire et seule la physiologie du ventricule. Limitations comprennent ce qu ' il est une préparation ex vivo, que le coeur est perfusé par un tampon au lieu d'une teneur plus élevée du sang en oxygène.
The authors have nothing to disclose.
L'équipement et les expériences décrites ici ont été financés par le Département de cardiologie, Hôpital pour enfants de Boston et par des dons philanthropiques de la famille Haseotes. Nous sommes reconnaissants envers les Drs. Frank McGowan et Huamei Il pour nous avoir fourni les premières expériences avec ce modèle, et Lindsay Thomson pour l'aide d'œuvres d'art.
Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich | S5761 | 8.401 g/4 L |
Ethylenediaminetetraacetic acid | Sigma-Aldrich | E6758 | 0.744 g/4 L |
Potassium chloride | Sigma-Aldrich | P9333 | 1.580 g/4 L |
Magnesium sulfate | Sigma-Aldrich | M7506 | 0.578 g/4 L |
Sodium pyruvate | Sigma-Aldrich | P2256 | 0.220 g/ 4 L |
Sodium chloride | Sigma-Aldrich | S3014 | 27.584 g/4 L |
Dextrose | Sigma-Aldrich | D9434 | 7.208 g/4 L |
Calcium chloride dihydrate | Sigma-Aldrich | C7902 | 1.470 g/4 L |
Biventricular working heart model | Harvard Apparatus | IH-51 | |
Pressure volume catheter | Millar, Inc | SPR-944-1 | 6 mm spacing catheter used |
LabChart Pro 8 | AD Instruments | Version 8.1 |