Isolated working heart models can be used to measure the effect of loading conditions, heart rate, and medications on myocardial performance and oxygen consumption. We describe methods for preparation of a rodent left heart working model that permits study of systolic and diastolic performance and oxygen consumption under various conditions.
Isolated working heart models have been used to understand the effects of loading conditions, heart rate and medications on myocardial performance in ways that cannot be accomplished in vivo. For example, inotropic medications commonly also affect preload and afterload, precluding load-independent assessments of their myocardial effects in vivo. Additionally, this model allows for sampling of coronary sinus effluent without contamination from systemic venous return, permitting assessment of myocardial oxygen consumption. Further, the advent of miniaturized pressure-volume catheters has allowed for the precise quantification of markers of both systolic and diastolic performance. We describe a model in which the left ventricle can be studied while performing both volume and pressure work under controlled conditions.
In this technique, the heart and lungs of a Sprague-Dawley rat (weight 300-500 g) are removed en bloc under general anesthesia. The aorta is dissected free and cannulated for retrograde perfusion with oxygenated Krebs buffer. The pulmonary arteries and veins are ligated and the lungs removed from the preparation. The left atrium is then incised and cannulated using a separate venous cannula, attached to a preload block. Once this is determined to be leak-free, the left heart is loaded and retrograde perfusion stopped, creating the working heart model. The pulmonary artery is incised and cannulated for collection of coronary effluent and determination of myocardial oxygen consumption. A pressure-volume catheter is placed into the left ventricle either retrograde or through apical puncture. If desired, atrial pacing wires can be placed for more precise control of heart rate. This model allows for precise control of preload (using a left atrial pressure block), afterload (using an afterload block), heart rate (using pacing wires) and oxygen tension (using oxygen mixtures within the perfusate).
El estudio de órganos aislados permite el control de las condiciones fisiológicas más allá de lo que es posible en vivo. Preparaciones de corazón ex vivo fueron descritos por primera vez por Otto Langendorff, 1 que describe un modelo aislado con perfusión retrógrada. Posteriormente, otros describen el modelo "de trabajo del corazón", en el que el miocardio realiza tanto el trabajo de presión y volumen. 2 Dichas preparaciones han sido instrumentales en la elucidación de los mecanismos de acción infarto de miocardio, 3, 4-6 metabolismo y efectos de los medicamentos cardiotónicos. 7- 9
El uso de medicamentos que aumentan la contractilidad miocárdica es común en pacientes críticamente enfermos. Sin embargo, se dispone de la comparación de los efectos relativos de estos medicamentos sobre la contractilidad y el consumo miocárdico de oxígeno, los datos que pueden ser útiles en el tratamiento de pacientes con signos clínicos de insuficiencia cardíaca de en el postoperatorio pocos datos. 10 Sin embargo, como la mayoría de los medicamentos cardiotónicos afectan no sólo el miocardio, sino también la resistencia arteriolar, la capacitancia venosa 11, y la tasa metabólica de un paciente, 12 ex vivo modelos de corazón aisladas siguen siendo los medios óptimos por el que estudiar los efectos de tales medicamentos en el miocardio adecuada.
Se describe el uso de un modelo ex vivo para el estudio independiente de la carga de medicamentos inotrópicos sobre la función del miocardio y consumo de oxígeno. Corazones de ratas Sprague Dawley se canularon utilizando una ventricular izquierda de trabajo modelo de corazón y perfundidos usando un perfusado Krebs Henseleit modificado. se controlaron las presiones auriculares izquierda y la aorta. catéteres de impedancia de presión-volumen se colocaron en el ventrículo izquierdo a través de la punción apical para la monitorización continua de la función sistólica y diastólica. El consumo de oxígeno se mide continuamente la diferencia indexada en el contenido de oxígeno entre la aurícula izquierda perfuscomió y el efluente de la arteria pulmonar. Los medicamentos a ensayar se infunde en el bloque de la aurícula izquierda, y cambios en el rendimiento cardiaco y el oxígeno metabolismo se midieron y se compararon con una línea de base inmediatamente anterior.
Este modelo de corazón de trabajo permite la evaluación del rendimiento ventricular con un control total de la precarga y la poscarga ventricular, la tensión de oxígeno del perfundido, así como la frecuencia cardíaca. Entre otros factores, que permite la evaluación de los efectos de miocardio intrínsecas de medicamentos inotrópicos independientes de la poscarga y la precarga, los cuales maneras que no son posibles utilizando un modelo in vivo. Debido a que este modelo utiliza un perfundido cristaloide, que permite la evaluación del miocardio sin la interferencia de la hemoglobina, lo que simplifica el análisis espectroscópico de estados de energía del miocardio, por ejemplo. 14 En este modelo, la aurícula derecha no se canula como parte de nuestra instrumentación, aunque es posible para hacerlo. Elegimos intencionalmente no hacerlo con el fin de facilitar la toma de muestras de flujo del seno coronario para la evaluación del consumo de oxígeno del miocardio. Es importante destacar, sin embargo, el lado derecho del corazón todavía se realiza el trabajo de presión y el volumen en este modelo, ya que las bombas de la coseno corona- fluyen dentro de la cánula de la arteria pulmonar. Proporcionar algunos precarga del ventrículo derecho mejora el posicionamiento del tabique ventricular y mejora el rendimiento del ventrículo izquierdo, y es un componente importante de este modelo. 15
Hay varias trampas experimentales para mencionar. La primera es la canulación retrógrada inicial, que debe realizarse convenientemente (es decir, en menos de 2 min) para reducir al mínimo el período de isquemia. La habilidad más importante maestro es el aislamiento eficiente, preparación y manipulación de la aorta ascendente. Es importante que el muñón aórtico no ser cortado excesivamente corta, dejando espacio suficiente para la canulación encima de la válvula aórtica. Sin embargo, también es importante que el muñón aórtico no sea demasiado largo, que puede causar torqueing de la aorta alrededor de la cánula. También es importante que la cánula aorta y la raíz aórtica ser adecuadamente tamaño compatible. Un excesivamente grande aorta en una pequeña cánula también puedeconducir a torqueing de la raíz aórtica en la cánula. La arteria subclavia derecha normalmente despega de la aorta ascendente aproximadamente 7 mm por encima de la válvula aórtica. La identificación de los vasos braquiocefálicos (aproximadamente 1 mm de diámetro) durante la disección y el recorte de la aorta sirven como puntos de referencia importantes para la incisión de la aorta transversal. Recorte de la aorta justo por debajo del despegue de la primera arteria innominada es aconsejable. La inclusión de este buque de la raíz aórtica recortado por lo general conduce a una fuga de KaJaB, y la pérdida de presión de la raíz aórtica en la transición al modo de trabajo del corazón.
Otro aspecto técnicamente difícil de canulación es la canulación de la aurícula izquierda. Aunque es factible para canular la orejuela auricular izquierda, se encontró que la cánula con frecuencia se atasca dentro del apéndice, y no pasa fácilmente en el cuerpo de la aurícula izquierda. Por lo tanto, preferimos hacer la incisión en el cuerpo de la aurícula izquierda, aproximadamente2 mm superiores a la ranura auriculoventricular. Es importante la posición de la cánula de la aurícula izquierda en el plano correcto antes de la inserción con el fin de evitar que se rompa el atrio de pared delgada cuando se asegura la cánula.
Se encontró que el tamaño ideal de la incisión aurícula izquierda fue de aproximadamente 3 mm. Creación demasiado pequeño de una incisión también puede hacer que la colocación de la cánula de la aurícula izquierda más difícil, y puede conducir a la rotura de la aurícula izquierda. Utilizamos un 8 mm, pieza recta, biselada del tubo impermeable al oxígeno (diámetro interior 2,9 mm) en el bloque de la aurícula izquierda. Hemos encontrado que el uso de este, en lugar de una cánula con un borde biselado, conduce a la canulación de la aurícula más consistente y facilita el proceso de asegurar el bloque de la aurícula izquierda. Independientemente de la tubería usada, es importante asegurarse de que el extremo de la tubería no está ocluida por el tabique atrial o la válvula mitral (como se representa anteriormente, se encontró que el trazado presión de la aurícula izquierda fue útil en este Regard), ya que incluso sutil movimiento de la cánula auricular puede alterar significativamente la precarga del ventrículo izquierdo y mediciones hemodinámicas resultantes. Por la misma razón, es importante asegurarse de que la aurícula izquierda no se escapa siguiente después de abrir el bloque de la aurícula izquierda. Es importante, independientemente del tipo de tubo usado para asegurar que el tubo dentro de este sistema es oxígeno impermeable para garantizar el suministro de oxígeno adecuado al corazón.
Otro aspecto desafío técnico del procedimiento fue la colocación del catéter de presión-volumen (PV). Inicialmente se favoreció una colocación retrógrada del catéter a través del bloque de la aorta. Aunque técnicamente factible, nos pareció que era mucho más simple y conveniente para colocar el catéter PV mediante punción transapical. Se debe tener cuidado para controlar la posición del catéter en toda la duración del experimento, ya que a veces el catéter puede entrar o salir del ventrículo izquierdo. Esto se puede hacer mediante la supervisión de la pressuRe y trazados de volumen en el tiempo.
Por último, se debe tener cuidado para asegurar que la solución KHB se crea nuevo para cada experimento. Es posible para pesar los componentes de KaJaB y almacenarlos en tubos cónicos en forma de polvo antes de tiempo. En el día de experimentación, estos se pueden mezclar con, agua estéril filtrada, dióxido de carbono / oxígeno, y luego de calcio añadido a la mezcla. También es importante para lavar el sistema con la enzima detergente en polvo activo, tal como Tergazyme (o similar) y sustituir el filtro de perfundido con regularidad.
Varias limitaciones de esta preparación experimental deben tenerse en cuenta. En primer lugar, al igual que todas las preparaciones de Langendorff perfundidos cristaloides-, KaJaB y otros perfundidos asanguinous tienen un oxígeno disminuido significativamente la capacidad de carga con respecto a la sangre. Aunque esto se compensó en parte a través de la vasodilatación coronaria y el flujo coronario suprafisiológicas, la preparación no es del todo physiologic por esta razón. En segundo lugar, debido a la casi infinita cumplimiento de la cámara de Windkessel utilizado en este instrumento, las presiones sistólica y diastólica están separados sólo mínimamente (véase la figura 2A) y por lo tanto la presión de perfusión coronaria es no fisiológica. Esto puede ser superado en modelos futuros mediante la incorporación de un componente de elastancia al bloque de la poscarga. En tercer lugar, como con todas las preparaciones de corazón aisladas, el corazón se somete a un período definido (2-3 min) de la isquemia caliente que es susceptible de crear la lesión miocárdica o disfunción. Reducción al mínimo de esta lesión través de la práctica de la técnica es de suma importancia para los resultados representativos. Además, aunque necesaria para el bienestar animal, anestésicos inhalados pueden servir como un supresor de miocardio precoz en el proceso de reperfusión, aunque se espera que este efecto se suprimió rápidamente como el corazón se reperfundido con KHB.
El sistema del corazón de trabajo descrito permite una amplia variedad de PhysiolOGIC investigaciones relevantes para la atención al paciente, investigación y enseñanza. Con algunas modificaciones adicionales, el sistema también puede ser utilizado para simular la fisiología importante relevante a la enfermedad cardíaca congénita, incluyendo la hipertensión pulmonar y la fisiología solo ventrículo. Las limitaciones incluyen que es una preparación ex vivo, que el corazón está siendo perfundido por un tampón en lugar de una sangre de contenido de mayor oxígeno.
The authors have nothing to disclose.
El equipo y los experimentos descritos aquí fueron financiados por el Departamento de Cardiología del Hospital Infantil de Boston y por donaciones filantrópicas de la familia Haseotes. Estamos muy agradecidos a los Dres. Frank McGowan y Huamei Él para que nos proporciona las primeras experiencias con este modelo, y para Lindsay Thomson para la ayuda con las ilustraciones.
Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich | S5761 | 8.401 g/4 L |
Ethylenediaminetetraacetic acid | Sigma-Aldrich | E6758 | 0.744 g/4 L |
Potassium chloride | Sigma-Aldrich | P9333 | 1.580 g/4 L |
Magnesium sulfate | Sigma-Aldrich | M7506 | 0.578 g/4 L |
Sodium pyruvate | Sigma-Aldrich | P2256 | 0.220 g/ 4 L |
Sodium chloride | Sigma-Aldrich | S3014 | 27.584 g/4 L |
Dextrose | Sigma-Aldrich | D9434 | 7.208 g/4 L |
Calcium chloride dihydrate | Sigma-Aldrich | C7902 | 1.470 g/4 L |
Biventricular working heart model | Harvard Apparatus | IH-51 | |
Pressure volume catheter | Millar, Inc | SPR-944-1 | 6 mm spacing catheter used |
LabChart Pro 8 | AD Instruments | Version 8.1 |