Summary

Активация и Измерение NLRP3 Inflammasome деятельности Использование IL-1β в человека моноцитов дендритные клетки

Published: May 22, 2014
doi:

Summary

Дендритные клетки (ДК) секретируют IL-1β в ответ на распознавание TLR8 синтетического пурин, R848, с последующей активацией inflammasome NLRP3 с нигерицина, следовательно, IL-1β может быть использован для измерения активности inflammasome NLRP3. Внутриклеточного цитокина окрашивание, иммуноблотинга и ИФА используются для точного измерения NLRP3 inflammasome грунтования и активация через выражение ИЛ-1β.

Abstract

Воспалительные процессы, возникающие в результате секреции интерлейкина (IL) -1 семьи цитокины иммунными клетками привести к локальной или системного воспаления, ремоделирования ткани и ремонта, а также контроля вирусологического 1, 2. Интерлейкина-1β является важным элементом врожденного иммунного ответа и способствует устранению вторжение болезнетворных микроорганизмов, предотвращая создание хронической инфекции 1-5.

Inflammasomes являются ключом сигнализации платформа для активации интерлейкина 1 превращающего фермента (ICE или каспазы-1). Nlrp3 inflammasome требуется не менее двух сигналов в ДК, чтобы вызвать Ил-1β секрецию 6. Экспрессия белка Pro-IL-1β ограничен в покоящихся клеток; поэтому сигнал грунтовки требуется для IL-1β транскрипции и экспрессии белка. Второй сигнал считывается результатов NLRP3 в формировании нескольких белков NLRP3 inflammasome. Способность дендритных клеток в респонденD на сигналы, необходимые для секреции IL-1β может быть проверена с использованием синтетического пурин, R848, который воспринимается TLR8 в человеческой моноцитов дендритных клеток (moDCs) в первичных клетках, а затем активацией inflammasome NLRP3 с бактериальным токсином и ионофор калия, нигерицин.

Моноцитов, полученные ДК легко получены в культуре и обеспечивают значительно больше клеток, чем очищенных человеческих миелоидных ДК. Метод, представленный здесь отличается от других анализов inflammasome в том, что он использует в пробирке человека, а мыши, полученной, таким образом позволяя ДК для изучения inflammasome в человеческой болезни и инфекции.

Introduction

Активация иммунной системы требуется, чтобы направить адаптивного иммунного ответа во время инфекции, болезней и вакцинации 7. Дендритные клетки являются наиболее мощным антиген представляющих клеток врожденной иммунной системы; они специализируются на поглощение антигенов, миграции в лимфатические узлы, и активации наивного CD4 + и цитолитический CD8 + Т-клеток 8-10. Чтобы включить быстрое обнаружение патогена врожденной иммунной системы использует многочисленные зародышевые кодируется рецепторы распознавания образов (ПРР), которые признают консервативный патогенных полученные мотивы или хост получены маркеры стресса и повреждения клеток. Toll подобные рецепторы (TLR,) являются мембранные связаны рецепторы распознавания образов, которые признают определенную внеклеточный фагоцитируются патоген, связанные молекулярные паттерны (PAMPs) и опасность, связанная молекулярные паттерны (DAMPS). В отличие от кивком, как рецепторов (NLRS) являются цитозольный и отвечать разнообразных PAMPs и DAMPS. Nod подобные рецепторы повторнопредставить вторую линию обороны против патогенов, которые уклоняются поверхность клеток и эндоцитотических PRRS. Взаимодействие возбудителя, полученных или «опасности» ассоциируется, факторы с TLR и РНБ лигандов приводит к состоянию постоянного созревания в результате усиления взаимодействия постоянного тока с другими иммунными клетками и продвижения Т-клеток и активации естественных клеток-киллеров 11.

Интерлейкина-1β является одним из важнейших компонентов в защите организма против инфекции. После признания микроорганизма, высоко провоспалительных цитокинов IL-1β, секретируется и функционирует как химио аттрактанта и активатора врожденной и адаптивной иммунных клеток. В естественных условиях ИЛ-1β в значительной степени ответственна за ответ острой фазы в том числе лихорадки и цитокина Синтез 12.

Большинство NLRS содержать C терминал лейцин богатый домен повтора, как полагают, функционируют в лиганда зондирования, центральной нуклеотидной связывающего домена (Nacht), который ИМПОrtant для NLRP3 олигомеризации, и N концевого домена эффекторной (PYD в NLRP3), который опосредует передачу сигнала в нижестоящих мишеней через белковые белковых взаимодействий. Белок Nlrp3 определяет наиболее интенсивно изучал inflammasome комплекс. Этот белок является членом семьи NLR и имеет возможность сформировать мульти молекулярного комплекса белка, состоящего из NLRP3, в PYCARD адаптер белка (также известный как ASC) и ICE. По inflammasome активации PYCARD связывается с Nlrp3 N терминальных доменов и нанимает ICE посредством активации каспазы и области найма (CARD) областей. Интерлейкин-1-превращающего фермента первоначально генерируется как зимогена, содержащей карту мотив на его N-конце. Inflammasome результаты формирования в результате чего две молекулы ICE достаточно близко, чтобы побудить их автокаталитическую активации. Inflammasome комплекс необходим для активации ICE что позволяет ему конвертировать цитоплазматический про-IL-1β, чтобы созреть цитокин.

Успешное выделение IL-1β в РС требуется зондирование двух разных и независимых сигналов опасности. Во-первых, TLR зондирование PAMPs, DAMPS или сигнализации цитокинов (ФНО или IL-1β) вызывает позитивную регуляцию цитоплазматической экспрессии про-IL-1β белка. Второй, часто отличаются, сигнал необходим для inflammasome комплексообразования вверх по течению от ICE созревания. Несколько inflammasome стимулирования сигналы включают образующие токсины бактерий мембрана пор (например, нигерицина), лизосомальные нарушения кристаллы (например, мононатрия уратов кристаллов, МГУ), и внеклеточный АТФ. Вверх по течению механизм, приводящий к NLRP3 inflammasome активацию этих разнообразных возбудителей непонятно. Исследования следственные сигнализации вверх по течению inflammasome образования предлагает, чтобы внутриклеточные события, такие как индукции гипокалиемии или активных форм кислорода (АФК) косвенно активировать inflammasome 13-28.

Среди различных вирусных возбудителей в inflammasome NLRP3 является гриппа, который обеспечивает бВ противном первичный и вторичный сигнал, необходимый для Ил-1β секреции 3, 29-33. Использование модели мыши с нокаутом NLRP3 было обнаружено, что IL-1β в ДК секреции является NLRP3 зависит 32. Кроме того, мышей нокаутом NLRP3 привлекает меньше лейкоцитов в очаге инфекции и наблюдается повышение смертности 2, 5. Два недавних работах предложить механизм для активации inflammasome NLRP3 во время гриппа вирусной инфекции; Сначала грунт через признание вирусной РНК с помощью TLR7 или TLR8 (в зависимости от экспрессии TLR отвечающего клетки), либо через зондирования синантропных бактерий другими TLRs индуцировать цитоплазматическую про-IL-1β экспрессию, с последующим вторым сигналом активации, NLRP3 inflammasome образование по вирусного белка ионного канала М2 на транс Гольджи сети 33, 34. В последнем шаге, срабатывание inflammasome NLRP3 осуществляется нарушения внутриклеточного ионного <EM> среда приводит к продукции АФК, который является, просто, воспринимается NLPR3 как сигнал, чтобы сформировать inflammasome. Тем не менее, точный механизм inflammasome активации верховьях ICE деятельности в течение гриппа инфекции все еще остается неясным.

Эта работа описывает технику ценную для изучения NLRP3 inflammasome в человеческих moDCs который может быть использован в качестве основы для дальнейшего изучения пути, лежащей в основе DC основе секреции ИЛ-1β в ответ на TLR8 перевязки с R848 с последующим активации inflammasome по хорошо Известно, активатор NLRP3, нигерицин. Вариации этого метода могут быть использованы с другими типами клеток, включая, но не ограничиваясь ими: моноциты, макрофаги, других подмножеств постоянного тока и эпителиальных клеток.

Protocol

Заявление по этике: образцы исследований получены и сохранены для исследования с согласия донора. Все образцы должны быть закодированы или анонимными перед использованием. Этот протокол следует руководству нашей Institutional Review Board. 1. Дифференциация периферической крови че…

Representative Results

Эти методы измерения TLR8 заливке с R848. Внутриклеточного цитокина окрашивание на про-IL-1β позволяет микроскопии и Facs показаний от CD14 – CD11c + moDCs. Оба метода могут быть количественно относительно к не загрунтованных или отдыха, контроль клеточного, а в качестве контрольного изоти…

Discussion

Воспалительные цитокины являются неотъемлемой в рулевое врожденную и адаптивный иммунный ответ, чтобы бороться вирусную инфекцию. Выделяется Ил-1β было показано, что увеличение во время гриппа инфекции 3, 43, 44. Точные механизмы, с помощью которых эти цитокины, обработанные в ответ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы выразить признательность Оливье Manches, доктор философии, Давор Frleta, доктор философии, и Меган О'Брайен, MD за их поддержку и обратную связь. Это исследование было поддержано Национальным институтом аллергии и инфекционных заболеваний и завершил с финансированием от NIH предоставляет Рут L. Kirschstein Национальный исследовательский Сервис наград для отдельных Predoctoral стипендий (F31) поощрять разнообразие в связанных со здоровьем исследований (AI089030) и RO1 (AI081848 ).

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
IL-4 R&D
GM-CSF Genzyme NDC 58468-0180-2 We acquire this item through our local pharmacy with a prescription
RPMI 1640 with L-glutamine Cellgro 10-040-CV
Peripheral blood mononuclear cells New York Blood Center PBMCs were isolated from the blood of healthy donors
12-well tissue culture plates Sigma-Aldrich 3516
96-well round bottom tissue culture plates Sigma-Aldrich 3799
α-IL-1β-FITC R&D IC201F
FITC isotype control Miltenyi Biotec 130-092-213
α-β-Tubulin Santa Cruz SC-9014
α-IL-1β R&D mab201
PVDF Immobilon-FL membrane Millipore IPFL00010
gradient 4-12 % polycrylamide gel Bio Rad 161-1159
laemmli sample buffer Bio Rad 161-0737
BSA Equitech Bio Inc 30% solution sterile/filtered
PFA Electron Microscopy Sciences 15710 16% solution
human inflammatory cytokine bead array kit BD 551811
nigericin Invivogen tlrl-nig
R848 3M Corp.
α-CD14 BD 340436
α-CD11c BD 555392
β-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M6250-10ML
TBS On site stock room
Tween-20 Sigma-Aldrich P2287-100mL
Nunc EasYFlask 225cm2, Filter Cap, 70mL working volume, 30/Cs Thermo Scientific 159933
20 μM Sterile Disposable Filter Units Thermo Scientific 569-0020
Gentamicin Invitrogen 15750060
Hepes Invitrogen 15630080
goat α-mouse IRDye 800CW Licor 926-32210
donkey α-rabbit IRDye 680RD Licor 926-68073
Spectra multicolor broad range protein ladder Thermo Scientific 26634
Tris Glycine SDS 10x Bio Rad 1610732
Tris Glycine 10x Bio Rad 161-0734
Methanol – 4L Fisher Scientific A433P-4
Prolong Gold antifade Reagent with DAPI Life Technologies P-36931
8 chamber polystyrene vessel tissue culture treated glass slide BD Falcon 354108
Poly-L-Lysine Sigma P4707

References

  1. Durrant, D. M., Robinette, M. L., Klein, R. S. IL-1R1 is required for dendritic cell-mediated T cell reactivation within the CNS during West Nile virus encephalitis. The Journal of Experimental Medicine. 210, 503-516 (2013).
  2. Thomas, P. G., et al. The intracellular sensor NLRP3 mediates key innate and healing responses to influenza A virus via the regulation of caspase-1. Immunity. 30, 566-575 (2009).
  3. Schmitz, N., Kurrer, M., Bachmann, M. F., Kopf, M. Interleukin-1 is responsible for acute lung immunopathology but increases survival of respiratory influenza virus infection. Journal of Virology. 79, 6441-6448 (2005).
  4. Pang, I. K., Ichinohe, T., Iwasaki, A. IL-1R signaling in dendritic cells replaces pattern-recognition receptors in promoting CD8(+) T cell responses to influenza A virus. Nat Immunol. 14, 246-253 (2013).
  5. Allen, I. C., et al. The NLRP3 inflammasome mediates in vivo innate immunity to influenza A virus through recognition of viral RNA. Immunity. 30, 556-565 (2009).
  6. Bauernfeind, F. G., et al. Cutting edge: NF-kappaB activating pattern recognition and cytokine receptors license NLRP3 inflammasome activation by regulating NLRP3 expression. J Immunol. 183, 787-791 (2009).
  7. Zabel, F., Kundig, T. M., Bachmann, M. F. Virus-induced humoral immunity: on how B cell responses are initiated. Current Opinion in Virology. , (2013).
  8. Steinman, R. M. Lasker Basic Medical Research Award. Dendritic cells: versatile controllers of the immune system. Nature Medicine. 13, 1155-1159 (2007).
  9. Bhardwaj, N., et al. Influenza virus-infected dendritic cells stimulate strong proliferative and cytolytic responses from human CD8+ T cells. The Journal of Clinical Investigation. 94, 797-807 (1994).
  10. Sheng, K. C., Day, S., Wright, M. D., Stojanovska, L., Apostolopoulos, V. Enhanced Dendritic Cell-Mediated Antigen-Specific CD4+ T Cell Responses: IFN-Gamma Aids TLR Stimulation. Journal of Drug Delivery. 2013, (2013).
  11. Pohl, C., Shishkova, J., Schneider-Schaulies, S. Viruses and dendritic cells: enemy mine. Cellular Microbiology. 9, 279-289 (2007).
  12. Dinarello, C. A. Cytokines as mediators in the pathogenesis of septic shock. Curr Top Microbiol Immunol. 216, 133-165 (1996).
  13. Petrilli, V., et al. Activation of the NALP3 inflammasome is triggered by low intracellular potassium concentration. Cell Death and Differentiation. 14, 1583-1589 (2007).
  14. Hussen, J., Duvel, A., Koy, M., Schuberth, H. J. Inflammasome activation in bovine monocytes by extracellular ATP does not require the purinergic receptor P2X7. Developmental and Comparative Immunology. 38, 312-320 (2012).
  15. Rajamaki, K., et al. Extracellular Acidosis Is a Novel Danger Signal Alerting Innate Immunity via the NLRP3 Inflammasome. The Journal of Biological Chemistry. 288, 13410-13419 (2013).
  16. Ayna, G., et al. ATP release from dying autophagic cells and their phagocytosis are crucial for inflammasome activation in macrophages. PLoS One. , (2012).
  17. Vyleta, M. L., Wong, J., Magun, B. E. Suppression of ribosomal function triggers innate immune signaling through activation of the NLRP3 inflammasome. PLoS One. 7, (2012).
  18. Lacroix-Lamande, S., et al. Downregulation of the Na/K-ATPase pump by leptospiral glycolipoprotein activates the NLRP3 inflammasome. J Immunol. 188, 2805-2814 (2012).
  19. Segovia, J., et al. TLR2/MyD88/NF-kappaB pathway, reactive oxygen species, potassium efflux activates NLRP3/ASC inflammasome during respiratory syncytial virus infection. PLoS One. 7, (2012).
  20. Hamon, M. A., Cossart, P. K. K+ efflux is required for histone H3 dephosphorylation by Listeria monocytogenes listeriolysin O and other pore-forming toxins. Infection and Immunity. 79, 2839-2846 (2011).
  21. Schorn, C., et al. Sodium overload and water influx activate the NALP3 inflammasome. The Journal of Biological Chemistry. 286, 35-41 (2011).
  22. Said-Sadier, N., Padilla, E., Langsley, G., Ojcius, D. M. Aspergillus fumigatus stimulates the NLRP3 inflammasome through a pathway requiring ROS production and the Syk tyrosine kinase. PLoS One. 5, (2010).
  23. Arlehamn, C. S., Petrilli, V., Gross, O., Tschopp, J., Evans, T. J. The role of potassium in inflammasome activation by bacteria. The Journal of Biological Chemistry. 285, 10508-10518 (2010).
  24. Chu, J., et al. Cholesterol-dependent cytolysins induce rapid release of mature IL-1beta from murine macrophages in a NLRP3 inflammasome and cathepsin B-dependent manner. Journal of Leukocyte Biology. 86, 1227-1238 (2009).
  25. Silverman, W. R., et al. The pannexin 1 channel activates the inflammasome in neurons and astrocytes. The Journal of Biological Chemistry. 284, 18143-18151 (2009).
  26. Piccini, A., et al. ATP is released by monocytes stimulated with pathogen-sensing receptor ligands and induces IL-1beta and IL-18 secretion in an autocrine way. Proc Natl Acad Sci U S A. 105, 8067-8072 (2008).
  27. Wickliffe, K. E., Leppla, S. H., Moayeri, M. Anthrax lethal toxin-induced inflammasome formation and caspase-1 activation are late events dependent on ion fluxes and the proteasome. Cellular Microbiology. 10, 332-343 (2008).
  28. Franchi, L., Kanneganti, T. D., Dubyak, G. R., Nunez, G. Differential requirement of P2X7 receptor and intracellular K+ for caspase-1 activation induced by intracellular and extracellular bacteria. The Journal of Biological Chemistry. 282, 18810-18818 (2007).
  29. Owen, D. M., Gale, M. Fighting the flu with inflammasome signaling. Immunity. 30, 476-478 (2009).
  30. Pang, I. K., Iwasaki, A. Inflammasomes as mediators of immunity against influenza virus. Trends in Immunology. 32, 34-41 (2011).
  31. Kanneganti, T. D., et al. Critical role for Cryopyrin/Nalp3 in activation of caspase-1 in response to viral infection and double-stranded RNA. The Journal of Biological Chemistry. 281, 36560-36568 (2006).
  32. Ichinohe, T., Lee, H. K., Ogura, Y., Flavell, R., Iwasaki, A. Inflammasome recognition of influenza virus is essential for adaptive immune responses. The Journal of Experimental Medicine. 206, 79-87 (2009).
  33. Ichinohe, T., Pang, I. K., Iwasaki, A. Influenza virus activates inflammasomes via its intracellular M2 ion channel. Nat Immunol. 11, 404-410 (2010).
  34. Ichinohe, T., et al. Microbiota regulates immune defense against respiratory tract influenza A virus infection. Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 5354-5359 (2011).
  35. O’Neill, D. W., Bhardwaj, N. Differentiation of peripheral blood monocytes into dendritic cells. Current Protocols in Immunology. 22, (2005).
  36. Sabado, R. L., Miller, E., Spadaccia, M., Vengco, I., Hasan, F., Bhardwaj, N. Preparation of Tumor Antigen-loaded Mature Dendritic Cells for Immunotherapy. J. Vis. Exp. (78), (2013).
  37. Rubartelli, A., Cozzolino, F., Talio, M., Sitia, R. A novel secretory pathway for interleukin-1 beta, a protein lacking a signal sequence. The EMBO Journal. 9, 1503-1510 (1990).
  38. Ritchie, H., Booth, N. A. Secretion of plasminogen activator inhibitor 2 by human peripheral blood monocytes occurs via an endoplasmic reticulum-golgi-independent pathway. Experimental Cell Research. 242, 439-450 (1998).
  39. Lamoreaux, L., Roederer, M., Koup, R. Intracellular cytokine optimization and standard operating procedure. Nature Protocols. 1, 1507-1516 (2006).
  40. He, H., Courtney, A. N., Wieder, E., Sastry, K. J. Multicolor Flow Cytometry Analyses of Cellular Immune Response in Rhesus Macaques. J Vis Exp. 38, (2010).
  41. Mahmood, T., Yang, P. C. Western blot: technique, theory, and trouble shooting. North American journal of Medical Sciences. 4, 429-434 (2012).
  42. Alegria-Schaffer, A., Lodge, A., Vattem, K. Performing and optimizing Western blots with an emphasis on chemiluminescent detection. Methods in Enzymology. 463, 573-599 (2009).
  43. Hennet, T., Ziltener, H. J., Frei, K., Peterhans, E. A kinetic study of immune mediators in the lungs of mice infected with influenza A virus. J Immunol. 149, 932-939 (1992).
  44. Pirhonen, J., Sareneva, T., Kurimoto, M., Julkunen, I., Matikainen, S. Virus infection activates IL-1 beta and IL-18 production in human macrophages by a caspase-1-dependent pathway. J Immunol. 162, 7322-7329 (1999).
  45. Anderson, J., Gustafsson, K., Himoudi, N. Licensing of killer dendritic cells in mouse and humans: functional similarities between IKDC and human blood gammadelta T-lymphocytes. Journal of Immunotoxicology. 9, 259-266 (2012).
  46. Waithman, J., Mintern, J. D. Dendritic cells and influenza A virus infection. Virulence. 3, 603-608 (2012).

Play Video

Cite This Article
Fernandez, M. V., Miller, E. A., Bhardwaj, N. Activation and Measurement of NLRP3 Inflammasome Activity Using IL-1β in Human Monocyte-derived Dendritic Cells. J. Vis. Exp. (87), e51284, doi:10.3791/51284 (2014).

View Video