Se describe un método para propagar los tumores humanos en ratones retinoblastoma. Las células tumorales se inyectan directamente en los ojos de ratones inmunes deficientes. Los tumores secundarios se han establecido con éxito utilizando las células cosechadas directamente de tumores humanos y tumorspheres cultivadas.
El cultivo de las células del tumor retinoblastoma en los medios de comunicación definidos de células madre da lugar a tumorspheres primaria que pueden ser cultivadas y se mantiene durante un tiempo limitado. Estos tumorspheres cultivadas pueden presentar fenotipos celulares muy diferentes en comparación con los tumores originales. Demostración de que las células cultivadas tienen la capacidad de formar nuevos tumores es importante asegurarse de que el modelo de las células cultivadas en la biología del tumor original.
Aquí se presenta un protocolo para la propagación de los tumores humanos in vivo con retinoblastoma Rag2 – / – ratones deficientes inmunes. Cultivadas tumorspheres retinoblastoma humanos de paso bajo o de células obtenidas de recién cosechado tumores retinoblastoma humano se inyecta directamente en la cavidad vítrea de los ojos de formar tumores murinos en 2-4 semanas. Estos tumores pueden ser cosechadas y sea más pasajes en los ojos de murino in vivo o que han crecido como tumorspheres in vitro. Propagación se ha realizado con éxito durante al menos tres pasajes, estableciendo así una fuente continua de tejidos humanos para la experimentación retinoblastoma más.
Wesley S. Bond y Wadhwa Lalita son co-autores de primera.
La técnica descrita en este documento facilita la propagación de los tumores de retinoblastoma intraocular en su entorno, intravítrea. La técnica de inyección intraocular se ha utilizado en el pasado para crear tumores de líneas celulares derivadas retinoblastoma-1, así como para entregar los vectores virales para la terapia génica 2,3 intraocular. Esta técnica ha sido utilizada con éxito para producir tumores humanos retinoblastoma mediante la inyección de las células del tumor primario y la inyección de tumorspheres así como la propagación de serie de los tumores de xenoinjerto. Evidencia visible de la formación de tumores (por lo general leucocoria) se nota por primera vez en 4 semanas, después de que la hemorragia intraocular y la distensión del globo y / o tejidos que rodean la órbita se desarrollan dentro de 5-8 semanas. Una minoría de los ratones inyectados dañar el ojo inyectado, provocando el cierre permanente de los párpados. En estos casos, la distensión es la única señal de la formación de tumores.
Establecimiento de tumores murinos xenoinjertos no ha tenido éxito con todos los tumores de retinoblastoma humanos, a pesar de la propagación de los tumores de xenoinjerto establecido es de gran éxito. Esta observación sugiere que ciertas características del tumor primario, como la agresividad y el nivel de diferenciación o de algún otro factor desconocido, pueden estar influyendo en la capacidad de estos tumores a persistir en el ambiente ocular murino.
La cantidad de tejido que pueden ser adquiridos a partir de un tumor retinoblastoma humanos es bastante pequeña, y hay importantes limitaciones en la capacidad de las células de cultivo retinoblastoma humanos in vitro, tales como tiempo de vida limitado, la pérdida de la histología del tumor sólido y cambios en el fenotipo celular. Este protocolo proporciona una forma relativamente sencilla de propagar el tumor humano y establecer un modelo murino de la enfermedad humana. Esto permite que más in vitro y la experimentación in vivo de la biología de retinoblastoma y ya el mantenimiento de la parte exterior del tumor del paciente.
The authors have nothing to disclose.
La financiación de este proyecto está a cargo de la Fundación Clayton para la Investigación y la Fundación Retina investigación.
Name | Company | Catalog # | Comments |
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Phenylephrine HCl 2.5% | Bausch & Lomb | 053-11 | Ophthalmic solution |
30-ga Needle | BD | 305128 | Regular bevel |
10-mL Luer-Lock Syringe | BD | 309604 | |
3/10-cc Insulin Syringe | BD | 328431 | |
Alcohol swabs | BD | 326895 | |
6-Well Plate, Tissue Culture-Treated | BD | 353046 | |
Proparacaine HCl 0.5% | Butler AHS | 017239 | Ophthalmic solution |
Ketamine HCl 100mg/mL | Fort Dodge | 4402A | |
10-μL Hamilton Syringe | Hamilton Company | 7648-01 | |
32-ga Hamilton Needle | Hamilton Company | 7803-04 | Custom length – 0.5″ |
Neurobasal-A Media | Invitrogen | 10888-022 | |
B-27 Supplement Minus Vitamin A, 50X | Invitrogen | 12587-010 | |
RPMI-1640 Media | Mediatech | 10-040-CV | |
Non-essential Amino Acid Solution, 100X | Mediatech | 25-025-CI | |
L-Glutamine, 100X | Mediatech | 25-005-CI | |
Disposable #11 Scalpel | Miltex | 4-411 | |
Rodent Anesthesia Combo | n/a | n/a | In-house pharmacy formulation (ketamine 37.6 mg/mL, xylazine 1.92 mg/mL, acepromazine 0.38 mg/mL) |
Recombinant Human Epidermal Growth Factor (EGF) | STEMCELL Technologies | 02633 | Reconstitute at 10 μg/mL stock solution |
Recombinant Human Basic Fibroblast Growth Factor (bFGF) | STEMCELL Technologies | 02634 | Reconstitute at 10 μg/mL stock solution |
OMS-75 Operation Microscope | Topcon Medical Systems | OMS-75 | This model has been discontinued |
10% Formalin | VWR | 95042-908 |