Summary

마우스 배아 심장에서 유전자 전달을 위한 효율적인 transgenesis 접근법

Published: May 24, 2024
doi:

Summary

이 프로토콜은 발달 중인 마우스 심장에서 심장 세포의 전기천공법 기반 형질전환(transgenesis)을 위한 상세한 방법론적 프레임워크를 제시합니다. 여기에 제공된 비디오 자산은 이 다재다능한 기술을 쉽게 배울 수 있습니다.

Abstract

포유류의 심장은 매우 다양한 전구 세포 집단을 통해 발달 중에 형성되는 복잡한 기관입니다. 이 선조들의 기원, 모집 시기, 그리고 운명은 이 기관의 적절한 발달에 매우 중요하다. 심장의 형태 형성을 관장하는 분자 메커니즘은 선천성 심장 질환과 배아 심장 재생의 발병 기전을 이해하는 데 필수적입니다. 이러한 메커니즘을 조사하기 위한 고전적 접근법은 심장 발달 중 특정 유전자의 기능을 평가하기 위해 형질전환 마우스의 생성을 사용했습니다. 그러나 마우스의 유전자 변형은 복잡하고 시간이 많이 걸리는 과정으로, 심장 발달 중 특정 유전자의 역할을 평가하기 위해 수행할 수 없는 경우가 많습니다. 이 문제를 해결하기 위해 당사는 마우스 배아 심장의 효율적인 전기천공법 및 배양을 위한 프로토콜을 개발하여 일시적인 유전자 변형을 통해 심장 발달에 관여하는 유전자의 기능 향상 또는 상실 효과를 신속하게 평가할 수 있도록 했습니다. 이 방법론을 사용하여 배아 심장에서 Meis1을 성공적으로 과발현시켰으며, 심외막 세포 형질주입을 선호하여 이 기술의 능력을 입증했습니다.

Introduction

심장은 배아 발달 과정에서 형성되는 첫 번째 기관입니다. 이 과정에는 배아의 뚜렷한 영역에서 온 전구 세포의 다양한 집단의 시공간 조정이 포함됩니다. 이 모든 것은 발달 중인 심장이 계속 뛰고 기능하는 동안 발생하며, 심장 형성에 필요한 놀라운 조정이 강조됩니다 1,2,3. 심장의 중요한 역할을 감안할 때, 세포 및 분자 수준에서의 엄격한 조절은 심장의 적절한 형성을 위해 필수적입니다 4,5. 심장 발달을 조절하는 메커니즘을 규명하는 것은 전 세계적으로 상당한 수의 환자에게 영향을 미치는 선천성 심장 질환을 밝히는 데 중요하기 때문에 매우 흥미롭습니다6. 또한, 출생 후 포유류의 심장은 성인기에 상실되거나 방해받은 재생 능력을 유지하기 때문에 심장 발달을 이해하는 것은 심장 재생을 해독하는 데 중추적인 역할을 합니다 7,8. 따라서 심장 발달의 분자 조절 인자를 해부하는 것은 선천성 심장 질환 및 심장 재생에 대한 연구 노력을 발전시키는 데 필수적입니다.

이 목표를 달성하기 위해 심장 발달 및 재생에서 심외막의 역할을 조사하는 데 점점 더 많은 관심이 쏠리고 있다9. 심외막은 포유류 심장의 가장 바깥층을 구성하는 중피 조직의 얇은 층입니다(그림 1). 최근 연구에 따르면 심장 손상 중 심외막의 중요성이 밝혀졌으며, 이 조직이 영향을 받는 부위의 심근세포에 증식 신호를 보내 손상을 완화할 수 있음을 밝혔습니다10,11. 심외막의 중요성에도 불구하고 추가적인 분자 연구를 수행하는 것은 엄청난 이질성으로 인해 어려움을 겪고 있습니다. 단일 세포 RNAseq 실험은 뚜렷한 전사체 서명 12,13,14,15,16을 가진 여러 세포 하위 집단을 수용하는 심외막의 이질성을 밝혀냈습니다. 따라서, 심장 발달의 잠재적 조절자를 스크리닝하는 전략은 심외막 전구 세포의 다양성을 수용해야 합니다.

이러한 의미에서 유전자 변형에 대한 마우스 모델의 적합성은 심장 발달에 중요한 수많은 유전자의 식별을 용이하게 하여 특정 유전자의 GOF(Gain-of-Function) 또는 LOF(Loss-of-Function)를 가진 돌연변이 계통의 생성을 가능하게 했습니다. 그러나 이러한 접근 방식은 상당한 시간과 실험 자원의 투자를 의미합니다. 따라서 많은 수의 후보 유전자의 역할을 평가할 때 실용적이지 않습니다. 게다가, 발달 유전자는 종종 다른 조직에서 다원성 기능을 발휘하거나 초기 배아 발달에 필요하여 특정 과정에서 발달에 대한 기여도를 해석하는 데 어려움을 겪습니다. 특정 구조나 발달 시점에서 유전자 기능을 표적으로 삼는 것이 가능하지만, 이를 위해서는 일반적으로 생성하기 어렵거나 일반적으로 사용할 수 없는 더 복잡한 유전자 구조를 사용해야 합니다.

이러한 한계를 극복하기 위해 우리는 일시적인 유전자 변형을 위해 쥐 배아 심장을 전기화하는 방법론을 제시합니다(그림 2). 체외 배양 및 형광 활성화 세포 분류(FACS)와 결합된 이 전략은 심장 발달 및 재생에 관여하는 잘 특성화된 유전자인 Meis1의 일시적인 GOF를 통해 그 능력을 입증합니다 17,18,19. 이 기사에서는 이 방법론의 다른 잠재적 응용 분야도 살펴보고, 장점과 한계에 대해 논의하며, 유전자 발현을 일시적으로 조절하기 위한 기존 프로토콜과 비교합니다. 우리는 제시된 프레임워크와 시각적 예가 발달 및 질병 중 심외막 생물학에 대한 이해를 향상시킬 것이라고 믿습니다.

Figure 1
그림 1: 쥐의 배아 심장층. E13-14 쥐 배아 심장의 관상도 개략도. 심장의 세 가지 주요 세포층은 노란색(심내막), 빨간색(심근), 파란색(심외막)으로 표시됩니다. 심낭은 갈색 선으로 표시됩니다. 심장의 4 개의 방은 좌심실, LV 로 약칭됩니다. RV, 우심실; LA, 왼쪽 심방; RA, 우심방. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 2
그림 2: 심장 전기천공법 프로토콜의 개략도. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Protocol

모든 동물 시술은 CNIC 동물 실험 윤리 위원회의 승인을 받았으며 Real Decreto 53/2013에 따라 스페인 법에 의해 시행되는 EU 지침 2010/63EU 및 권고안 2007/526/EC를 포함한 현행 법률을 준수했습니다. 이 프로토콜을 위해 15-21주 된 암컷 야생형 CD-1 마우스를 사용하였다. 사용된 동물, 시약 및 장비에 대한 자세한 내용은 재료 표에 나열되어 있습니다. 1. 플라스미드 및 도…

Representative Results

관련 심장 발달 조절인자에 대한 GOF(gain-of-function) 실험을 수행하는 데 있어 이 기술의 효과를 입증하기 위해 Meis1 전사 인자를 과발현하는 구조체를 전기천공했습니다. 이를 위해 E9.5 배아에서 RNA를 추출하고 역전사를 수행하여 상보적 DNA(cDNA)를 얻었습니다. cDNA를 주형으로 사용하여 Meis1 코딩 서열을 pCAG 발현 플라스미드(이하 pCAG::Meis1)로 클로닝하고(보충 표 1) 구성적 GFP …

Discussion

전반적으로, 여기에 설명된 방법론은 Meis1 과발현(그림 4C)에 의해 입증된 바와 같이 발달 중인 심외막(그림 4B)에서 형질전환 구조를 발현하기 위한 강력한 프레임워크를 제공합니다. 적절한 구조를 통해 이 프로토콜은 특정 유전자의 GOF(Gain-of-Function) 또는 LOF(Loss-of-Function)의 영향을 일시적으로 평가하는 데 사용할 수 있습니다. LOF는 RNA 간섭<sup class="xref…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구는 스페인 Ministerio de Ciencia e Innovación의 보조금 RTI2018-097617-J-I00 및 Universidad de Jaén의 Acción 9, O.H.O. 보조금 PGC2018-096486-B-I00, EU Horizon 2020 프로그램의 보조금 H2020-MSCA-ITN-2016-722427의 지원을 받았습니다. JMG는 스페인 과학부와 Fundación Severo Ochoa(PRE2022-101884)의 박사 펠로우십의 지원을 받았습니다. CNIC와 CBMSO는 모두 스페인 과학부의 지원을 받으며, CNIC는 ProCNIC 재단의 지원을 받습니다.

Materials

#55 Forceps Dumont  11295-51
12-well Clear Flat Bottom Multiwell Cell Culture Plate BD Falcon 353043
35 mm vise table  Grandado SKU 8798771617573
40 µm Cell Strainer Fischer Scientific 08-771-1
50 mL tubes BD Falcon 352070
70 µm Cell Strainer Corning CLS431751
Anti-GFP Policlonal Antibody Invitrogen A10262 1:1000 dilution used
Anti-Myosin 4 (MF20) Monoclonal Antibody Invitrogen 14-6503-82 1:500 dilution used
CD1 Wild Type mice Provided by Animalary Unit (CNIC)
Cleaved Caspase-3 (Asp175) Antibody Cell Signalling Technologies 9661 1:400 dilution used
DAPI Cell Signalling Technologies 4083 1:1000 dilution used
Dispase/collagenase Roche 10269638001
Distilled water
DMEM – Dulbecco's Modified Eagle Medium Gibco 10313021
Fetal Bovine Serum Invitrogen 10438-026
Heracell 150i CO2 Incubator Thermo Scientific 51032720
Leica Stereoscopic Microscope S8AP0 Leica 11524102
Liberase Roche 5401119001
Micropipette Puller Model P-97 Sutter Instrument SU-P-97
pCAG expression plasmid Addgene #89689
Penicillin-streptomycin Invitrogen 15070-063
Petri dishes 35 × 10 mm BD Falcon 351008
Petri dishes 60 × 15 mm BD Falcon 353002
Phenol Red Merck P3532
Pipette tips Reused from old laboratory equipment
Rat Serum culture embryo, male rats SPRAGUE DAWLEY RjHan SD Janvier Labs 9979
Recombinant anti-Wilms Tumor Protein 1 (WT1) Antibody Abcam ab89901 1:300 dilution used
Square Wave Electroporator CUY21SC Nepa Gene CUY664-10X15
Sterile PBS Provided and autoclaved by technical unit
Sucrose  Millipore 84100
Tweezer electrodes with variable gap Nepa Gene CUY650P5

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Cite This Article
Mañes-García, J., Beccari, L., Torres, M., Ocaña, O. H. An Efficient Transgenesis Approach for Gene Delivery in the Mouse Embryonic Heart. J. Vis. Exp. (207), e66754, doi:10.3791/66754 (2024).

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