Summary

Ein effizienter Transgenese-Ansatz für die Genübertragung im embryonalen Herzen der Maus

Published: May 24, 2024
doi:

Summary

Dieses Protokoll stellt einen detaillierten methodischen Rahmen für die Elektroporations-basierte Transgenese von Herzzellen in sich entwickelnden Mausherzen dar. Die hier bereitgestellten Video-Assets erleichtern das Erlernen dieser vielseitigen Technik.

Abstract

Das Säugetierherz ist ein komplexes Organ, das während der Entwicklung über sehr unterschiedliche Populationen von Vorläuferzellen gebildet wird. Die Herkunft, der Zeitpunkt der Rekrutierung und das Schicksal dieser Vorläuferzellen sind entscheidend für die richtige Entwicklung dieses Organs. Die molekularen Mechanismen, die die Morphogenese des Herzens steuern, sind essentiell für das Verständnis der Pathogenese angeborener Herzfehler und der embryonalen Herzregeneration. Klassische Ansätze zur Untersuchung dieser Mechanismen nutzten die Erzeugung transgener Mäuse, um die Funktion bestimmter Gene während der kardialen Entwicklung zu beurteilen. Die Transgenese der Maus ist jedoch ein komplexer, zeitaufwändiger Prozess, der oft nicht durchgeführt werden kann, um die Rolle bestimmter Gene während der Herzentwicklung zu beurteilen. Um dies zu beheben, haben wir ein Protokoll für die effiziente Elektroporation und Kultur von embryonalen Herzen von Mäusen entwickelt, das eine transiente Transgenese ermöglicht, um die Auswirkungen des Funktionsgewinns oder -verlusts von Genen, die an der kardialen Entwicklung beteiligt sind, schnell zu beurteilen. Mit dieser Methode haben wir erfolgreich Meis1 im embryonalen Herzen überexprimiert, mit einer Präferenz für die Epikardzelltransfektion, was die Fähigkeiten der Technik demonstriert.

Introduction

Das Herz ist das erste Organ, das während der Embryonalentwicklung gebildet wird. Dieser Prozess beinhaltet die räumlich-zeitliche Koordination verschiedener Populationen von Vorläuferzellen aus unterschiedlichen Bereichen des Embryos. All dies geschieht, während das sich entwickelnde Herz weiter schlägt und funktioniert, was die bemerkenswerte Koordination unterstreicht, die für seine Bildung erforderlich ist 1,2,3. Angesichts der entscheidenden Rolle des Herzens ist eine strenge Regulierung auf zellulärer und molekularer Ebene für seine ordnungsgemäße Bildung unerlässlich 4,5. Die Identifizierung der Mechanismen, die die Herzentwicklung steuern, war von großem Interesse, da sie für die Entschlüsselung angeborener Herzfehler von entscheidender Bedeutung sind, von denen eine beträchtliche Anzahl von Patienten weltweit betroffen ist6. Darüber hinaus ist das Verständnis der Herzentwicklung entscheidend für die Entschlüsselung der kardialen Regeneration, da postnatale Säugetierherzen eine Regenerationsfähigkeit behalten, die im Erwachsenenalter verloren geht oder behindert wird 7,8. Daher ist die Entschlüsselung molekularer Regulatoren der Herzentwicklung unerlässlich, um die Forschung zu angeborenen Herzfehlern und Herzregeneration voranzutreiben.

Um dieses Ziel zu erreichen, wurde die Rolle des Epikards bei der kardialen Entwicklung und Regeneration zunehmend in den Fokus gerückt9. Das Epikard ist eine dünne Schicht aus mesothelialem Gewebe, die die äußerste Schicht des Säugetierherzens bildet (Abbildung 1). Jüngste Studien haben die Bedeutung des Epikards bei Herzverletzungen gezeigt und gezeigt, dass dieses Gewebe in der Lage ist, Proliferationssignale an Kardiomyozyten im betroffenen Bereich zu senden, um den Schaden zu mildern10,11. Trotz der Bedeutung des Epikards wurde die Durchführung weiterer molekularer Untersuchungen durch seine immense Heterogenität erschwert. Einzelzell-RNAseq-Experimente haben die Heterogenität des Epikards gezeigt, das mehrere Zellsubpopulationen mit unterschiedlichen transkriptomischen Signaturen beherbergt 12,13,14,15,16. Daher sollte eine Strategie zum Screening potenzieller Regulatoren der kardialen Entwicklung die Vielfalt der epikardialen Vorläuferzellen berücksichtigen.

In diesem Sinne hat die Zugänglichkeit des Mausmodells für genetische Veränderungen die Identifizierung zahlreicher Gene erleichtert, die für die Herzentwicklung entscheidend sind, und die Erzeugung von Mutantenlinien mit Funktionsgewinn (GOF) oder Funktionsverlust (LOF) spezifischer Gene ermöglicht. Diese Ansätze erfordern jedoch einen erheblichen Aufwand an Zeit und experimentellen Ressourcen; Daher sind sie unpraktisch, wenn es darum geht, die Rolle einer großen Anzahl von Kandidatengenen zu beurteilen. Darüber hinaus üben Entwicklungsgene oft pleiotrope Funktionen in verschiedenen Geweben aus oder werden für die frühe Embryonalentwicklung benötigt, was die Interpretation ihres Beitrags zur Entwicklung in einem bestimmten Prozess erschwert. Es ist zwar möglich, die Genfunktion zu bestimmten Strukturen oder Zeitpunkten der Entwicklung zu steuern, aber dies erfordert in der Regel die Verwendung komplexerer genetischer Konstruktionen, die schwer zu generieren oder im Allgemeinen nicht verfügbar sind.

Um diese Einschränkungen zu überwinden, stellen wir eine Methode zur Elektroporation embryonaler Mausherzen für die transiente Transgenese vor (Abbildung 2). In Kombination mit ex vivo-Kultur und fluoreszenzaktivierter Zellsortierung (FACS) demonstriert diese Strategie ihre Fähigkeiten durch die transiente GOF von Meis1, einem gut charakterisierten Gen, das an der Herzentwicklung und -regeneration beteiligt ist 17,18,19. In diesem Artikel werden auch andere potenzielle Anwendungen dieser Methodik untersucht, ihre Vorteile und Grenzen diskutiert sowie mit bestehenden Protokollen zur transienten Modulation der Genexpression verglichen. Wir glauben, dass der Rahmen und die vorgestellten visuellen Beispiele das Verständnis der Epikardbiologie während der Entwicklung und Krankheit verbessern werden.

Figure 1
Abbildung 1: Embryonale Herzschichten der Maus. Schematische Darstellung einer koronalen Ansicht eines embryonalen Herzens einer E13-14-Maus. Die drei Hauptzellschichten des Herzens werden in Gelb (Endokard), Rot (Myokard) und Blau (Epikard) dargestellt. Das Perikard ist in einer braunen Linie dargestellt. Die vier Kammern des Herzens werden als LV, linker Ventrikel, abgekürzt; RV, rechter Ventrikel; LA, linkes Atrium; RA, rechter Vorhof. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.

Figure 2
Abbildung 2: Schematische Übersicht des Herzelektroporationsprotokolls. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.

Protocol

Alle Tierversuche wurden von der CNIC-Ethikkommission für Tierversuche genehmigt und entsprechen den geltenden Rechtsvorschriften, einschließlich der EU-Richtlinie 2010/63EU und der Empfehlung 2007/526/EG, wie sie nach spanischem Recht unter dem Real Decreto 53/2013 durchgesetzt sind. Für dieses Protokoll wurden weibliche Wildtyp-CD-1-Mäuse im Alter von 15-21 Wochen verwendet. Einzelheiten zu den verwendeten Tieren, Reagenzien und Geräten sind in der Materialtabelle aufgeführt. <p class="jove_t…

Representative Results

Um die Wirksamkeit dieser Technik bei der Durchführung von Gain-of-Function (GOF)-Experimenten für relevante Herzentwicklungsregulatoren zu demonstrieren, wurde ein Konstrukt elektroporiert, das den Transkriptionsfaktor Meis1 überexprimiert. Um dies zu erreichen, wurde RNA aus E9,5-Embryonen extrahiert und eine reverse Transkription durchgeführt, um komplementäre DNA (cDNA) zu erhalten. Unter Verwendung der cDNA als Template wurde die Meis1-kodierende Sequenz in ein pCAG-Expressions…

Discussion

Insgesamt bietet die hier beschriebene Methodik einen robusten Rahmen für die Expression transgener Konstrukte im sich entwickelnden Epikard (Abbildung 4B), wie die Überexpression von Meis1 zeigt (Abbildung 4C). Mit den entsprechenden Konstrukten kann dieses Protokoll verwendet werden, um die Auswirkungen eines bestimmten Gens auf den Funktionsgewinn (GOF) oder den Funktionsverlust (LOF) vorübergehend zu bewerten. LOF kann in die Technik implementiert werden,…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Studie wurde unterstützt durch das Stipendium RTI2018-097617-J-I00 des spanischen Ministerio de Ciencia e Innovación und Acción 9 der Universidad de Jaén an das O.H.O. Stipendium PGC2018-096486-B-I00 des spanischen Ministerio de Ciencia e Innovación und das Stipendium H2020-MSCA-ITN-2016-722427 aus dem EU Horizon 2020-Programm an M.T. JMG wurde durch ein PhD-Stipendium des spanischen Wissenschaftsministeriums und der Fundación Severo Ochoa (PRE2022-101884) unterstützt. Sowohl das CNIC als auch das CBMSO werden vom spanischen Wissenschaftsministerium unterstützt, und das CNIC wird von der ProCNIC-Stiftung unterstützt.

Materials

#55 Forceps Dumont  11295-51
12-well Clear Flat Bottom Multiwell Cell Culture Plate BD Falcon 353043
35 mm vise table  Grandado SKU 8798771617573
40 µm Cell Strainer Fischer Scientific 08-771-1
50 mL tubes BD Falcon 352070
70 µm Cell Strainer Corning CLS431751
Anti-GFP Policlonal Antibody Invitrogen A10262 1:1000 dilution used
Anti-Myosin 4 (MF20) Monoclonal Antibody Invitrogen 14-6503-82 1:500 dilution used
CD1 Wild Type mice Provided by Animalary Unit (CNIC)
Cleaved Caspase-3 (Asp175) Antibody Cell Signalling Technologies 9661 1:400 dilution used
DAPI Cell Signalling Technologies 4083 1:1000 dilution used
Dispase/collagenase Roche 10269638001
Distilled water
DMEM – Dulbecco's Modified Eagle Medium Gibco 10313021
Fetal Bovine Serum Invitrogen 10438-026
Heracell 150i CO2 Incubator Thermo Scientific 51032720
Leica Stereoscopic Microscope S8AP0 Leica 11524102
Liberase Roche 5401119001
Micropipette Puller Model P-97 Sutter Instrument SU-P-97
pCAG expression plasmid Addgene #89689
Penicillin-streptomycin Invitrogen 15070-063
Petri dishes 35 × 10 mm BD Falcon 351008
Petri dishes 60 × 15 mm BD Falcon 353002
Phenol Red Merck P3532
Pipette tips Reused from old laboratory equipment
Rat Serum culture embryo, male rats SPRAGUE DAWLEY RjHan SD Janvier Labs 9979
Recombinant anti-Wilms Tumor Protein 1 (WT1) Antibody Abcam ab89901 1:300 dilution used
Square Wave Electroporator CUY21SC Nepa Gene CUY664-10X15
Sterile PBS Provided and autoclaved by technical unit
Sucrose  Millipore 84100
Tweezer electrodes with variable gap Nepa Gene CUY650P5

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Cite This Article
Mañes-García, J., Beccari, L., Torres, M., Ocaña, O. H. An Efficient Transgenesis Approach for Gene Delivery in the Mouse Embryonic Heart. J. Vis. Exp. (207), e66754, doi:10.3791/66754 (2024).

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