Summary

Modelo de alvéolo en chip inmunocompetente para el estudio de las respuestas inmunitarias de la mucosa alveolar

Published: May 31, 2024
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Summary

Los modelos de pulmón en chip superan a los cultivos 2D tradicionales al imitar la interfaz aire-líquido y la perfusión de células endoteliales, simulando el flujo sanguíneo y el intercambio de nutrientes cruciales para los estudios de fisiología pulmonar. Esto aumenta la relevancia de la investigación pulmonar, ya que ofrece un entorno dinámico y fisiológicamente preciso para avanzar en la comprensión y el tratamiento de las infecciones respiratorias.

Abstract

Presentamos un modelo avanzado de pulmón en chip inmunocompetente diseñado para replicar la estructura y función alveolar humana. Este innovador modelo emplea un biochip perfundido microfluídicamente que admite una interfaz aire-líquido que imita el entorno en los alvéolos humanos. La ingeniería de tejidos se utiliza para integrar componentes celulares clave, incluidas las células endoteliales, los macrófagos y las células epiteliales, para crear un modelo de tejido representativo del alvéolo. El modelo facilita el examen en profundidad de las respuestas inmunitarias de la mucosa a diversos patógenos, incluidos virus, bacterias y hongos, avanzando así en nuestra comprensión de la inmunidad pulmonar. El objetivo principal de este protocolo es proporcionar detalles para establecer este modelo de alvéolo en chip como una plataforma in vitro robusta para estudios de infección, lo que permite a los investigadores observar y analizar de cerca las complejas interacciones entre los patógenos y el sistema inmunológico del huésped dentro del entorno pulmonar. Esto se logra mediante la aplicación de técnicas basadas en microfluídica para simular las condiciones fisiológicas clave de los alvéolos humanos, incluido el flujo sanguíneo y la estimulación biomecánica de las células endoteliales, junto con el mantenimiento de una interfaz aire-líquido crucial para la exposición realista de las células epiteliales al aire. El sistema modelo es compatible con una serie de ensayos estandarizados, como la tinción de inmunofluorescencia, el perfil de citocinas y el análisis de unidades formadoras de colonias (UFC)/placa, lo que permite obtener información completa sobre la dinámica inmunitaria durante la infección. El alvéolo en chip está compuesto por tipos de células esenciales, incluidas las células epiteliales pulmonares distales humanas (H441) y las células endoteliales de la vena umbilical humana (HUVEC) separadas por membranas porosas de tereftalato de polietileno (PET), con macrófagos primarios derivados de monocitos estratégicamente ubicados entre las capas epitelial y endotelial. El modelo de tejido mejora la capacidad de diseccionar y analizar los factores matizados implicados en las respuestas inmunitarias pulmonares in vitro. Como herramienta valiosa, debería contribuir al avance de la investigación pulmonar, proporcionando un modelo in vitro más preciso y dinámico para estudiar la patogénesis de las infecciones respiratorias y probar posibles intervenciones terapéuticas.

Introduction

El pulmón humano tiene un papel notable en la respiración y la defensa inmunitaria, con interacciones complejas entre las respuestas inmunitarias de la mucosa alveolar1. La capacidad de los alvéolos para crear una respuesta inmunitaria eficiente es vital para prevenir infecciones pulmonares y garantizar la salud pulmonar. Dado que los pulmones están constantemente expuestos a una amplia gama de riesgos potenciales, incluidas bacterias, virus, hongos, alergias y partículas, comprender las complejidades de las respuestas inmunitarias de la mucosa alveolar es fundamental para descubrir los mecanismos detrás de las infecciones respiratorias, los trastornos inflamatorios y el tratamientode las enfermedades pulmonares.

Para estudiar in vitro los procesos relacionados con la infección y la inflamación de las vías respiratorias, se requieren modelos que puedan imitar fielmente el medio alveolar y las respuestas inmunitarias. Los módulos de cultivo celular y animal en 2D se han utilizado durante décadas como herramientas esenciales para la investigación biomédica sobre la respuesta inmunitaria pulmonar. Sin embargo, a menudo tienen limitaciones en su potencial de traducción a situaciones humanas. Los modelos lung-on-chip pueden contribuir a llenar el vacío entre los modelos tradicionales in vitro e in vivo y proporcionar un enfoque novedoso para estudiar las respuestas inmunitarias específicas de los humanos 2,3. Los modelos de pulmón en chip pueden imitar la interfaz aire-líquido, que es necesaria para que las células pulmonares recapitulen las condiciones fisiológicas del tracto respiratorio y desarrollen un modelo de tejido más preciso y robusto. Esta técnica de cultivo permite un examen preciso de la diferenciación, el funcionamiento y las respuestas celulares a fármacos o estímulos relacionados con enfermedades in vitro2.

En este estudio, presentamos un modelo basado en microfluídica del alvéolo humano como una herramienta eficaz para recapitular el medio alveolar humano mediante la aplicación de perfusión para imitar el flujo sanguíneo y la estimulación biomecánica de las células endoteliales e incorporando una interfaz aire-líquido con células epiteliales expuestas hacia una fasede aire 4. Hemos desarrollado un alvéolo microfluídico perfundido en chip que imita la estructura física y las interacciones biológicas del alvéolo humano, con un enfoque particular en la interfaz aire-líquido. Esta interfaz desempeña un papel crucial en la diferenciación de las células epiteliales respiratorias, que es esencial para modelar con precisión el entorno pulmonar. El modelo utiliza células epiteliales pulmonares distales humanas (H441) y células endoteliales de la vena umbilical humana (HUVEC), separadas por membranas porosas de tereftalato de polietileno (PET), con macrófagos primarios derivados de monocitos colocados entre las capas celulares. Esta configuración replica la intrincada disposición celular del alvéolo y es fundamental para simular con precisión la interfaz aire-líquido, que es un factor importante en la función fisiológica del tejido pulmonar.

La razón de ser del desarrollo del modelo se extiende a la integración de las células inmunitarias circulantes y residentes en los tejidos. Este enfoque está diseñado para imitar con precisión la respuesta inflamatoria del huésped a las infecciones respiratorias humanas, proporcionando un entorno dinámico para estudiar las interacciones patógeno-huésped. La presencia de macrófagos permite examinar las respuestas inmunitarias inmediatas y su interacción con los patógenos, lo que refleja la primera línea de defensa contra las infecciones respiratorias. Además, el diseño de la plataforma de biochip facilita la manipulación cómoda y precisa de las señales biofísicas y bioquímicas, lo que es crucial para replicar la función de los alvéolos in vitro. Esta flexibilidad es fundamental para diseccionar los factores que contribuyen a las infecciones humanas, lo que permite a los investigadores ajustar las condiciones para reflejar diversos estados de enfermedad o probar posibles intervenciones terapéuticas. La compatibilidad de la plataforma con múltiples tecnologías de lectura, incluida la microscopía avanzada, los análisis microbiológicos y el análisis bioquímico de efluentes, mejora su utilidad. Estas capacidades permiten una evaluación exhaustiva de la respuesta de los tejidos a las infecciones, incluida la evaluación del comportamiento celular, la proliferación de patógenos y la eficacia de las respuestas inmunitarias.

Presentamos un protocolo detallado y técnicas para crear y utilizar un modelo de alvéolo humano en chip centrado en replicar la interfaz aire-líquido e integrar células inmunitarias para estudiar las infecciones humanas in vitro.

Protocol

Las células HUVEC se aíslan de los cordones umbilicales y se utilizan hasta el paso 4. Los monocitos primarios se aíslan de donantes sanos a partir de sangre entera. El estudio fue aprobado por el comité de ética del Hospital Universitario de Jena, Jena, Alemania (3939-12/13). De acuerdo con la Declaración de Helsinki, todas las personas que donaron células para el estudio dieron su consentimiento informado. 1. Día 1: Preparación del biochip Los biochips est…

Representative Results

Un examen de las alteraciones morfológicas y la expresión de proteínas marcadoras podría realizarse mediante tinción de inmunofluorescencia. Después de co-cultivar durante 14 días, los lados vascular y epitelial se analizan para la expresión de los marcadores celulares respectivos. Este método es útil para estudiar las interacciones y la integridad de los componentes vasculares y epiteliales, lo cual es esencial para el modelado de enfermedades como una lectura biológica funcional relacionada con la infección…

Discussion

El modelo de alvéolo en chip representa un modelo de tejido multicapa del alvéolo humano, que integra tipos de células esenciales del tracto respiratorio inferior, incluidas las células epiteliales pulmonares, las células endoteliales y los macrófagos, cultivadas en una disposición organotípica en un ALI con perfusión media del revestimiento endotelial. Las células de diferentes capas expresan proteínas marcadoras celulares específicas, como la E-cadherina, una molécula de adhesión dependiente del calcio de…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

H.K. y A.S.M. reconocen la financiación del Leibniz Science-Campus InfectoOptics Jena, financiada por la línea de financiación Strategic Networking de la Asociación Leibniz. M.A. y A.S.M. recibieron el apoyo del proyecto IMPROVE del IGF, financiado por el Ministerio Federal de Economía y Energía sobre la base de una resolución del Bundestag alemán. A.S.M agradece además el apoyo financiero del Clúster de Excelencia Balance of the Microverse en el marco de la Estrategia de Excelencia de Alemania – EXC 2051 – Project-ID 690 390713860.

Materials

Consumables
Cellcounting chamber slides (Countess) Invitrogen C10283
Cell culture Multiwell Plates, 24 Well, steril Greiner Bio-One 662 160
Cell culture Multiwell Plates, 6 Well, steril Greiner Bio-One 657 160
Coverslips (24x40mm; #1.5) Menzel-Gläser 15747592
Eco wipes Dr. Schuhmacher 00-915-REW10003-01
Eppies 2.0 Sarstedt 72.691
Eppis 0.5 Sarstedt 72.699
Eppis 1.5 Sarstedt 72.690.001
Falcons 15mL Greiner Bio-One 188 271-TRI
Falcons 50mL Greiner Bio-One 227 261-TRI
Gauze swab Noba PZN 2417767
Gloves Nitril 3000 Meditrade 1280
Microscope slides Menzel-Gläser AAAA000001##12E
Multiwell Plates 24 Well, sterile Greiner Bio-One 662 160
Pasteur pipettes (glass) 150mm Assistent 40567001
Pasteur pipettes (glass) 230mm Assistent 40567002
Round-bottom tubes (PS, 5mL) Falcon 352052
Safety-Multifly-Set, 20G, 200mm Sarstedt 85.1637.235
Scalpels Dahlhausen 11.000.00.715
Serological pipettes 10mL Greiner Bio-One 607 160-TRI
Serological pipettes 25mL Greiner Bio-One 760 160-TRI
Serological pipettes 2mL Greiner Bio-One 710 160-TRI
Serological pipettes 50mL Greiner Bio-One 768 160-TRI
Serological pipettes 5mL Greiner Bio-One 606 160-TRI
S-Monovette, 7,5ml Z-Gel Sarstedt 1.1602
S-Monovette, 9,0ml K3E Sarstedt 02.1066.001
Softasept N Braun 3887138
T25 flask Greiner Bio-One 690 960
Tips sterile 10µL Greiner Bio-One 771 261
Tips sterile 1250µL Greiner Bio-One 750 261
Tips sterile 300µL Greiner Bio-One 738 261
Tips unsterile 10µL Greiner Bio-One 765 290
Tips unsterile 1000µL Greiner Bio-One 739 291
Tips unsterile 200µL Greiner Bio-One 686 290
Tweezers (Präzisionspinzette DUMONT abgewinkelt Inox08, 5/45, 0,06 mm) Roth K343.1
Chemicals
Descosept AF Dr. Schuhmacher N-20338
Ethanol 96% Nordbrand-Nordhausen 410
Fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran (3-5kDa) Sigma Aldrich FD4-100MG
Fluorescent Mounting Medium Dako S3023
Methanol VWR 20847.295
Saponin Fluka 47036
Tergazyme Alconox 1304-1
Cell culture
Collagen IV Sigma-Aldrich C5533-5MG
Dexametason Sigma-Aldrich D4902
DPBS (-/-) Lonza BE17-516F
DPBS (+/+) Lonza BE17-513F
EDTA solution Sigma-Aldrich E788S
Endothelial Cell Growth Medium Promocell C-22020
Endothelial Cell Growth Medium supplement mix Promocell C-39225
Fetal bovine Serum Sigma-Aldrich E2129-10g
H441 ATCC
Human recombinant GM-CSF Peprotech 300-30
Lidocain Sigma-Aldrich L5647-15G
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15140-122 /-163
RPMI Gibco 72400047
Trypane blue stain 0.4% Invitrogen T10282
Trypsin Gibco 15090-046
Primary antibodies
Cadherin-5 / VE-Cadherin (goat) BD 610252
CD68 (rabbit) CellSignaling 76437
E-Cadherin (goat) R&D AF748
SP-A (mouse) Abcam ab51891
Secondary antibodies
AF488 (donkey anti mouse) Invitrogen R37114
AF647 (donkey anti mouse) invitrogen A31571
AF647 (donkey anti rabbit) Invitrogen A31573
Cy3 (donkey anti goat) jackson research 705-165-147
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dilactate) Invitrogen D3571
Microfluidic
Chip Dynamic 42 BC002
Male Luer Lock (small) ChipShop 09-0503-0270-09
Male mini luer plugs, row of four,PP, green Microfluidic chipshop 09-0558-0336-11
Male mini luer plugs, row of four,PP, opaque Microfluidic chipshop 09-0556-0336-09
Male mini luer plugs, row of four,PP, red Microfluidic chipshop 09-0557-0336-10
Plugs Cole Parmer GZ-45555-56
Reservoir 4.5mL ChipShop 16-0613-0233-09
Tubing Dynamic 42 ST001
Equipment
Autoclave Tuttnauer 5075 ELV
Centrifuge Eppendorf 5424
CO2 Incubator Heracell 150i
Countess automated cell counter Invitrogen C10227
Flowcytometer BD FACS Canto II
Freezer (-20 °C) Liebherr LCexv 4010
Freezer (-80 °C) Heraeus Herafreeze HFU 686
Fridge Liebherr LCexv 4010
Heraeus Multifuge Thermo Scientific X3R
Microscope Leica DM IL LED
Orbital shaker Heidolph Reax2000
Peristaltic pump REGLO Digital MS-4/12 ISM597D
Pipettes 10µL Eppendorf Research plus 3123000020
Pipettes 100µL Eppendorf Research plus 3123000047
Pipettes 1000µL Eppendorf Research plus 3123000063
Pipettes 2.5µL Eppendorf Research plus 3123000012
Pipettes 20µL Eppendorf Research plus 3123000039
Pipettes 200µL Eppendorf Research plus 3123000055
Scale Sartorius 6101
Scale Sartorius TE1245
Sterile bench Kojair Biowizard SL-130
Waterbath Julabo SW-20C
Fluorescence Microscope Setup
Apotome.2 Zeiss
Illumination device Zeiss HXP 120 C
Microscope Zeiss Axio Observer 5
Optical Sectioning Zeiss ApoTome
Power Supply Microscope Zeiss Eplax Vp232
Software
ZEN Blue Edition Zeiss

References

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Cite This Article
Koceva, H., Amiratashani, M., Rennert, K., Mosig, A. S. Immunocompetent Alveolus-on-Chip Model for Studying Alveolar Mucosal Immune Responses. J. Vis. Exp. (207), e66602, doi:10.3791/66602 (2024).

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