Los modelos de pulmón en chip superan a los cultivos 2D tradicionales al imitar la interfaz aire-líquido y la perfusión de células endoteliales, simulando el flujo sanguíneo y el intercambio de nutrientes cruciales para los estudios de fisiología pulmonar. Esto aumenta la relevancia de la investigación pulmonar, ya que ofrece un entorno dinámico y fisiológicamente preciso para avanzar en la comprensión y el tratamiento de las infecciones respiratorias.
Presentamos un modelo avanzado de pulmón en chip inmunocompetente diseñado para replicar la estructura y función alveolar humana. Este innovador modelo emplea un biochip perfundido microfluídicamente que admite una interfaz aire-líquido que imita el entorno en los alvéolos humanos. La ingeniería de tejidos se utiliza para integrar componentes celulares clave, incluidas las células endoteliales, los macrófagos y las células epiteliales, para crear un modelo de tejido representativo del alvéolo. El modelo facilita el examen en profundidad de las respuestas inmunitarias de la mucosa a diversos patógenos, incluidos virus, bacterias y hongos, avanzando así en nuestra comprensión de la inmunidad pulmonar. El objetivo principal de este protocolo es proporcionar detalles para establecer este modelo de alvéolo en chip como una plataforma in vitro robusta para estudios de infección, lo que permite a los investigadores observar y analizar de cerca las complejas interacciones entre los patógenos y el sistema inmunológico del huésped dentro del entorno pulmonar. Esto se logra mediante la aplicación de técnicas basadas en microfluídica para simular las condiciones fisiológicas clave de los alvéolos humanos, incluido el flujo sanguíneo y la estimulación biomecánica de las células endoteliales, junto con el mantenimiento de una interfaz aire-líquido crucial para la exposición realista de las células epiteliales al aire. El sistema modelo es compatible con una serie de ensayos estandarizados, como la tinción de inmunofluorescencia, el perfil de citocinas y el análisis de unidades formadoras de colonias (UFC)/placa, lo que permite obtener información completa sobre la dinámica inmunitaria durante la infección. El alvéolo en chip está compuesto por tipos de células esenciales, incluidas las células epiteliales pulmonares distales humanas (H441) y las células endoteliales de la vena umbilical humana (HUVEC) separadas por membranas porosas de tereftalato de polietileno (PET), con macrófagos primarios derivados de monocitos estratégicamente ubicados entre las capas epitelial y endotelial. El modelo de tejido mejora la capacidad de diseccionar y analizar los factores matizados implicados en las respuestas inmunitarias pulmonares in vitro. Como herramienta valiosa, debería contribuir al avance de la investigación pulmonar, proporcionando un modelo in vitro más preciso y dinámico para estudiar la patogénesis de las infecciones respiratorias y probar posibles intervenciones terapéuticas.
El pulmón humano tiene un papel notable en la respiración y la defensa inmunitaria, con interacciones complejas entre las respuestas inmunitarias de la mucosa alveolar1. La capacidad de los alvéolos para crear una respuesta inmunitaria eficiente es vital para prevenir infecciones pulmonares y garantizar la salud pulmonar. Dado que los pulmones están constantemente expuestos a una amplia gama de riesgos potenciales, incluidas bacterias, virus, hongos, alergias y partículas, comprender las complejidades de las respuestas inmunitarias de la mucosa alveolar es fundamental para descubrir los mecanismos detrás de las infecciones respiratorias, los trastornos inflamatorios y el tratamientode las enfermedades pulmonares.
Para estudiar in vitro los procesos relacionados con la infección y la inflamación de las vías respiratorias, se requieren modelos que puedan imitar fielmente el medio alveolar y las respuestas inmunitarias. Los módulos de cultivo celular y animal en 2D se han utilizado durante décadas como herramientas esenciales para la investigación biomédica sobre la respuesta inmunitaria pulmonar. Sin embargo, a menudo tienen limitaciones en su potencial de traducción a situaciones humanas. Los modelos lung-on-chip pueden contribuir a llenar el vacío entre los modelos tradicionales in vitro e in vivo y proporcionar un enfoque novedoso para estudiar las respuestas inmunitarias específicas de los humanos 2,3. Los modelos de pulmón en chip pueden imitar la interfaz aire-líquido, que es necesaria para que las células pulmonares recapitulen las condiciones fisiológicas del tracto respiratorio y desarrollen un modelo de tejido más preciso y robusto. Esta técnica de cultivo permite un examen preciso de la diferenciación, el funcionamiento y las respuestas celulares a fármacos o estímulos relacionados con enfermedades in vitro2.
En este estudio, presentamos un modelo basado en microfluídica del alvéolo humano como una herramienta eficaz para recapitular el medio alveolar humano mediante la aplicación de perfusión para imitar el flujo sanguíneo y la estimulación biomecánica de las células endoteliales e incorporando una interfaz aire-líquido con células epiteliales expuestas hacia una fasede aire 4. Hemos desarrollado un alvéolo microfluídico perfundido en chip que imita la estructura física y las interacciones biológicas del alvéolo humano, con un enfoque particular en la interfaz aire-líquido. Esta interfaz desempeña un papel crucial en la diferenciación de las células epiteliales respiratorias, que es esencial para modelar con precisión el entorno pulmonar. El modelo utiliza células epiteliales pulmonares distales humanas (H441) y células endoteliales de la vena umbilical humana (HUVEC), separadas por membranas porosas de tereftalato de polietileno (PET), con macrófagos primarios derivados de monocitos colocados entre las capas celulares. Esta configuración replica la intrincada disposición celular del alvéolo y es fundamental para simular con precisión la interfaz aire-líquido, que es un factor importante en la función fisiológica del tejido pulmonar.
La razón de ser del desarrollo del modelo se extiende a la integración de las células inmunitarias circulantes y residentes en los tejidos. Este enfoque está diseñado para imitar con precisión la respuesta inflamatoria del huésped a las infecciones respiratorias humanas, proporcionando un entorno dinámico para estudiar las interacciones patógeno-huésped. La presencia de macrófagos permite examinar las respuestas inmunitarias inmediatas y su interacción con los patógenos, lo que refleja la primera línea de defensa contra las infecciones respiratorias. Además, el diseño de la plataforma de biochip facilita la manipulación cómoda y precisa de las señales biofísicas y bioquímicas, lo que es crucial para replicar la función de los alvéolos in vitro. Esta flexibilidad es fundamental para diseccionar los factores que contribuyen a las infecciones humanas, lo que permite a los investigadores ajustar las condiciones para reflejar diversos estados de enfermedad o probar posibles intervenciones terapéuticas. La compatibilidad de la plataforma con múltiples tecnologías de lectura, incluida la microscopía avanzada, los análisis microbiológicos y el análisis bioquímico de efluentes, mejora su utilidad. Estas capacidades permiten una evaluación exhaustiva de la respuesta de los tejidos a las infecciones, incluida la evaluación del comportamiento celular, la proliferación de patógenos y la eficacia de las respuestas inmunitarias.
Presentamos un protocolo detallado y técnicas para crear y utilizar un modelo de alvéolo humano en chip centrado en replicar la interfaz aire-líquido e integrar células inmunitarias para estudiar las infecciones humanas in vitro.
El modelo de alvéolo en chip representa un modelo de tejido multicapa del alvéolo humano, que integra tipos de células esenciales del tracto respiratorio inferior, incluidas las células epiteliales pulmonares, las células endoteliales y los macrófagos, cultivadas en una disposición organotípica en un ALI con perfusión media del revestimiento endotelial. Las células de diferentes capas expresan proteínas marcadoras celulares específicas, como la E-cadherina, una molécula de adhesión dependiente del calcio de…
The authors have nothing to disclose.
H.K. y A.S.M. reconocen la financiación del Leibniz Science-Campus InfectoOptics Jena, financiada por la línea de financiación Strategic Networking de la Asociación Leibniz. M.A. y A.S.M. recibieron el apoyo del proyecto IMPROVE del IGF, financiado por el Ministerio Federal de Economía y Energía sobre la base de una resolución del Bundestag alemán. A.S.M agradece además el apoyo financiero del Clúster de Excelencia Balance of the Microverse en el marco de la Estrategia de Excelencia de Alemania – EXC 2051 – Project-ID 690 390713860.
Consumables | ||
Cellcounting chamber slides (Countess) | Invitrogen | C10283 |
Cell culture Multiwell Plates, 24 Well, steril | Greiner Bio-One | 662 160 |
Cell culture Multiwell Plates, 6 Well, steril | Greiner Bio-One | 657 160 |
Coverslips (24x40mm; #1.5) | Menzel-Gläser | 15747592 |
Eco wipes | Dr. Schuhmacher | 00-915-REW10003-01 |
Eppies 2.0 | Sarstedt | 72.691 |
Eppis 0.5 | Sarstedt | 72.699 |
Eppis 1.5 | Sarstedt | 72.690.001 |
Falcons 15mL | Greiner Bio-One | 188 271-TRI |
Falcons 50mL | Greiner Bio-One | 227 261-TRI |
Gauze swab | Noba | PZN 2417767 |
Gloves Nitril 3000 | Meditrade | 1280 |
Microscope slides | Menzel-Gläser | AAAA000001##12E |
Multiwell Plates 24 Well, sterile | Greiner Bio-One | 662 160 |
Pasteur pipettes (glass) 150mm | Assistent | 40567001 |
Pasteur pipettes (glass) 230mm | Assistent | 40567002 |
Round-bottom tubes (PS, 5mL) | Falcon | 352052 |
Safety-Multifly-Set, 20G, 200mm | Sarstedt | 85.1637.235 |
Scalpels | Dahlhausen | 11.000.00.715 |
Serological pipettes 10mL | Greiner Bio-One | 607 160-TRI |
Serological pipettes 25mL | Greiner Bio-One | 760 160-TRI |
Serological pipettes 2mL | Greiner Bio-One | 710 160-TRI |
Serological pipettes 50mL | Greiner Bio-One | 768 160-TRI |
Serological pipettes 5mL | Greiner Bio-One | 606 160-TRI |
S-Monovette, 7,5ml Z-Gel | Sarstedt | 1.1602 |
S-Monovette, 9,0ml K3E | Sarstedt | 02.1066.001 |
Softasept N | Braun | 3887138 |
T25 flask | Greiner Bio-One | 690 960 |
Tips sterile 10µL | Greiner Bio-One | 771 261 |
Tips sterile 1250µL | Greiner Bio-One | 750 261 |
Tips sterile 300µL | Greiner Bio-One | 738 261 |
Tips unsterile 10µL | Greiner Bio-One | 765 290 |
Tips unsterile 1000µL | Greiner Bio-One | 739 291 |
Tips unsterile 200µL | Greiner Bio-One | 686 290 |
Tweezers (Präzisionspinzette DUMONT abgewinkelt Inox08, 5/45, 0,06 mm) | Roth | K343.1 |
Chemicals | ||
Descosept AF | Dr. Schuhmacher | N-20338 |
Ethanol 96% | Nordbrand-Nordhausen | 410 |
Fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran (3-5kDa) | Sigma Aldrich | FD4-100MG |
Fluorescent Mounting Medium | Dako | S3023 |
Methanol | VWR | 20847.295 |
Saponin | Fluka | 47036 |
Tergazyme | Alconox | 1304-1 |
Cell culture | ||
Collagen IV | Sigma-Aldrich | C5533-5MG |
Dexametason | Sigma-Aldrich | D4902 |
DPBS (-/-) | Lonza | BE17-516F |
DPBS (+/+) | Lonza | BE17-513F |
EDTA solution | Sigma-Aldrich | E788S |
Endothelial Cell Growth Medium | Promocell | C-22020 |
Endothelial Cell Growth Medium supplement mix | Promocell | C-39225 |
Fetal bovine Serum | Sigma-Aldrich | E2129-10g |
H441 | ATCC | |
Human recombinant GM-CSF | Peprotech | 300-30 |
Lidocain | Sigma-Aldrich | L5647-15G |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Gibco | 15140-122 /-163 |
RPMI | Gibco | 72400047 |
Trypane blue stain 0.4% | Invitrogen | T10282 |
Trypsin | Gibco | 15090-046 |
Primary antibodies | ||
Cadherin-5 / VE-Cadherin (goat) | BD | 610252 |
CD68 (rabbit) | CellSignaling | 76437 |
E-Cadherin (goat) | R&D | AF748 |
SP-A (mouse) | Abcam | ab51891 |
Secondary antibodies | ||
AF488 (donkey anti mouse) | Invitrogen | R37114 |
AF647 (donkey anti mouse) | invitrogen | A31571 |
AF647 (donkey anti rabbit) | Invitrogen | A31573 |
Cy3 (donkey anti goat) | jackson research | 705-165-147 |
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dilactate) | Invitrogen | D3571 |
Microfluidic | ||
Chip | Dynamic 42 | BC002 |
Male Luer Lock (small) | ChipShop | 09-0503-0270-09 |
Male mini luer plugs, row of four,PP, green | Microfluidic chipshop | 09-0558-0336-11 |
Male mini luer plugs, row of four,PP, opaque | Microfluidic chipshop | 09-0556-0336-09 |
Male mini luer plugs, row of four,PP, red | Microfluidic chipshop | 09-0557-0336-10 |
Plugs | Cole Parmer | GZ-45555-56 |
Reservoir 4.5mL | ChipShop | 16-0613-0233-09 |
Tubing | Dynamic 42 | ST001 |
Equipment | ||
Autoclave | Tuttnauer | 5075 ELV |
Centrifuge | Eppendorf | 5424 |
CO2 Incubator | Heracell | 150i |
Countess automated cell counter | Invitrogen | C10227 |
Flowcytometer | BD | FACS Canto II |
Freezer (-20 °C) | Liebherr | LCexv 4010 |
Freezer (-80 °C) | Heraeus | Herafreeze HFU 686 |
Fridge | Liebherr | LCexv 4010 |
Heraeus Multifuge | Thermo Scientific | X3R |
Microscope | Leica | DM IL LED |
Orbital shaker | Heidolph | Reax2000 |
Peristaltic pump | REGLO Digital MS-4/12 | ISM597D |
Pipettes 10µL | Eppendorf Research plus | 3123000020 |
Pipettes 100µL | Eppendorf Research plus | 3123000047 |
Pipettes 1000µL | Eppendorf Research plus | 3123000063 |
Pipettes 2.5µL | Eppendorf Research plus | 3123000012 |
Pipettes 20µL | Eppendorf Research plus | 3123000039 |
Pipettes 200µL | Eppendorf Research plus | 3123000055 |
Scale | Sartorius | 6101 |
Scale | Sartorius | TE1245 |
Sterile bench | Kojair | Biowizard SL-130 |
Waterbath | Julabo | SW-20C |
Fluorescence Microscope Setup | ||
Apotome.2 | Zeiss | |
Illumination device | Zeiss | HXP 120 C |
Microscope | Zeiss | Axio Observer 5 |
Optical Sectioning | Zeiss | ApoTome |
Power Supply Microscope | Zeiss | Eplax Vp232 |
Software | ||
ZEN Blue Edition | Zeiss |