Summary

Modèle d’alvéole sur puce immunocompétent pour l’étude des réponses immunitaires de la muqueuse alvéolaire

Published: May 31, 2024
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Summary

Les modèles de poumons sur puce surpassent les cultures 2D traditionnelles en imitant l’interface air-liquide et la perfusion de cellules endothéliales, simulant le flux sanguin et l’échange de nutriments essentiels pour les études de physiologie pulmonaire. Cela renforce la pertinence de la recherche pulmonaire, en offrant un environnement dynamique et physiologiquement précis pour faire progresser la compréhension et le traitement des infections respiratoires.

Abstract

Nous présentons un modèle avancé de poumon sur puce immunocompétent conçu pour reproduire la structure et la fonction alvéolaires humaines. Ce modèle innovant utilise une biopuce perfusée microfluidique qui prend en charge une interface air-liquide imitant l’environnement dans les alvéoles humaines. L’ingénierie tissulaire est utilisée pour intégrer des composants cellulaires clés, notamment des cellules endothéliales, des macrophages et des cellules épithéliales, afin de créer un modèle tissulaire représentatif de l’alvéole. Le modèle facilite l’examen approfondi des réponses immunitaires de la muqueuse à divers agents pathogènes, notamment les virus, les bactéries et les champignons, faisant ainsi progresser notre compréhension de l’immunité pulmonaire. L’objectif principal de ce protocole est de fournir des détails pour établir ce modèle d’alvéole sur puce en tant que plate-forme in vitro robuste pour les études d’infection, permettant aux chercheurs d’observer et d’analyser de près les interactions complexes entre les agents pathogènes et le système immunitaire de l’hôte dans l’environnement pulmonaire. Ceci est réalisé grâce à l’application de techniques basées sur la microfluidique pour simuler les conditions physiologiques clés des alvéoles humaines, y compris le flux sanguin et la stimulation biomécanique des cellules endothéliales, tout en maintenant une interface air-liquide cruciale pour l’exposition réaliste des cellules épithéliales à l’air. Le système de modèle est compatible avec une gamme de tests standardisés, tels que la coloration par immunofluorescence, le profilage des cytokines et l’analyse des unités formant des colonies (UFC)/plaques, ce qui permet d’obtenir des informations complètes sur la dynamique immunitaire pendant l’infection. L’alvéole sur puce est composée de types de cellules essentiels, y compris les cellules épithéliales pulmonaires distales humaines (H441) et les cellules endothéliales de la veine ombilicale humaine (HUVEC) séparées par des membranes poreuses en polyéthylène téréphtalate (PET), avec des macrophages primaires dérivés de monocytes stratégiquement positionnés entre les couches épithéliales et endothéliales. Le modèle tissulaire améliore la capacité de disséquer et d’analyser les facteurs nuancés impliqués dans les réponses immunitaires pulmonaires in vitro. En tant qu’outil précieux, il devrait contribuer à l’avancement de la recherche sur les maladies pulmonaires, en fournissant un modèle in vitro plus précis et plus dynamique pour étudier la pathogenèse des infections respiratoires et tester des interventions thérapeutiques potentielles.

Introduction

Le poumon humain joue un rôle remarquable dans la respiration et la défense immunitaire, avec des interactions complexes entre les réponses immunitaires de la muqueuse alvéolaire1. La capacité des alvéoles à créer une réponse immunitaire efficace est essentielle pour prévenir les infections pulmonaires et assurer la santé pulmonaire. Étant donné que les poumons sont constamment exposés à un large éventail de risques potentiels, notamment les bactéries, les virus, les champignons, les allergies et les particules, il est essentiel de comprendre les complexités des réponses immunitaires de la muqueuse alvéolaire pour découvrir les mécanismes à l’origine des infections respiratoires, des troubles inflammatoires et du traitement des maladies pulmonaires1.

Pour étudier in vitro les processus liés à l’infection et à l’inflammation des voies respiratoires, il est nécessaire d’utiliser des modèles capables d’imiter fidèlement le milieu alvéolaire et les réponses immunitaires. La culture cellulaire 2D et les modules animaux sont utilisés depuis des décennies comme outils essentiels pour la recherche biomédicale sur la réponse immunitaire pulmonaire. Cependant, ils ont souvent des limites dans leur potentiel de traduction dans des situations humaines. Les modèles de poumons sur puce peuvent contribuer à combler le vide entre les modèles in vitro et in vivo traditionnels et fournir une nouvelle approche pour étudier les réponses immunitaires spécifiques à l’homme 2,3. Les modèles de poumons sur puce peuvent imiter l’interface air-liquide, qui est nécessaire aux cellules pulmonaires pour récapituler les conditions physiologiques des voies respiratoires et développer un modèle tissulaire plus précis et plus robuste. Cette technique de culture permet d’examiner avec précision la différenciation cellulaire, le fonctionnement et les réponses aux médicaments ou aux stimuli liés à la maladie in vitro2.

Dans cette étude, nous présentons un modèle microfluidique de l’alvéole humaine comme outil efficace pour récapituler le milieu alvéolaire humain en appliquant une perfusion pour imiter le flux sanguin et une stimulation biomécanique des cellules endothéliales et en incorporant une interface air-liquide avec des cellules épithéliales exposées vers une phase4 de l’air. Nous avons développé une alvéole microfluidique perfusée sur puce qui imite la structure physique et les interactions biologiques de l’alvéole humaine, en mettant l’accent sur l’interface air-liquide. Cette interface joue un rôle crucial dans la différenciation des cellules épithéliales respiratoires, ce qui est essentiel pour modéliser avec précision l’environnement pulmonaire. Le modèle utilise des cellules épithéliales pulmonaires distales humaines (H441) et des cellules endothéliales de la veine ombilicale humaine (HUVEC), séparées par des membranes poreuses en polyéthylène téréphtalate (PET), avec des macrophages primaires dérivés de monocytes positionnés entre les couches cellulaires. Cette configuration reproduit l’arrangement cellulaire complexe de l’alvéole et est essentielle pour simuler avec précision l’interface air-liquide, qui est un facteur important dans la fonction physiologique du tissu pulmonaire.

La raison d’être du développement du modèle s’étend à l’intégration des cellules immunitaires circulantes et tissulaires. Cette approche est conçue pour imiter avec précision la réponse inflammatoire de l’hôte aux infections respiratoires humaines, fournissant un environnement dynamique pour étudier les interactions pathogène-hôte. La présence de macrophages permet d’examiner les réponses immunitaires immédiates et leur interaction avec les agents pathogènes, reflétant la première ligne de défense contre les infections respiratoires. De plus, la conception de la plate-forme de biopuce facilite la manipulation pratique et précise des signaux biophysiques et biochimiques, ce qui est crucial pour reproduire la fonction de l’alvéole in vitro. Cette flexibilité est essentielle pour disséquer les facteurs contribuant aux infections humaines, ce qui permet aux chercheurs d’ajuster les conditions pour refléter divers états pathologiques ou de tester des interventions thérapeutiques potentielles. La compatibilité de la plate-forme avec de multiples technologies de lecture, notamment la microscopie avancée, les analyses microbiologiques et l’analyse des effluents biochimiques, renforce son utilité. Ces capacités permettent une évaluation complète de la réponse tissulaire aux infections, y compris l’évaluation du comportement cellulaire, de la prolifération des agents pathogènes et de l’efficacité des réponses immunitaires.

Nous présentons un protocole et des techniques détaillés pour créer et utiliser un modèle d’alvéole humaine sur puce axé sur la réplication de l’interface air-liquide et l’intégration de cellules immunitaires pour étudier les infections humaines in vitro.

Protocol

Les cellules HUVEC sont isolées des cordons ombilicaux et utilisées jusqu’au passage 4. Les monocytes primaires sont isolés à partir de donneurs sains à partir de sang total. L’étude a été approuvée par le comité d’éthique de l’hôpital universitaire d’Iéna, Iéna, Allemagne (3939-12/13). Selon la Déclaration d’Helsinki, toutes les personnes qui ont donné des cellules pour l’étude ont donné leur consentement éclairé. 1. Jour 1 : Préparation de la biopuce<…

Representative Results

Un examen des altérations morphologiques et de l’expression des protéines marqueurs pourrait être effectué à l’aide de la coloration par immunofluorescence. Après une co-culture de 14 jours, les côtés vasculaire et épithélial sont analysés pour l’expression des marqueurs cellulaires respectifs. Cette méthode est utile pour étudier les interactions et l’intégrité des composants vasculaires et épithéliaux, ce qui est essentiel pour la modélisation de la maladie en tant que lecture biologique fonct…

Discussion

Le modèle d’alvéole sur puce représente un modèle tissulaire multicouche de l’alvéole humaine, intégrant les types de cellules essentielles des voies respiratoires inférieures, y compris les cellules épithéliales pulmonaires, les cellules endothéliales et les macrophages, cultivés dans un arrangement organotypique à un ALI avec une perfusion moyenne de la muqueuse endothéliale. Les cellules de différentes couches expriment des protéines marqueurs cellulaires spécifiques telles que la E-cadhérine, une…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

H.K. et A.S.M. reconnaissent le financement du Leibniz Science-Campus InfectoOptics Jena, financé par la ligne de financement Strategic Networking de l’Association Leibniz. M.A. et A.S.M. ont été soutenus par le projet IGF IMPROVE financé par le ministère fédéral de l’Économie et de l’Énergie sur la base d’une résolution du Bundestag allemand. A.S.M remercie en outre le soutien financier du Cluster of Excellence Balance of the Microverse dans le cadre de la stratégie d’excellence de l’Allemagne – EXC 2051 – Project-ID 690 390713860.

Materials

Consumables
Cellcounting chamber slides (Countess) Invitrogen C10283
Cell culture Multiwell Plates, 24 Well, steril Greiner Bio-One 662 160
Cell culture Multiwell Plates, 6 Well, steril Greiner Bio-One 657 160
Coverslips (24x40mm; #1.5) Menzel-Gläser 15747592
Eco wipes Dr. Schuhmacher 00-915-REW10003-01
Eppies 2.0 Sarstedt 72.691
Eppis 0.5 Sarstedt 72.699
Eppis 1.5 Sarstedt 72.690.001
Falcons 15mL Greiner Bio-One 188 271-TRI
Falcons 50mL Greiner Bio-One 227 261-TRI
Gauze swab Noba PZN 2417767
Gloves Nitril 3000 Meditrade 1280
Microscope slides Menzel-Gläser AAAA000001##12E
Multiwell Plates 24 Well, sterile Greiner Bio-One 662 160
Pasteur pipettes (glass) 150mm Assistent 40567001
Pasteur pipettes (glass) 230mm Assistent 40567002
Round-bottom tubes (PS, 5mL) Falcon 352052
Safety-Multifly-Set, 20G, 200mm Sarstedt 85.1637.235
Scalpels Dahlhausen 11.000.00.715
Serological pipettes 10mL Greiner Bio-One 607 160-TRI
Serological pipettes 25mL Greiner Bio-One 760 160-TRI
Serological pipettes 2mL Greiner Bio-One 710 160-TRI
Serological pipettes 50mL Greiner Bio-One 768 160-TRI
Serological pipettes 5mL Greiner Bio-One 606 160-TRI
S-Monovette, 7,5ml Z-Gel Sarstedt 1.1602
S-Monovette, 9,0ml K3E Sarstedt 02.1066.001
Softasept N Braun 3887138
T25 flask Greiner Bio-One 690 960
Tips sterile 10µL Greiner Bio-One 771 261
Tips sterile 1250µL Greiner Bio-One 750 261
Tips sterile 300µL Greiner Bio-One 738 261
Tips unsterile 10µL Greiner Bio-One 765 290
Tips unsterile 1000µL Greiner Bio-One 739 291
Tips unsterile 200µL Greiner Bio-One 686 290
Tweezers (Präzisionspinzette DUMONT abgewinkelt Inox08, 5/45, 0,06 mm) Roth K343.1
Chemicals
Descosept AF Dr. Schuhmacher N-20338
Ethanol 96% Nordbrand-Nordhausen 410
Fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran (3-5kDa) Sigma Aldrich FD4-100MG
Fluorescent Mounting Medium Dako S3023
Methanol VWR 20847.295
Saponin Fluka 47036
Tergazyme Alconox 1304-1
Cell culture
Collagen IV Sigma-Aldrich C5533-5MG
Dexametason Sigma-Aldrich D4902
DPBS (-/-) Lonza BE17-516F
DPBS (+/+) Lonza BE17-513F
EDTA solution Sigma-Aldrich E788S
Endothelial Cell Growth Medium Promocell C-22020
Endothelial Cell Growth Medium supplement mix Promocell C-39225
Fetal bovine Serum Sigma-Aldrich E2129-10g
H441 ATCC
Human recombinant GM-CSF Peprotech 300-30
Lidocain Sigma-Aldrich L5647-15G
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15140-122 /-163
RPMI Gibco 72400047
Trypane blue stain 0.4% Invitrogen T10282
Trypsin Gibco 15090-046
Primary antibodies
Cadherin-5 / VE-Cadherin (goat) BD 610252
CD68 (rabbit) CellSignaling 76437
E-Cadherin (goat) R&D AF748
SP-A (mouse) Abcam ab51891
Secondary antibodies
AF488 (donkey anti mouse) Invitrogen R37114
AF647 (donkey anti mouse) invitrogen A31571
AF647 (donkey anti rabbit) Invitrogen A31573
Cy3 (donkey anti goat) jackson research 705-165-147
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dilactate) Invitrogen D3571
Microfluidic
Chip Dynamic 42 BC002
Male Luer Lock (small) ChipShop 09-0503-0270-09
Male mini luer plugs, row of four,PP, green Microfluidic chipshop 09-0558-0336-11
Male mini luer plugs, row of four,PP, opaque Microfluidic chipshop 09-0556-0336-09
Male mini luer plugs, row of four,PP, red Microfluidic chipshop 09-0557-0336-10
Plugs Cole Parmer GZ-45555-56
Reservoir 4.5mL ChipShop 16-0613-0233-09
Tubing Dynamic 42 ST001
Equipment
Autoclave Tuttnauer 5075 ELV
Centrifuge Eppendorf 5424
CO2 Incubator Heracell 150i
Countess automated cell counter Invitrogen C10227
Flowcytometer BD FACS Canto II
Freezer (-20 °C) Liebherr LCexv 4010
Freezer (-80 °C) Heraeus Herafreeze HFU 686
Fridge Liebherr LCexv 4010
Heraeus Multifuge Thermo Scientific X3R
Microscope Leica DM IL LED
Orbital shaker Heidolph Reax2000
Peristaltic pump REGLO Digital MS-4/12 ISM597D
Pipettes 10µL Eppendorf Research plus 3123000020
Pipettes 100µL Eppendorf Research plus 3123000047
Pipettes 1000µL Eppendorf Research plus 3123000063
Pipettes 2.5µL Eppendorf Research plus 3123000012
Pipettes 20µL Eppendorf Research plus 3123000039
Pipettes 200µL Eppendorf Research plus 3123000055
Scale Sartorius 6101
Scale Sartorius TE1245
Sterile bench Kojair Biowizard SL-130
Waterbath Julabo SW-20C
Fluorescence Microscope Setup
Apotome.2 Zeiss
Illumination device Zeiss HXP 120 C
Microscope Zeiss Axio Observer 5
Optical Sectioning Zeiss ApoTome
Power Supply Microscope Zeiss Eplax Vp232
Software
ZEN Blue Edition Zeiss

References

  1. Mettelman, R. C., Allen, E. K., Thomas, P. G. Mucosal immune responses to infection and vaccination in the respiratory tract. Immunity. 55 (5), 749-780 (2022).
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Cite This Article
Koceva, H., Amiratashani, M., Rennert, K., Mosig, A. S. Immunocompetent Alveolus-on-Chip Model for Studying Alveolar Mucosal Immune Responses. J. Vis. Exp. (207), e66602, doi:10.3791/66602 (2024).

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