Os modelos de pulmão em chip superam as culturas 2D tradicionais, imitando a interface ar-líquido e a perfusão de células endoteliais, simulando o fluxo sanguíneo e a troca de nutrientes cruciais para estudos de fisiologia pulmonar. Isso aumenta a relevância da pesquisa pulmonar, oferecendo um ambiente dinâmico e fisiologicamente preciso para avançar na compreensão e no tratamento de infecções respiratórias.
Apresentamos um modelo avançado de pulmão em chip imunocompetente projetado para replicar a estrutura e função alveolar humana. Este modelo inovador emprega um biochip perfundido microfluídico que suporta uma interface ar-líquido que imita o ambiente nos alvéolos humanos. A engenharia de tecidos é usada para integrar os principais componentes celulares, incluindo células endoteliais, macrófagos e células epiteliais, para criar um modelo de tecido representativo do alvéolo. O modelo facilita exames aprofundados das respostas imunes da mucosa a vários patógenos, incluindo vírus, bactérias e fungos, avançando assim nossa compreensão da imunidade pulmonar. O objetivo principal deste protocolo é fornecer detalhes para estabelecer este modelo de alvéolo em chip como uma plataforma in vitro robusta para estudos de infecção, permitindo que os pesquisadores observem e analisem de perto as complexas interações entre patógenos e o sistema imunológico do hospedeiro no ambiente pulmonar. Isso é alcançado por meio da aplicação de técnicas baseadas em microfluídica para simular as principais condições fisiológicas dos alvéolos humanos, incluindo fluxo sanguíneo e estimulação biomecânica das células endoteliais, além de manter uma interface ar-líquido crucial para a exposição realista das células epiteliais ao ar. O sistema modelo é compatível com uma variedade de ensaios padronizados, como coloração por imunofluorescência, perfil de citocinas e análise de unidade formadora de colônias (UFC)/placa, permitindo insights abrangentes sobre a dinâmica imunológica durante a infecção. O Alveolus-on-chip é composto por tipos de células essenciais, incluindo células epiteliais pulmonares distais humanas (H441) e células endoteliais da veia umbilical humana (HUVECs) separadas por membranas porosas de tereftalato de polietileno (PET), com macrófagos primários derivados de monócitos estrategicamente posicionados entre as camadas epitelial e endotelial. O modelo de tecido aumenta a capacidade de dissecar e analisar os fatores diferenciados envolvidos nas respostas imunes pulmonares in vitro. Como uma ferramenta valiosa, deve contribuir para o avanço da pesquisa pulmonar, fornecendo um modelo in vitro mais preciso e dinâmico para estudar a patogênese das infecções respiratórias e testar possíveis intervenções terapêuticas.
O pulmão humano tem um papel marcante na respiração e na defesa imunológica, com interações complexas entre as respostas imunes da mucosa alveolar1. A capacidade dos alvéolos de criar uma resposta imune eficiente é vital para prevenir infecções pulmonares e garantir a saúde pulmonar. Como os pulmões estão constantemente expostos a uma ampla gama de riscos potenciais, incluindo bactérias, vírus, fungos, alergias e material particulado, entender as complexidades das respostas imunes da mucosa alveolar é fundamental para descobrir os mecanismos por trás de infecções respiratórias, distúrbios inflamatórios e tratamento de doenças pulmonares1.
Para estudar os processos relacionados à infecção e inflamação do trato respiratório in vitro, são necessários modelos que possam imitar fielmente o meio alveolar e as respostas imunes. A cultura de células 2D e os módulos animais têm sido usados há décadas como ferramentas essenciais para a pesquisa biomédica sobre a resposta imune pulmonar. No entanto, muitas vezes eles têm limitações em seu potencial de tradução para situações humanas. Os modelos lung-on-chip podem contribuir para preencher a lacuna entre os modelos tradicionais in vitro e in vivo e fornecer uma nova abordagem para estudar as respostas imunes específicas do ser humano 2,3. Os modelos de pulmão em chip podem imitar a interface ar-líquido, que é necessária para que as células pulmonares recapitulem as condições fisiológicas do trato respiratório e desenvolvam um modelo de tecido mais preciso e robusto. Essa técnica de cultura permite um exame preciso da diferenciação, funcionamento e respostas celulares a drogas ou estímulos relacionados a doenças in vitro2.
Neste estudo, apresentamos um modelo baseado em microfluídica do alvéolo humano como uma ferramenta eficaz para recapitular o meio alveolar humano, aplicando perfusão para imitar o fluxo sanguíneo e a estimulação biomecânica das células endoteliais e incorporando uma interface ar-líquido com células epiteliais expostas a uma fase aérea4. Desenvolvemos um alvéolo perfundido microfluídico em chip que imita a estrutura física e as interações biológicas do alvéolo humano, com foco particular na interface ar-líquido. Essa interface desempenha um papel crucial na diferenciação das células epiteliais respiratórias, o que é essencial para modelar com precisão o ambiente pulmonar. O modelo usa células epiteliais pulmonares distais humanas (H441) e células endoteliais da veia umbilical humana (HUVECs), separadas por membranas porosas de tereftalato de polietileno (PET), com macrófagos primários derivados de monócitos posicionados entre as camadas celulares. Essa configuração replica o intrincado arranjo celular do alvéolo e é fundamental para simular com precisão a interface ar-líquido, que é um fator significativo na função fisiológica do tecido pulmonar.
A lógica por trás do desenvolvimento do modelo se estende à integração de células imunes circulantes e residentes no tecido. Essa abordagem foi projetada para imitar com precisão a resposta inflamatória do hospedeiro a infecções respiratórias humanas, fornecendo um ambiente dinâmico para estudar as interações patógeno-hospedeiro. A presença de macrófagos permite o exame das respostas imunes imediatas e sua interação com patógenos, refletindo a primeira linha de defesa contra infecções respiratórias. Além disso, o design da plataforma do biochip facilita a manipulação conveniente e precisa de pistas biofísicas e bioquímicas, o que é crucial para replicar a função do alvéolo in vitro. Essa flexibilidade é fundamental para dissecar os fatores que contribuem para infecções humanas, permitindo que os pesquisadores ajustem as condições para refletir vários estados de doença ou testem possíveis intervenções terapêuticas. A compatibilidade da plataforma com várias tecnologias de leitura, incluindo microscopia avançada, análises microbiológicas e análise bioquímica de efluentes, aumenta sua utilidade. Esses recursos permitem uma avaliação abrangente da resposta tecidual a infecções, incluindo a avaliação do comportamento celular, proliferação de patógenos e a eficácia das respostas imunes.
Apresentamos um protocolo detalhado e técnicas para criar e utilizar um modelo de alvéolo humano em chip focado na replicação da interface ar-líquido e na integração de células imunes para estudar infecções humanas in vitro.
O modelo alvéolo-em-chip representa um modelo de tecido multicamadas do alvéolo humano, integrando tipos de células essenciais do trato respiratório inferior, incluindo células epiteliais pulmonares, células endoteliais e macrófagos, cultivadas em um arranjo organotípico em um ALI com perfusão média do revestimento endotelial. Células de diferentes camadas expressam proteínas marcadoras celulares específicas, como a E-caderina, uma molécula de adesão dependente de cálcio das células epiteliais pulmonares…
The authors have nothing to disclose.
H.K. e A.S.M. reconhecem o financiamento do Leibniz Science-Campus InfectoOptics Jena, financiado pela linha de financiamento Strategic Networking da Leibniz Association. A M.A. e a A.S.M. foram apoiadas pelo projeto IGF IMPROVE financiado pelo Ministério Federal de Assuntos Econômicos e Energia com base em uma resolução do Bundestag alemão. A A.S.M reconhece ainda o apoio financeiro do Cluster of Excellence Balance of the Microverse sob a Estratégia de Excelência da Alemanha – EXC 2051 – Project-ID 690 390713860.
Consumables | ||
Cellcounting chamber slides (Countess) | Invitrogen | C10283 |
Cell culture Multiwell Plates, 24 Well, steril | Greiner Bio-One | 662 160 |
Cell culture Multiwell Plates, 6 Well, steril | Greiner Bio-One | 657 160 |
Coverslips (24x40mm; #1.5) | Menzel-Gläser | 15747592 |
Eco wipes | Dr. Schuhmacher | 00-915-REW10003-01 |
Eppies 2.0 | Sarstedt | 72.691 |
Eppis 0.5 | Sarstedt | 72.699 |
Eppis 1.5 | Sarstedt | 72.690.001 |
Falcons 15mL | Greiner Bio-One | 188 271-TRI |
Falcons 50mL | Greiner Bio-One | 227 261-TRI |
Gauze swab | Noba | PZN 2417767 |
Gloves Nitril 3000 | Meditrade | 1280 |
Microscope slides | Menzel-Gläser | AAAA000001##12E |
Multiwell Plates 24 Well, sterile | Greiner Bio-One | 662 160 |
Pasteur pipettes (glass) 150mm | Assistent | 40567001 |
Pasteur pipettes (glass) 230mm | Assistent | 40567002 |
Round-bottom tubes (PS, 5mL) | Falcon | 352052 |
Safety-Multifly-Set, 20G, 200mm | Sarstedt | 85.1637.235 |
Scalpels | Dahlhausen | 11.000.00.715 |
Serological pipettes 10mL | Greiner Bio-One | 607 160-TRI |
Serological pipettes 25mL | Greiner Bio-One | 760 160-TRI |
Serological pipettes 2mL | Greiner Bio-One | 710 160-TRI |
Serological pipettes 50mL | Greiner Bio-One | 768 160-TRI |
Serological pipettes 5mL | Greiner Bio-One | 606 160-TRI |
S-Monovette, 7,5ml Z-Gel | Sarstedt | 1.1602 |
S-Monovette, 9,0ml K3E | Sarstedt | 02.1066.001 |
Softasept N | Braun | 3887138 |
T25 flask | Greiner Bio-One | 690 960 |
Tips sterile 10µL | Greiner Bio-One | 771 261 |
Tips sterile 1250µL | Greiner Bio-One | 750 261 |
Tips sterile 300µL | Greiner Bio-One | 738 261 |
Tips unsterile 10µL | Greiner Bio-One | 765 290 |
Tips unsterile 1000µL | Greiner Bio-One | 739 291 |
Tips unsterile 200µL | Greiner Bio-One | 686 290 |
Tweezers (Präzisionspinzette DUMONT abgewinkelt Inox08, 5/45, 0,06 mm) | Roth | K343.1 |
Chemicals | ||
Descosept AF | Dr. Schuhmacher | N-20338 |
Ethanol 96% | Nordbrand-Nordhausen | 410 |
Fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran (3-5kDa) | Sigma Aldrich | FD4-100MG |
Fluorescent Mounting Medium | Dako | S3023 |
Methanol | VWR | 20847.295 |
Saponin | Fluka | 47036 |
Tergazyme | Alconox | 1304-1 |
Cell culture | ||
Collagen IV | Sigma-Aldrich | C5533-5MG |
Dexametason | Sigma-Aldrich | D4902 |
DPBS (-/-) | Lonza | BE17-516F |
DPBS (+/+) | Lonza | BE17-513F |
EDTA solution | Sigma-Aldrich | E788S |
Endothelial Cell Growth Medium | Promocell | C-22020 |
Endothelial Cell Growth Medium supplement mix | Promocell | C-39225 |
Fetal bovine Serum | Sigma-Aldrich | E2129-10g |
H441 | ATCC | |
Human recombinant GM-CSF | Peprotech | 300-30 |
Lidocain | Sigma-Aldrich | L5647-15G |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Gibco | 15140-122 /-163 |
RPMI | Gibco | 72400047 |
Trypane blue stain 0.4% | Invitrogen | T10282 |
Trypsin | Gibco | 15090-046 |
Primary antibodies | ||
Cadherin-5 / VE-Cadherin (goat) | BD | 610252 |
CD68 (rabbit) | CellSignaling | 76437 |
E-Cadherin (goat) | R&D | AF748 |
SP-A (mouse) | Abcam | ab51891 |
Secondary antibodies | ||
AF488 (donkey anti mouse) | Invitrogen | R37114 |
AF647 (donkey anti mouse) | invitrogen | A31571 |
AF647 (donkey anti rabbit) | Invitrogen | A31573 |
Cy3 (donkey anti goat) | jackson research | 705-165-147 |
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dilactate) | Invitrogen | D3571 |
Microfluidic | ||
Chip | Dynamic 42 | BC002 |
Male Luer Lock (small) | ChipShop | 09-0503-0270-09 |
Male mini luer plugs, row of four,PP, green | Microfluidic chipshop | 09-0558-0336-11 |
Male mini luer plugs, row of four,PP, opaque | Microfluidic chipshop | 09-0556-0336-09 |
Male mini luer plugs, row of four,PP, red | Microfluidic chipshop | 09-0557-0336-10 |
Plugs | Cole Parmer | GZ-45555-56 |
Reservoir 4.5mL | ChipShop | 16-0613-0233-09 |
Tubing | Dynamic 42 | ST001 |
Equipment | ||
Autoclave | Tuttnauer | 5075 ELV |
Centrifuge | Eppendorf | 5424 |
CO2 Incubator | Heracell | 150i |
Countess automated cell counter | Invitrogen | C10227 |
Flowcytometer | BD | FACS Canto II |
Freezer (-20 °C) | Liebherr | LCexv 4010 |
Freezer (-80 °C) | Heraeus | Herafreeze HFU 686 |
Fridge | Liebherr | LCexv 4010 |
Heraeus Multifuge | Thermo Scientific | X3R |
Microscope | Leica | DM IL LED |
Orbital shaker | Heidolph | Reax2000 |
Peristaltic pump | REGLO Digital MS-4/12 | ISM597D |
Pipettes 10µL | Eppendorf Research plus | 3123000020 |
Pipettes 100µL | Eppendorf Research plus | 3123000047 |
Pipettes 1000µL | Eppendorf Research plus | 3123000063 |
Pipettes 2.5µL | Eppendorf Research plus | 3123000012 |
Pipettes 20µL | Eppendorf Research plus | 3123000039 |
Pipettes 200µL | Eppendorf Research plus | 3123000055 |
Scale | Sartorius | 6101 |
Scale | Sartorius | TE1245 |
Sterile bench | Kojair | Biowizard SL-130 |
Waterbath | Julabo | SW-20C |
Fluorescence Microscope Setup | ||
Apotome.2 | Zeiss | |
Illumination device | Zeiss | HXP 120 C |
Microscope | Zeiss | Axio Observer 5 |
Optical Sectioning | Zeiss | ApoTome |
Power Supply Microscope | Zeiss | Eplax Vp232 |
Software | ||
ZEN Blue Edition | Zeiss |