Summary

Modelo Alveolus-on-Chip Imunocompetente para Estudo das Respostas Imunes da Mucosa Alveolar

Published: May 31, 2024
doi:

Summary

Os modelos de pulmão em chip superam as culturas 2D tradicionais, imitando a interface ar-líquido e a perfusão de células endoteliais, simulando o fluxo sanguíneo e a troca de nutrientes cruciais para estudos de fisiologia pulmonar. Isso aumenta a relevância da pesquisa pulmonar, oferecendo um ambiente dinâmico e fisiologicamente preciso para avançar na compreensão e no tratamento de infecções respiratórias.

Abstract

Apresentamos um modelo avançado de pulmão em chip imunocompetente projetado para replicar a estrutura e função alveolar humana. Este modelo inovador emprega um biochip perfundido microfluídico que suporta uma interface ar-líquido que imita o ambiente nos alvéolos humanos. A engenharia de tecidos é usada para integrar os principais componentes celulares, incluindo células endoteliais, macrófagos e células epiteliais, para criar um modelo de tecido representativo do alvéolo. O modelo facilita exames aprofundados das respostas imunes da mucosa a vários patógenos, incluindo vírus, bactérias e fungos, avançando assim nossa compreensão da imunidade pulmonar. O objetivo principal deste protocolo é fornecer detalhes para estabelecer este modelo de alvéolo em chip como uma plataforma in vitro robusta para estudos de infecção, permitindo que os pesquisadores observem e analisem de perto as complexas interações entre patógenos e o sistema imunológico do hospedeiro no ambiente pulmonar. Isso é alcançado por meio da aplicação de técnicas baseadas em microfluídica para simular as principais condições fisiológicas dos alvéolos humanos, incluindo fluxo sanguíneo e estimulação biomecânica das células endoteliais, além de manter uma interface ar-líquido crucial para a exposição realista das células epiteliais ao ar. O sistema modelo é compatível com uma variedade de ensaios padronizados, como coloração por imunofluorescência, perfil de citocinas e análise de unidade formadora de colônias (UFC)/placa, permitindo insights abrangentes sobre a dinâmica imunológica durante a infecção. O Alveolus-on-chip é composto por tipos de células essenciais, incluindo células epiteliais pulmonares distais humanas (H441) e células endoteliais da veia umbilical humana (HUVECs) separadas por membranas porosas de tereftalato de polietileno (PET), com macrófagos primários derivados de monócitos estrategicamente posicionados entre as camadas epitelial e endotelial. O modelo de tecido aumenta a capacidade de dissecar e analisar os fatores diferenciados envolvidos nas respostas imunes pulmonares in vitro. Como uma ferramenta valiosa, deve contribuir para o avanço da pesquisa pulmonar, fornecendo um modelo in vitro mais preciso e dinâmico para estudar a patogênese das infecções respiratórias e testar possíveis intervenções terapêuticas.

Introduction

O pulmão humano tem um papel marcante na respiração e na defesa imunológica, com interações complexas entre as respostas imunes da mucosa alveolar1. A capacidade dos alvéolos de criar uma resposta imune eficiente é vital para prevenir infecções pulmonares e garantir a saúde pulmonar. Como os pulmões estão constantemente expostos a uma ampla gama de riscos potenciais, incluindo bactérias, vírus, fungos, alergias e material particulado, entender as complexidades das respostas imunes da mucosa alveolar é fundamental para descobrir os mecanismos por trás de infecções respiratórias, distúrbios inflamatórios e tratamento de doenças pulmonares1.

Para estudar os processos relacionados à infecção e inflamação do trato respiratório in vitro, são necessários modelos que possam imitar fielmente o meio alveolar e as respostas imunes. A cultura de células 2D e os módulos animais têm sido usados há décadas como ferramentas essenciais para a pesquisa biomédica sobre a resposta imune pulmonar. No entanto, muitas vezes eles têm limitações em seu potencial de tradução para situações humanas. Os modelos lung-on-chip podem contribuir para preencher a lacuna entre os modelos tradicionais in vitro e in vivo e fornecer uma nova abordagem para estudar as respostas imunes específicas do ser humano 2,3. Os modelos de pulmão em chip podem imitar a interface ar-líquido, que é necessária para que as células pulmonares recapitulem as condições fisiológicas do trato respiratório e desenvolvam um modelo de tecido mais preciso e robusto. Essa técnica de cultura permite um exame preciso da diferenciação, funcionamento e respostas celulares a drogas ou estímulos relacionados a doenças in vitro2.

Neste estudo, apresentamos um modelo baseado em microfluídica do alvéolo humano como uma ferramenta eficaz para recapitular o meio alveolar humano, aplicando perfusão para imitar o fluxo sanguíneo e a estimulação biomecânica das células endoteliais e incorporando uma interface ar-líquido com células epiteliais expostas a uma fase aérea4. Desenvolvemos um alvéolo perfundido microfluídico em chip que imita a estrutura física e as interações biológicas do alvéolo humano, com foco particular na interface ar-líquido. Essa interface desempenha um papel crucial na diferenciação das células epiteliais respiratórias, o que é essencial para modelar com precisão o ambiente pulmonar. O modelo usa células epiteliais pulmonares distais humanas (H441) e células endoteliais da veia umbilical humana (HUVECs), separadas por membranas porosas de tereftalato de polietileno (PET), com macrófagos primários derivados de monócitos posicionados entre as camadas celulares. Essa configuração replica o intrincado arranjo celular do alvéolo e é fundamental para simular com precisão a interface ar-líquido, que é um fator significativo na função fisiológica do tecido pulmonar.

A lógica por trás do desenvolvimento do modelo se estende à integração de células imunes circulantes e residentes no tecido. Essa abordagem foi projetada para imitar com precisão a resposta inflamatória do hospedeiro a infecções respiratórias humanas, fornecendo um ambiente dinâmico para estudar as interações patógeno-hospedeiro. A presença de macrófagos permite o exame das respostas imunes imediatas e sua interação com patógenos, refletindo a primeira linha de defesa contra infecções respiratórias. Além disso, o design da plataforma do biochip facilita a manipulação conveniente e precisa de pistas biofísicas e bioquímicas, o que é crucial para replicar a função do alvéolo in vitro. Essa flexibilidade é fundamental para dissecar os fatores que contribuem para infecções humanas, permitindo que os pesquisadores ajustem as condições para refletir vários estados de doença ou testem possíveis intervenções terapêuticas. A compatibilidade da plataforma com várias tecnologias de leitura, incluindo microscopia avançada, análises microbiológicas e análise bioquímica de efluentes, aumenta sua utilidade. Esses recursos permitem uma avaliação abrangente da resposta tecidual a infecções, incluindo a avaliação do comportamento celular, proliferação de patógenos e a eficácia das respostas imunes.

Apresentamos um protocolo detalhado e técnicas para criar e utilizar um modelo de alvéolo humano em chip focado na replicação da interface ar-líquido e na integração de células imunes para estudar infecções humanas in vitro.

Protocol

As células HUVEC são isoladas dos cordões umbilicais e usadas até a passagem 4. Os monócitos primários são isolados de doadores saudáveis de sangue total. O estudo foi aprovado pelo comitê de ética do Hospital Universitário de Jena, Jena, Alemanha (3939-12/13). De acordo com a Declaração de Helsinque, todos os indivíduos que doaram células para o estudo deram seu consentimento informado. 1. Dia 1: Preparação do biochip Os biochips estão disponíveis…

Representative Results

Um exame das alterações morfológicas e da expressão de proteínas marcadoras pode ser realizado usando coloração de imunofluorescência. Após co-cultivo por 14 dias, os lados vascular e epitelial são analisados quanto à expressão dos respectivos marcadores celulares. Este método é útil para estudar as interações e integridade dos componentes vasculares e epiteliais, o que é essencial para a modelagem da doença como uma leitura biológica funcional relacionada à infecção. A coloração por imunofluores…

Discussion

O modelo alvéolo-em-chip representa um modelo de tecido multicamadas do alvéolo humano, integrando tipos de células essenciais do trato respiratório inferior, incluindo células epiteliais pulmonares, células endoteliais e macrófagos, cultivadas em um arranjo organotípico em um ALI com perfusão média do revestimento endotelial. Células de diferentes camadas expressam proteínas marcadoras celulares específicas, como a E-caderina, uma molécula de adesão dependente de cálcio das células epiteliais pulmonares…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

H.K. e A.S.M. reconhecem o financiamento do Leibniz Science-Campus InfectoOptics Jena, financiado pela linha de financiamento Strategic Networking da Leibniz Association. A M.A. e a A.S.M. foram apoiadas pelo projeto IGF IMPROVE financiado pelo Ministério Federal de Assuntos Econômicos e Energia com base em uma resolução do Bundestag alemão. A A.S.M reconhece ainda o apoio financeiro do Cluster of Excellence Balance of the Microverse sob a Estratégia de Excelência da Alemanha – EXC 2051 – Project-ID 690 390713860.

Materials

Consumables
Cellcounting chamber slides (Countess) Invitrogen C10283
Cell culture Multiwell Plates, 24 Well, steril Greiner Bio-One 662 160
Cell culture Multiwell Plates, 6 Well, steril Greiner Bio-One 657 160
Coverslips (24x40mm; #1.5) Menzel-Gläser 15747592
Eco wipes Dr. Schuhmacher 00-915-REW10003-01
Eppies 2.0 Sarstedt 72.691
Eppis 0.5 Sarstedt 72.699
Eppis 1.5 Sarstedt 72.690.001
Falcons 15mL Greiner Bio-One 188 271-TRI
Falcons 50mL Greiner Bio-One 227 261-TRI
Gauze swab Noba PZN 2417767
Gloves Nitril 3000 Meditrade 1280
Microscope slides Menzel-Gläser AAAA000001##12E
Multiwell Plates 24 Well, sterile Greiner Bio-One 662 160
Pasteur pipettes (glass) 150mm Assistent 40567001
Pasteur pipettes (glass) 230mm Assistent 40567002
Round-bottom tubes (PS, 5mL) Falcon 352052
Safety-Multifly-Set, 20G, 200mm Sarstedt 85.1637.235
Scalpels Dahlhausen 11.000.00.715
Serological pipettes 10mL Greiner Bio-One 607 160-TRI
Serological pipettes 25mL Greiner Bio-One 760 160-TRI
Serological pipettes 2mL Greiner Bio-One 710 160-TRI
Serological pipettes 50mL Greiner Bio-One 768 160-TRI
Serological pipettes 5mL Greiner Bio-One 606 160-TRI
S-Monovette, 7,5ml Z-Gel Sarstedt 1.1602
S-Monovette, 9,0ml K3E Sarstedt 02.1066.001
Softasept N Braun 3887138
T25 flask Greiner Bio-One 690 960
Tips sterile 10µL Greiner Bio-One 771 261
Tips sterile 1250µL Greiner Bio-One 750 261
Tips sterile 300µL Greiner Bio-One 738 261
Tips unsterile 10µL Greiner Bio-One 765 290
Tips unsterile 1000µL Greiner Bio-One 739 291
Tips unsterile 200µL Greiner Bio-One 686 290
Tweezers (Präzisionspinzette DUMONT abgewinkelt Inox08, 5/45, 0,06 mm) Roth K343.1
Chemicals
Descosept AF Dr. Schuhmacher N-20338
Ethanol 96% Nordbrand-Nordhausen 410
Fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran (3-5kDa) Sigma Aldrich FD4-100MG
Fluorescent Mounting Medium Dako S3023
Methanol VWR 20847.295
Saponin Fluka 47036
Tergazyme Alconox 1304-1
Cell culture
Collagen IV Sigma-Aldrich C5533-5MG
Dexametason Sigma-Aldrich D4902
DPBS (-/-) Lonza BE17-516F
DPBS (+/+) Lonza BE17-513F
EDTA solution Sigma-Aldrich E788S
Endothelial Cell Growth Medium Promocell C-22020
Endothelial Cell Growth Medium supplement mix Promocell C-39225
Fetal bovine Serum Sigma-Aldrich E2129-10g
H441 ATCC
Human recombinant GM-CSF Peprotech 300-30
Lidocain Sigma-Aldrich L5647-15G
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15140-122 /-163
RPMI Gibco 72400047
Trypane blue stain 0.4% Invitrogen T10282
Trypsin Gibco 15090-046
Primary antibodies
Cadherin-5 / VE-Cadherin (goat) BD 610252
CD68 (rabbit) CellSignaling 76437
E-Cadherin (goat) R&D AF748
SP-A (mouse) Abcam ab51891
Secondary antibodies
AF488 (donkey anti mouse) Invitrogen R37114
AF647 (donkey anti mouse) invitrogen A31571
AF647 (donkey anti rabbit) Invitrogen A31573
Cy3 (donkey anti goat) jackson research 705-165-147
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dilactate) Invitrogen D3571
Microfluidic
Chip Dynamic 42 BC002
Male Luer Lock (small) ChipShop 09-0503-0270-09
Male mini luer plugs, row of four,PP, green Microfluidic chipshop 09-0558-0336-11
Male mini luer plugs, row of four,PP, opaque Microfluidic chipshop 09-0556-0336-09
Male mini luer plugs, row of four,PP, red Microfluidic chipshop 09-0557-0336-10
Plugs Cole Parmer GZ-45555-56
Reservoir 4.5mL ChipShop 16-0613-0233-09
Tubing Dynamic 42 ST001
Equipment
Autoclave Tuttnauer 5075 ELV
Centrifuge Eppendorf 5424
CO2 Incubator Heracell 150i
Countess automated cell counter Invitrogen C10227
Flowcytometer BD FACS Canto II
Freezer (-20 °C) Liebherr LCexv 4010
Freezer (-80 °C) Heraeus Herafreeze HFU 686
Fridge Liebherr LCexv 4010
Heraeus Multifuge Thermo Scientific X3R
Microscope Leica DM IL LED
Orbital shaker Heidolph Reax2000
Peristaltic pump REGLO Digital MS-4/12 ISM597D
Pipettes 10µL Eppendorf Research plus 3123000020
Pipettes 100µL Eppendorf Research plus 3123000047
Pipettes 1000µL Eppendorf Research plus 3123000063
Pipettes 2.5µL Eppendorf Research plus 3123000012
Pipettes 20µL Eppendorf Research plus 3123000039
Pipettes 200µL Eppendorf Research plus 3123000055
Scale Sartorius 6101
Scale Sartorius TE1245
Sterile bench Kojair Biowizard SL-130
Waterbath Julabo SW-20C
Fluorescence Microscope Setup
Apotome.2 Zeiss
Illumination device Zeiss HXP 120 C
Microscope Zeiss Axio Observer 5
Optical Sectioning Zeiss ApoTome
Power Supply Microscope Zeiss Eplax Vp232
Software
ZEN Blue Edition Zeiss

References

  1. Mettelman, R. C., Allen, E. K., Thomas, P. G. Mucosal immune responses to infection and vaccination in the respiratory tract. Immunity. 55 (5), 749-780 (2022).
  2. Artzy-Schnirman, A., et al. Advanced in vitro lung-on-chip platforms for inhalation assays: From prospect to pipeline. Eur J Pharma Biopharma. 144, 11-17 (2019).
  3. Huh, D., et al. Reconstituting organ-level lung functions on a chip. Science. 328 (5986), 1662-1668 (2010).
  4. Benam, K. H., et al. Small airway-on-a-chip enables analysis of human lung inflammation and drug responses in vitro. Nat Meth. 13 (2), 151-157 (2016).
  5. Ronaldson-Bouchard, K., et al. A multi-organ chip with matured tissue niches linked by vascular flow. Nat Biomed Eng. 6 (4), 351 (2022).
  6. Deinhardt-Emmer, S., et al. Co-infection with staphylococcus aureus after primary influenza virus infection leads to damage of the endothelium in a human alveolus-on-a-chip model. Biofabrication. 12 (2), 025012 (2020).
  7. Schicke, E., et al. Staphylococcus aureus lung infection results in down-regulation of surfactant protein-a mainly caused by pro-inflammatory macrophages. Microorganisms. 8 (4), 577 (2020).
  8. King, S. D., Chen, S. Y. Recent progress on surfactant protein a: Cellular function in lung and kidney disease development. Am J Physiol Cell Physiol. 319 (2), C316-C320 (2020).
  9. Hoang, T. N. M., et al. Invasive aspergillosis-on-chip: A quantitative treatment study of human aspergillus fumigatus infection. Biomaterials. 283, 121420 (2022).
  10. Yuksel, H., Ocalan, M., Yilmaz, O. E-cadherin: An important functional molecule at respiratory barrier between defence and dysfunction. Front Physiol. 12, 720227 (2021).
  11. Van Roy, F., Berx, G. The cell-cell adhesion molecule e-cadherin. Cell Mol Life Sci. 65 (23), 3756-3788 (2008).

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Cite This Article
Koceva, H., Amiratashani, M., Rennert, K., Mosig, A. S. Immunocompetent Alveolus-on-Chip Model for Studying Alveolar Mucosal Immune Responses. J. Vis. Exp. (207), e66602, doi:10.3791/66602 (2024).

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