小鼠肠道中 T4 噬菌体和 大肠杆菌 相互作用：研究体内宿主-噬菌体动力学的原型模型

噬菌体或噬菌体是感染和杀死细菌的病毒，具有物种和菌株水平的特异性¹。噬菌体在复杂的细菌群落（如肠道微生物群）中发挥着重要作用，它们与调节种群动态和驱动细菌适应性有关²。在过去十年中，由于抗菌素耐药病原体³的兴起，以及噬菌体疗法作为替代治疗策略的潜力，人们对噬菌体研究重新产生了兴趣。近年来，裂解噬菌体混合物已静脉注射，在人类严重的抗生素耐药细菌性败血症感染中取得了一些成功 ^3,4。口服噬菌体疗法也被提议作为抗生素的潜在替代品，以治疗肠道感染和炎症。此外，噬菌体还与粪便滤液移植 （FFT） 的成功有关，FFT 是经过过滤以去除细菌的粪便微生物群制剂，用于治疗复发性艰难梭菌感染 （rCDI）^5,6、炎症性肠病 （IBD）^7,8 和早产猪坏死性小肠结肠炎⁹.鉴于这些结果，重要的是要考虑噬菌体与肠道微生物群以及噬菌体与哺乳动物宿主之间的相互作用，因为将新型噬菌体添加到预先存在的群落中可能会对整个群落产生间接影响，而不仅仅是其目标细菌^2,10。

体外噬菌体与其靶细菌相互作用的研究已被证明有助于了解肠道中噬菌体和细菌相互作用的机制和影响。在这种情况下，已经表明 Caudovirales 目的大肠杆菌特异性 T4 噬菌体需要位于病毒粒子表面高度抗原外衣壳 （Hoc） 蛋白内的免疫球蛋白 （Ig） 样结构域才能粘附在肠粘液^{上 11}。此外，transwell 试验表明，T4 噬菌体能够与上皮细胞培养物相互作用，并通过巨胞饮作用通过细胞层易位^12,13。这些结果支持噬菌体可以与后生宿主相互作用的假设，即使它们无法感染真核细胞。这些模型虽然有用，但缺乏肠道生态系统中发生的全部复杂相互作用，而这些相互作用是全面探索噬菌体、细菌和后生动物宿主之间的三方相互作用所必需的。

小鼠模型是研究复杂环境中噬菌体的重要工具。噬菌体给药的理想应用是作为治疗抗微生物药物耐药性感染或与慢性炎症性疾病（包括 IBD）相关的病原体的替代策略。然而，新兴文献表明，噬菌体在体外的行为并不能完全代表体内功能。Buttimer等人¹⁴证明，噬菌体混合物能够在体外耗尽简化的人类微生物群联盟中的靶细菌，但不能在用相同细菌-噬菌体联盟定植的灵知小鼠中在体内复制。此外，在常规小鼠微生物组中，T7噬菌体导致其靶肠道细菌的选择性耗竭，尽管随着时间的推移观察到逐渐恢复，表明进化了耐药^性15。其他研究表明，口服噬菌体及其靶细菌菌株在体内共存 ^2,16。事实上，除了噬菌体/细菌共存之外，噬菌体给药还导致了整体微生物群落组成和功能的广泛变化^2,16。这在疾病环境中是相关的，因为一些研究发现，Caudovirales 的相对丰度增加与 IBD^7、8、17 之间的关联与细菌丰度的变化无关⁷。目前尚不清楚这是疾病发病机制的驱动因素还是结果。

噬菌体研究的历史焦点一直是围绕噬菌体与其靶细菌之间的关系。然而，考虑噬菌体与后生动物宿主的粘膜、上皮和免疫系统之间的潜在相互作用也很重要。这些相互作用在肠道噬菌体感染的整体反应中都起着重要作用。为了证明这一点，已经使用无菌 （GF） 小鼠研究了噬菌体，以阐明它们在不受微生物群干扰的情况下对免疫系统的影响⁸。在该系统中，噬菌体核酸由位于吞噬细胞免疫细胞（巨噬细胞和树突状细胞）内体内体内的Toll样受体（TLR）检测。这激活了下游信号转导并刺激了 T 细胞依赖性干扰素 （IFN）-^{γ 8} 或 I 型 IFN^{的产生 18}。此外，Fluckiger等人¹⁹认为记忆CD8⁺ T细胞与噬菌体编码（噬菌体）抗原的识别有关，这导致T细胞与肿瘤抗原的交叉反应，从而降低肿瘤负荷。最后，噬菌体特异性抗体的产生已在小鼠研究中被记录在小鼠研究中，其中噬菌体通过饮用水以连续的方式递送至动物模型 ^8,20，或通过几个月的重复口服强饲²⁰，证明了噬菌体蛋白促进体液免疫反应的能力。尽管这些噬菌体接种模式允许免疫系统的最佳和持续启动，但它们可能不代表噬菌体与肠道环境之间自然发生的相互作用，也不代表口服噬菌体疗法的动力学。到目前为止，有限数量的研究已经检查了噬菌体与单定植小鼠模型中单一细菌物种的相互作用²¹。然而，单定植小鼠被证明在破译单个物种对胃肠道 （GI） 和免疫发育的微生物特异性影响方面至关重要 22,23,24，并且它们可能被证明有助于理解噬菌体、其靶细菌和后生动物宿主之间的三方相互作用。

令人兴奋的是，关于肠道噬菌体和肠道共生细菌之间的相互作用，以及后生动物宿主与居住在其中的噬菌体之间发生的相互作用，还有很多东西需要了解。该方案提供了一组程序来研究分离的T4噬菌体及其细菌对应物大 肠杆菌 （K-12，BW25113），使用灵敏素小鼠模型。这些标准化程序还为优化其他噬菌体/细菌二元组奠定了基础，使生长参数适应感兴趣的对。本文概述的方法包括：（1）制备用于小鼠口服强饲的T4噬菌体和载体裂解物;（2） 大肠杆 菌单定植gnotobiotic小鼠口服T4噬菌体;（3）监测小鼠粪便和组织中T4噬菌体水平随时间的变化。

对于这里介绍的代表性结果，纯化的 T4 噬菌体裂解物是从 Rohwer 实验室维护的噬菌体库储备中繁殖的。如本方案所述，用于繁殖 T4 噬菌体的噬菌体方法^{进行了调整 25}。该方法可在三天内产生高滴度、内毒素低的噬菌体原液。利用这种方法，常规收集 10 mL ≥^{10 10} 个斑块形成单位 （pfu）/mL 的 T4 噬菌体，< 0.5 个内毒素单位 （EU）/mL。口服或静脉给药小鼠的推荐内毒素水平分别为 ≤ 20 EU/mL 和 ≤ 5 EU/kg/h（或 20 g 小鼠在 1 小时内施用 0.1 EU），使其成为 体内 接种的噬菌体制备的合适方法。所有噬菌体储备均储存在4°C盐水镁（SM）噬菌体缓冲液中（步骤1.1.5.1中提供的配方）。 大肠杆菌 在LB培养基中培养。对于各种噬菌体-细菌对，不同的培养基和生长条件可以从该方案中调整。噬菌体也可以来自环境，例如废水、海水、土壤和肠道内容物，并且可以在制备之前按照 Sambrook 和 Russell²⁶ 的规定进行分离和纯化，使用适当的生长和繁殖条件对每个噬菌体宿主^{对 25}。或者，噬菌体可以从商业来源（见 材料表）或噬菌体库获得。