Summary

Um método simplificado para gerar organoides renais a partir de células-tronco pluripotentes humanas

Published: April 13, 2021
doi:

Summary

Aqui descrevemos um protocolo para gerar organoides renais a partir de células-tronco pluripotentes humanas (hPSCs). Este protocolo gera organoides renais dentro de duas semanas. Os organoides renais resultantes podem ser cultivados em frascos rotadores em larga escala ou placas de agitação magnética multi-bem para abordagens paralelas de teste de drogas.

Abstract

Organoides renais gerados a partir de hPSCs forneceram uma fonte ilimitada de tecido renal. Os organoides renais humanos são uma ferramenta inestimável para estudar doenças e lesões renais, desenvolver terapias baseadas em células e testar novas terapêuticas. Para tais aplicações, um grande número de organoides uniformes e ensaios altamente reprodutíveis são necessários. Nós construímos nosso protocolo organoide renal publicado anteriormente para melhorar a saúde geral dos organoides. Este protocolo 3D simples e robusto envolve a formação de corpos embrióides uniformes em meio de componente mínimo contendo lipídios, suplemento de insulina-transferrina-selênio-etanolamina e álcool polivinyl com inibidor GSK3 (CHIR99021) por 3 dias, seguido pela cultura em meio contendo soro de reposição de soro de knock-out (KOSR). Além disso, ensaios agitados permitem a redução da aglomeração dos corpos embrionários e a manutenção de um tamanho uniforme, importante para reduzir a variabilidade entre organoides. No geral, o protocolo fornece um método rápido, eficiente e econômico para gerar grandes quantidades de organoides renais.

Introduction

Nos últimos anos, uma série de protocolos para diferenciar células-tronco pluripotentes humanas em organoides renais foram desenvolvidos 1,2,3,4,5. Os organoides renais forneceram uma importante ferramenta para auxiliar a pesquisa em novas abordagens de medicina regenerativa, doenças relacionadas ao rim, realizar estudos de toxicidade e desenvolvimento de medicamentos terapêuticos. Apesar de sua ampla aplicabilidade, os organoides renais têm limitações como falta de maturação, capacidade de cultura limitada a longo prazo in vitro e uma escassez de vários tipos de células encontrados no rim humano 6,7,8. Trabalhos recentes têm focado na melhoria do nível de maturação organoide, ampliando os períodos culturais e ampliando a complexidade das populações de células renais, modificando os protocolos existentes 9,10,11,12. Nesta atual iteração do nosso protocolo estabelecido 5,13, modificamos os componentes médios na primeira etapa do protocolo para uma base sem soro complementada com insulina-transferrina-selênio-etanolamina (ITSE), lipídios, álcool polivinyl (E5-ILP) e CHIR99021 (Figura 1). Essas mudanças fornecem um meio de baixa proteína totalmente definido, sem soro, com menos componentes do que a nossa composição média anterior 5,13 e sem fatores adicionais de crescimento. Como resultado, o meio da primeira etapa é menos trabalhoso para preparar do que a nossa versão anteriormente publicada, e pode reduzir a variabilidade em lote paralote 5. Estudos anteriores mostraram que tanto a insulina quanto a transferrina são importantes na cultura livre de soro14,15, no entanto, altos níveis de insulina podem ser inibidores para a diferenciação de mesoderm16. Mantivemos os baixos níveis de insulina conforme previsto no protocolo original, e reduzimos ainda mais os níveis de KOSR (contendo insulina) no segundo estágio do ensaio. De acordo com outros protocolos para formação organoide renal, níveis mais baixos de KOSR são benéficos para manter um equilíbrio entre a proliferação e a diferenciação do tecido renal17. Além disso, reduzimos a concentração de glicose em nosso estágio II médio13.

Nosso método descreve uma configuração para ensaio de suspensão de organoides renais, produzindo até ~1.000 organoides de uma placa de cultura hPSC 100 mm confluente inicial de ~60% conforme descrito na publicação original 5,13. Este protocolo pode ser facilmente dimensionado até começar com várias placas de 100 mm ou 150 mm para aumentar ainda mais o número de organoides.

Protocol

Todos os experimentos utilizando hPSCs foram realizados em conformidade com as diretrizes institucionais, e foram realizados em uma capa de biossegurança classe II com equipamentos de proteção individual adequados. Todos os reagentes são de grau de cultura celular, a menos que seja dito o contrário. Todas as culturas são incubadas a 37 °C, 5% de atmosfera de ar CO2 . Em todas as etapas do ensaio, corpos embrionários ou organoides renais podem ser coletados e fixados ou preparados para análise. As linh…

Representative Results

Nesta versão mais recente do nosso protocolo, a diferenciação organoide renal é iniciada em um meio de proteína definido e baixo. Os ensaios são realizados inteiramente em suspensão e contam com a capacidade inata de diferenciação e organização dos HPSCs para o início da tubulogênese. Um único ensaio originário de uma placa de cultura hPSC de 100 mm ~60% confluente produz rotineiramente 500-1.000 organoides renais, como mostrado em nossa publicação anterior5. Devido a um número t…

Discussion

Estudos anteriores mostraram que as etapas iniciais do protocolo são fundamentais para a diferenciação intermediária do mesoderm 5,19,20 e, portanto, é essencial implementar uma rigorosa composição média nesta fase. Remover componentes indefinidos como soro, albumina, híbridomoico livre de proteínas II do primeiro estágio do protocolo pode ajudar a melhorar a eficiência de diferenciação consistente entre os ensaios…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esta pesquisa foi financiada pelos Institutos Nacionais de Saúde R01 DK069403, UC2 DK126122 e P30-DK079307 e asan Foundation for Kidney Research Ben J. Lipps Research Fellowship Program to AP.

Materials

2-Mercaptoethanol Thermo Fisher 21-985-023
Anti-adherence rinsing solution STEMCELL Technologies 7010
CHIR99021 STEMCELL Technologies 72054 10 mM stock in DMSO
Corning disposable spinner flasks Fisher Scientific 07-201-152
Corning Ultra-Low Attachment 6-well plates Fisher Scientific 07-200-601
Corning Slow-Speed Stirrers Fisher Scientific 11-495-03 Multi plate magnetic stirrer for spinner flask culture
Dispase STEMCELL Technologies 7923 Aliquot and freeze
DMEM, low glucose, pyruvate, no glutamine, no phenol red Thermo Fisher 11054020
DPBS 1x, no calcium, no magnesium Thermo Fisher 14-190-250
Egg / Oval Stirring Bars 2mag PI20106
Excelta General-Purpose Tweezers Fisher Scientific 17-456-103 Keep sterile in the cell culture hood
EZBio Single Use Media Bottle, 250mL Foxx Life Sciences 138-3211-FLS Used to make PVA 10%
Falcon Standard Tissue Culture Dishes (100 mm) Thermo Fisher 08-772E
Fisherbrand Sterile Aspirating Pipet 2mL Fisher Scientific 14-955-135
Fisherbrand  Cell Lifters – Cell lifter Fisher Scientific 08-100-240
Fisherbrand Multi Function 3D Rotators Fisher Scientific 88-861-047 Orbital shaker
Geltrex LDEV-Free Reduced Growth Factor Basement Membrane Matrix Thermo Fisher A1413302 BME. Aliquot on ice and freeze. Another suitable matrix alternative is Matrigel or Cultrex.
Gentle Cell Dissociation Reagent STEMCELL Technologies 7174 GCDR
GlutaMAX Supplement Thermo Fisher 35-050-061 L-glutamine supplement.
HEPES (1M) Thermo Fisher 15-630-080
Insulin-Transferrin-Selenium-Ethanolamine Thermo Fisher 51-500-056 ITSE
KnockOut  Serum Replacement – Multi-Species Thermo Fisher A3181502 KOSR. Aliquot and freeze
Lipid Mixture 1, Chemically Defined Millipore-Sigma L0288-100ML
MEM Non-Essential Amino Acids Solution Thermo Fisher 11140-050
MilliporeSigma Stericup Quick Release-GP Sterile Vacuum Filtration System 500mL Fisher Scientific S2GPU05RE
MilliporeSigma  Stericup Quick Release-GP Sterile Vacuum Filtration System 250mL Fisher Scientific S2GPU02RE
MIXcontrol MTP / Variomag TELEcontrol MTP Control Unit 2mag VMF 90250 U
MIXdrive 6 MTP / Variomag TELEdrive 6 MTP Microplate Stirring Drive 2mag VMF 40600 6MSP
MP Biomedicals  7X Cleaning Solution Fisher Scientific MP0976670A4 Tissue culture suitable detergent. Make a 5% solution in water
mTeSR1 STEMCELL Technologies 85850 hPSC medium.TeSR-E8, NutriStem XF, and mTeSR Plus medium have also been tested and are suitable alternatives. 
Nunc 50 mL Conical, Sterile Centrifuge Tubes Fisher Scientific 12-565-270
Nunc 15mL Conical Sterile Centrifuge Tubes Fisher Scientific 12-565-268
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher 15-140-122 Aliquot and freeze
Plasmocin Invivogen ant-mpt Anti-mycoplasma reagent. Aliquot and freeze
pluriStrainer® 200 µm Fisher Scientific NC0776417 Cell strainer
pluriStrainer® 500 µm Fisher Scientific NC0822591 Cell strainer
Poly(vinyl alcohol) 87-90% hydrolyzed  (PVA) Millipore-Sigma P8136-250G 10% in DPBS stirring at 98 degrees C until disolves, make in 138-3211-FLS
ROCK inhibitor Y-27632 (ROCKi) STEMCELL Technologies 72304 10 mM stock in DPBS
Sterile Disposable Serological Pipets  – 10mL Fisher Scientific 13-678-11E
Sterile Disposable Serological Pipets – 25mL Fisher Scientific 13-678-11
Sterile Disposable Serological pipette – 5 mL Fisher Scientific 13-678-12D
TeSR-E5 STEMCELL Technologies 5916 Serum-free, low protein base medium for E5-ILP
Variomag distriBOX 2 Distributor 2mag VMF 90512 If you use more than one MIXdrive

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Cite This Article
Przepiorski, A., Crunk, A. E., Holm, T. M., Sander, V., Davidson, A. J., Hukriede, N. A. A Simplified Method for Generating Kidney Organoids from Human Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (170), e62452, doi:10.3791/62452 (2021).

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