Summary

طريقة إزالة الأنسجة الكارهة للماء لأنسجة دماغ الفئران

Published: December 23, 2020
doi:

Summary

هنا نقدم طريقة إزالة الأنسجة الكارهة للماء التي تسمح بعرض الجزيئات المستهدفة كجزء من هياكل الدماغ السليمة. وقد تم الآن التحقق من صحة هذه التقنية للسيطرة F344/N والجرذان المعدلة وراثيا فيروس نقص المناعة البشرية-1 من كلا الجنسين.

Abstract

طرق إزالة الأنسجة الكارهة للماء قابلة للتعديل بسهولة وسريعة ومنخفضة التكلفة تسمح بدراسة جزيء مهم في عينات الأنسجة دون تغيير. تتطلب إجراءات وضع العلامات المناعية التقليدية قطع العينة إلى أقسام رقيقة ، مما يحد من القدرة على تسمية وفحص الهياكل السليمة. ومع ذلك، إذا كان يمكن أن تظل أنسجة الدماغ سليمة أثناء المعالجة، يمكن أن تظل الهياكل والدوائر سليمة للتحليل. تستغرق طرق التطهير التي تم إنشاؤها سابقا وقتا طويلا لتطهير الأنسجة تماما ، ويمكن أن تلحق المواد الكيميائية القاسية أضرارا بالأجسام المضادة الحساسة في كثير من الأحيان. طريقة iDISCO بسرعة وتماما مسح الأنسجة، متوافق مع العديد من الأجسام المضادة، ويتطلب أي معدات مختبر خاص. تم التحقق من صحة هذه التقنية في البداية لاستخدامها في أنسجة الفئران ، ولكن البروتوكول الحالي يكيف هذه الطريقة لتصوير نصفي الكرة الأرضية للتحكم وأدمغة الفئران المعدلة وراثيا. بالإضافة إلى ذلك، يقوم هذا البروتوكول أيضا بإجراء تعديلات عديدة على البروتوكول الموجود مسبقا لتوفير صور أوضح مع تلطيخ أقل للخلفية. تم التحقق من صحة الأجسام المضادة لIba-1 والتيروزين هيدروكسيلاز في الفئران المعدلة وراثيا HIV-1 وفي فئران التحكم F344/N باستخدام طريقة إزالة الأنسجة الكارهة للماء الحالية. الدماغ هو شبكة متشابكة، حيث تعمل الهياكل معا في كثير من الأحيان أكثر من منفصلة عن بعضها البعض. تحليل الدماغ ككل بدلا من نظام مزيج من القطع الفردية هو أكبر فائدة من هذا الأسلوب تطهير الدماغ كله.

Introduction

وقد تم التحقق من صحة العديد من تقنيات إزالة الأنسجة للاستخدام في الدماغ: الهيدروجيل، والهيدروفيلي، والماء. وتهدف هذه التقنيات لتحويل نسيج شفاف من خلال delipidation، إزالة اللون، والشارات عن طريق إدارة المذيبات. بمجرد أن يطابق مؤشر الانكسار لعينة الأنسجة مؤشر الانكسار لوسط التصوير المختار ، يمكن الحصول على صورة واضحة للعينة. تقنيات هيدروجيل القائمة، مثل وضوح، الجزيئات الحيوية آمنة في الأنسجة عن طريق ربطها إلى الهيدروجيلات المستندة إلى الأكرييل، والذي يمنع الضرر الهيكلي وفقدان البروتينات1. ومع ذلك، تستخدم تقنيات الهيدروجيل مواد كيميائية قاسية من القدرة على إتلاف الأنسجة الأكثر هشاشة، وقد لا تكون عينات الأنسجة الأكثر كثافة متوافقة مع بروتوكول الهيدروجيل. قد تتطلب بعض تقنيات الهيدروجيل معدات باهظة الثمن أو تؤدي إلى توسيع الأنسجة. تقنيات هيدروفيليك، مثل CUBIC، والحفاظ على بنية 3D من خلال تشكيل روابط الهيدروجين داخل الأنسجة2. يمكن أن يحدث توسع الأنسجة أيضا في بروتوكول هيدروفيلي معين. قدرة تطهير تقنيات المياه في كثير من الأحيان لا تتطابق مع القدرة التي تقنيات الكارهة للماء لديها، وهو أمر مهم للأنسجة أكثر كثافة وأكثر سمكا3.

تقنيات رهاب الماء عادة ما تكون سريعة، لا تتطلب معدات خاصة، وإنتاج عينة التي يسهل التعامل معها وتخزينها. iDISCO هو تقنية مسعورة تقضي على الانكماش الذي يمكن أن يحدث في بروتوكول مسعور آخر. في الأصل ، وصفت تقنية إزالة الأنسجة iDISCO من قبل رينييه وآخرون4 للأجنة والأعضاء الكثيفة والبالغة للفئران. هذه التقنية يزيل الماء من الأنسجة في خطوة الجفاف الأولي، وبالتالي الحد من تشتت الضوء. يتم اختراق الأنسجة أثناء المعالجة المسبقة للسماح بتغلغل الأجسام المضادة العميقة. وتستخدم الأصباغ اليكسا فلور في الطيف الأحمر البعيد ل immunolabeling لتجنب autofluorescence من الأنسجة في الأطوال الموجية أقل5. الأنسجة التي خضعت لبروتوكولات إزالة رهاب الماء قادرة على التعامل معها بسهولة ويمكن تصويرها عدة مرات بسبب طول عمر أصباغ أليكسا فلور. إذا تم تخزينها بشكل صحيح ، يمكن للأنسجة توفير الصور لعدة أشهر إلى سنة بعد المعالجة الأولية.

في هذا البروتوكول، تم استخدام الأجسام المضادة التيروزين هيدروكسيلوكس (TH)، والأجسام المضادة Iba1، والكوليرا السم Subunit B (CTB) على كل من الذكور والإناث السيطرة وفيروس نقص المناعة البشرية-1 المعدلة وراثيا (TG) أدمغة الفئران. يمتلك فأر HIV-1 Tg سبعة من الجينات التسعة التي تشكل الجينوم الفيروسي HIV-1 ، مما يؤدي إلى نموذج غير معد للتعرض الطويل الأجل للبروتين HIV-16و7و8. وقد أظهرت سابقا التعديلات الدوبامين في الفئران TG HIV-1، وفيروس نقص المناعة البشرية-1 نفسه هو مرض التهابي، لذلك كان اختيار الأجسام المضادة ذات الصلة لتصميم التجريبية9،10،11،12. CTB هو التتبع الذي يعلق على الخلايا العصبية عن طريق ربط ganglioside ويمكن استخدامها لتتبع التوقعات afferent في الدماغ. وقد سبق أن استخدمت CTB لدراسة التوقعات من نواة accumbens إلى منطقة نيغرا substantia, منطقتين من الدماغ تشارك بشكل كبير مع مسارات الدوبامين13,14,15.

في هذا البروتوكول، سوف TH بمثابة علامة لإنتاج الدوبامين، وسوف Iba1 علامة microglia تنشيط. الأجسام المضادة TH تستخدم تسميات انتقائية شريط واحد في حوالي 62 كيلودا التي تتوافق مع هيدروكسيلاز التيروزين. يتوافق الجسم المضاد Iba1 مع تسلسل Iba1 carboxy-terminal. وقد تربى كلا الجسمين المضادين في أرنب وكانت متعددة النسيلة. سيتم استخدام CTB لتتبع الخلايا العصبية إلى الوراء من منطقة النواة المتكئة إلى منطقة نيغرا تحتستانتيا. كما يقدم البروتوكول الحالي إرشادات لتعديل بروتوكول iDISCO الأصلي بطريقتين متميزتين: 1) التخفيض الإجمالي لتلطيخ الخلفية عن طريق تغيير الكواشف المصلية في خطوات الحجب ، و 2) توسيع وقت الحضانة ليكون مناسبا لعينات الأنسجة الأكبر. وعموما، يوفر هذا البروتوكول دليلا مستمرا على أن تقنيات إزالة رهاب الماء ممكنة في أنسجة الدماغ للفئران، وليس لها تفاعلات ضارة ملحوظة مع البروتينات الفيروسية HIV-1، وهي متوافقة مع الأجسام المضادة TH، والأجسام المضادة Iba1، وCTB.

Protocol

تم مراجعة جميع بروتوكولات الحيوانات والموافقة عليها من قبل لجنة رعاية الحيوان واستخدامه في جامعة كارولينا الجنوبية. 1. إعداد حل المخزون الحل 1 (1 لتر): إلى 900 مل من H2O deionized إضافة 100 مل من 10x فوسفات المالحة المخزنة مؤقتا (PBS) و 2 مل من تريتون X-100. الحل 2 (1 لتر): إلى 900 م?…

Representative Results

تم تحقيق التطهير الكامل للأقسام الكبيرة من كل من F344/N وأنسجة دماغ الفئران HIV-1 باستخدام بروتوكول إزالة الأنسجة الكارهة للماء المعدل هذا. يعرض الشكل 1 صورة كونفوجال نموذجية ل TH في منطقة نيغرا تحتستانتيا. يمثل الشكل 1A تلطيخا إيجابيا كثيفا. يمكن تحليل المناطق ال…

Discussion

يوفر تطهير الأنسجة حلا لقيود بروتوكول IHC التقليدي. عينة شفافة تقلل من تشتت وامتصاص الضوء ، والتي توفر الوصول البصري على المستوى الخلوي إلى الأنسجة السليمة18،19. تقنيات إزالة الأنسجة تحويل نسيج شفاف من خلال delipidation، إزالة اللون، والشارات مع إدارة المذيبات. بمج…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم تمويل هذا العمل من منح المعاهد القومية للصحة: NS100624، DA013137، HD043680، MH106392 & amp؛ بواسطة T32 منحة التدريب 5T32GM081740

Materials

Cholera Toxin Subunit B (Recombinant), Alexa Fluor 488 Invitrogen C34775
DBE Sigma-Aldrich 108014-1KG
DCM Sigma-Aldrich 270997-100mL
DMSO Sigma-Aldrich 472301-1L
Glycine Fisher Chemical G46-500
Goat anti-rabbit Alexa Fluor Plus 647 Invitrogen A32733
Goat serum Sigma Life Science G9023-10mL
Heparin Acros Organics 41121-0010
Iba1 primary antibody FUJIFILM Wako 019-19741
Kwik-sil epoxy VWR 70730-062
Methanol Sigma-Aldrich 34860-1l-R
PBS Fisher Bioreagents BP2944-100
Perfusion machine VWR 70730-062 mini pump variable flow
PFA Sigma-Aldrich 158127-3KG
TH primary antibody Millipore Sigma AB152
TritonX-100 Fisher Bioreagents BP151-500
Tween-20 Fisher Bioreagents BP337-500

References

  1. Chung, K., et al. Structural and molecular interrogation of intact biological systems. Nature. 497 (7449), 332-337 (2013).
  2. Susaki, E. A., et al. Whole-brain imaging with single-cell resolution using chemical cocktails and computational analysis. Cell. 157 (3), 726-739 (2014).
  3. Ueda, H. R., et al. Tissue clearing and its applications in neuroscience. Nature Reviews Neuroscienc. 21, 298 (2020).
  4. Renier, N., et al. iDISCO: a simple, rapid method to immunolabel large tissue samples for volume imaging. Cell. 159 (4), 896-910 (2014).
  5. Renier, N., et al. Mapping of brain activity by automated volume analysis of immediate early genes. Cell. 165 (7), 1789-1802 (2016).
  6. Reid, W., et al. An HIV-1 transgenic rat that develops HIV-related pathology and immunologic dysfunction. Proceedings of the National Academy of Science U. S. A. 98, 9271-9276 (2001).
  7. Vigorito, M., Connaghan, K. P., Chang, S. L. The HIV-1 transgenic rat model of neuroHIV. Brain, Behavior, and Immunity. 48, 336-349 (2015).
  8. McLaurin, K. A., et al. Synaptic connectivity in medium spiny neurons of the nucleus accumbens: A sex-dependent mechanism underlying apathy in the HIV-1 transgenic rat. Frontiers in Behavior Neurosciences. 12, 285 (2018).
  9. Fitting, S., Booze, R. M., Mactutus, C. F. HIV-1 proteins, Tat and gp120, target the developing dopamine system. Current HIV Research. 13, 135-137 (2015).
  10. Javadi-Paydar, M., Roscoe, R. F., Denton, A. R., Mactutus, C. F., Booze, R. M. HIV-1 and cocaine disrupt dopamine reuptake and medium spiny neurons in female rat striatum. PLos One. 12 (11), 0188404 (2017).
  11. Bertrand, S. J., Mactutus, C. F., Harrod, S. B., Moran, L. M., Booze, R. M. HIV-1 proteins dysregulate motivational processes and dopamine circuitry. Science Report. 8, 6152 (2018).
  12. Denton, A. R., et al. Selective monoaminergic and histaminergic circuit dysregulation following long-term HIV-1 protein exposure. Journal of neurovirology. 25 (4), 540-550 (2019).
  13. Berendse, H. W., Groenewegen, H. J., Lohman, A. H. Compartmental distribution of ventral striatal neurons projecting to the mesencephalon in the rat. Journal of Neuroscienc. 12 (6), 2079-2103 (1992).
  14. Peyron, C., Petit, J. M., Rampon, C., Jouvet, M., Luppi, P. H. Forebrain afferents to the rat dorsal raphe nucleus demonstrated by retrograde and anterograde tracing methods. Neuroscience. 82 (2), 443-468 (1998).
  15. Barrot, M., et al. Braking dopamine systems: a new GABA master structure for mesolimbic and nigrostriatal functions. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscienc. 32 (41), 14094-14101 (2012).
  16. Roostalu, U., et al. Quantitative whole-brain 3D imaging of tyrosine hydroxylase-labeled neuron architecture in the mouse MPTP model of Parkinson’s disease. Disease Models & Mechanisms. 12 (11), (2019).
  17. Ransohoff, R., Cardona, A. The myeloid cells of the central nervous system parenchyma. Nature. 468, 253-262 (2010).
  18. Rocha, M. D., et al. Tissue Clearing and Light Sheet Microscopy: Imaging the Unsectioned Adult Zebra Finch Brain at Cellular Resolution. Frontiers in Neuroanatomy. 13, 13 (2019).
  19. Richardson, D. S., Lichtman, J. W. Clarifying tissue clearing. Cell. 162 (2), 246-257 (2015).

Play Video

Cite This Article
Kirchner, K. N., Li, H., Denton, A. R., Harrod, S. B., Mactutus, C. F., Booze, R. M. A Hydrophobic Tissue Clearing Method for Rat Brain Tissue. J. Vis. Exp. (166), e61821, doi:10.3791/61821 (2020).

View Video