Summary

Нейрит Анализ нарост и нейротоксичность оценка с нейронным предшественником человека клетки-производные нейронов

Published: August 06, 2020
doi:

Summary

Представленный протокол описывает метод нейритового анализа наростов и оценки нейротоксичности малых молекулярных соединений.

Abstract

Neurite анализ нарост и нейротоксичность оценки двух основных исследований, которые могут быть выполнены с использованием представленного метода здесь. Данный протокол обеспечивает надежный анализ нейрональной морфологии вместе с количественными измерениями модификаций по длине нейрита и локализации синаптического белка и изобилию при лечении небольшими молекулярными соединениями. В дополнение к применению представленного метода в исследованиях нейритового роста, оценка нейротоксичности может быть выполнена для оценки, разграничения и ранжирования коммерческих химических соединений на основе их потенциального эффекта нейротоксичности развития.

Хотя клеточные линии в настоящее время широко используются в сложных анализов скрининга в неврологии, они часто отличаются генетически и фенотипически от их происхождения тканей. Первичные клетки, с другой стороны, поддерживают важные маркеры и функции, наблюдаемые in vivo. Таким образом, из-за потенциала перевода и физиологической значимости, что эти клетки могут предложить нейрит анализ роста и нейротоксичность оценка может значительно извлечь выгоду из использования человеческих нейронных клеток-предшественников (HNPCs) в качестве основной модели клеток человека.

Представленный метод здесь может быть использован для проверки на способность соединений, чтобы вызвать нейритовой нарост и нейротоксичность, воспользовавшись человеческого нервного прародителя клеточных нейронов, клеточной модели тесно представляющих человеческой биологии “.

Introduction

Neurite роста является процессом, основополагающим для формирования нейронной сети и регенерации нервов1,2. После травмы, нейрит нарост играет ключевую роль в регенерации нервной системы. Нейрит нарост также является важным элементом внеклеточной сигнализации в индуцировании нейронных регенеративных мероприятий для повышения результатов для нейродегенеративных расстройств и нейрональных травм3,4,5,6.

Поддерживая свой потенциал дифференциации в производстве различных нейронных линий, клетки-предшественники человека (HNPCs) могли бы обеспечить модельную систему для изучения функции центральной нервной системы (ЦНС) и развития7,,8,9. Высокий переводческий потенциал и физиологическая значимость ГНПЦ в качестве основной модели клеток человека дают значительное преимущество в скринингах обнаружения лекарств, связанных с нейритом. Тем не менее, обслуживание и масштабирование основных моделей клеток для анализа высокой пропускной способности может быть трудоемким и трудоемким10,,11,,12,13.

В дополнение к применению представленного метода в исследованиях нейритового нарастания, оценка нейротоксичности является еще одним приложением с использованием нейронов, полученных из hNPC. Существуют тысячи коммерческих химических соединений, которые либо не рассматриваются или с плохо понимаемой нейротоксичности потенциал. Таким образом, более надежные и эффективные скрининговые эксперименты для оценки, разграничения и ранжирования соединений на основе их потенциала для получения развития нейротоксичности пользуется большим спросом14. Увеличение распространенности и частоты неврологических расстройств наряду с обилием непроверенных соединений в окружающей среде требует разработки более надежных и эффективных экспериментов по выявлению опасных экологических соединений, которые могут представлять нейротоксичность15.

Представленный метод здесь может быть использован для проверки на способность соединений, чтобы вызвать нейритовой нарост и нейротоксичность, воспользовавшись человеческим нейроном нервного прародителя, полученных из клетки, клеточной модели, тесно представляющей человеческую биологию.

Protocol

Заявление по этике: Образцы плода были получены из исследовательской лаборатории врожденных дефектов в Университете Вашингтона в Сиэтле в рамках программы распределения тканей, поддерживаемой Национальным институтом здравоохранения (NIH). Исследовательская лаборатория по врожденным…

Representative Results

Протокол, представленный в рукописи, успешно используется в двух недавно опубликованных работах22,,23. Рисунок 3 демонстрирует использование нейронов, полученных из ННПЦ, при изучении влияния ингибиторов HDAC в качестве эпигенетических соед…

Discussion

Этот протокол является одним из немногих опубликованных работ, описывающих тест на нейрит длины при лечении с тестовыми соединениями. Кроме того, мы описываем, как использовать hNPCs для нейритового анализа нароста и оценки нейротоксичности. Используя этот анализ нейритового роста и оце…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Это исследование было профинансировано грантовом исследования NIMAD (940714), присужденным MAF.

Materials

4-well Glass Chamber Slides Sigma PEZGS0816
Alexa Fluor 488 Invitrogen A-11001
Alexa Fluor 594 Invitrogen R37117
Antibiotic-Antimycotic Gibco 15240062
Anti-β-Tubulin III Thermo MA1-118X
B27 Thermo 17504001
B27 – minus vitamin A Thermo 12587010
BDNF PeproTech 450-02
BSA Sigma A8531
CellTiter-Glo Promega G7572
CoolCell Corning 432000 Cell freezing containers ensuring standardized controlled-rate -1℃/minute cell freezing in a -80℃ freezer
CryoStor CS10 StemCell Technologies 7930 Cryopreservation medium containing 10% DMSO
DAPI Thermo D1306
DMEM/F12 Gibco 11320033
DMSO Sigma 34869-100ML
EGF Gibco PHG0311
FGF Gibco PHG6015
Formaldehyde Thermo FB002
GDNF PeproTech 450-10
Glutamax Gibco 35050061 L-alanyl-L-glutamine supplement
Goat Serum Thermo 50062Z
Heparin Calbiochem 375095
Laminin Sigma L2020-1MG
L-Ascorbic Acid Sigma A92902-25G
L-lysine Sigma L5501
MEM non-essential amino acids Gibco 11140050
mFreSR StemCell Technologies 5854 Serum-free cryopreservation medium designed for the cryopreservation of human embryonic and induced pluripotent stem cells
N2 Gibco 17502048
NaCl Sigma 71376
Neurobasal Medium Gibco 21103049
Nunc 384-Well Polystyrene White Microplates Thermo 164610
PBS Thermo 10010-049
Poly‐L‐lysine Sigma P5899-5MG
ProLong Gold Antifade Mountant Thermo P10144
Retinoic Acid Sigma R2625
Sodium Azide Sigma S2002
StemPro Accutase Gibco A1110501 Cell dissociation reagent containing proteolytic and collagenolytic enzymes
Synaptophysin Thermo MA5-14532
Tris Base Sigma 10708976001
Triton X-100 Sigma X100-100ML

References

  1. Sherman, S. P., Bang, A. G. High-throughput screen for compounds that modulate neurite growth of human induced pluripotent stem cell-derived neurons. Disease Models & Mechanisms. 11 (2), (2018).
  2. Al-Ali, H., Beckerman, S. R., Bixby, J. L., Lemmon, V. P. In vitro models of axon regeneration. Experimental Neurology. 287, 423-434 (2017).
  3. Kudo, T., et al. Induction of neurite outgrowth in PC12 cells treated with temperature-controlled repeated thermal stimulation. PloS One. 10 (4), 0124024 (2015).
  4. Higgins, S., Lee, J. S., Ha, L., Lim, J. Y. Inducing neurite outgrowth by mechanical cell stretch. BioResearch Open Access. 2 (3), 212-216 (2013).
  5. Muramatsu, R., Ueno, M., Yamashita, T. Intrinsic regenerative mechanisms of central nervous system neurons. Bioscience Trends. 3 (5), (2009).
  6. Read, D. E., Herbert, K. R., Gorman, A. M. Heat shock enhances NGF-induced neurite elongation which is not mediated by Hsp25 in PC12 cells. Brain Research. 1221, 14-23 (2008).
  7. Finan, G. M., et al. Bioactive Compound Screen for Pharmacological Enhancers of Apolipoprotein E in Primary Human Astrocytes. Cell Chemical Biology. 23 (12), 1526-1538 (2016).
  8. Magistri, M., et al. A comparative transcriptomic analysis of astrocytes differentiation from human neural progenitor cells. European Journal of Neuroscience. 44 (10), 2858-2870 (2016).
  9. Bez, A., et al. Neurosphere and neurosphere-forming cells: morphological and ultrastructural characterization. Brain Research. 993 (1-2), 18-29 (2003).
  10. Grandjean, P., Landrigan, P. J. Neurobehavioural effects of developmental toxicity. The Lancet Neurology. 13 (3), 330-338 (2014).
  11. Finkbeiner, S., Frumkin, M., Kassner, P. D. Cell-based screening: extracting meaning from complex data. Neuron. 86 (1), 160-174 (2015).
  12. An, W. F., Tolliday, N. Cell-based assays for high-throughput screening. Molecular Biotechnology. 45 (2), 180-186 (2010).
  13. Astashkina, A., Mann, B., Grainger, D. W. A critical evaluation of in vitro cell culture models for high-throughput drug screening and toxicity. Pharmacology & Therapeutics. 134 (1), 82-106 (2012).
  14. Swinney, D. C., Anthony, J. How were new medicines discovered. Nature Reviews Drug Discovery. 10 (7), 507 (2011).
  15. Ryan, K. R., et al. Neurite outgrowth in human induced pluripotent stem cell-derived neurons as a high-throughput screen for developmental neurotoxicity or neurotoxicity. Neurotoxicology. 53, 271-281 (2016).
  16. Magistri, M., Velmeshev, D., Makhmutova, M., Faghihi, M. A. Transcriptomics profiling of Alzheimer’s disease reveal neurovascular defects, altered amyloid-β homeostasis, and deregulated expression of long noncoding RNAs. Journal of Alzheimer’s Disease. 48 (3), 647-665 (2015).
  17. Darbinyan, A., Kaminski, R., White, M. K., Darbinian, N., Khalili, K. Isolation and propagation of primary human and rodent embryonic neural progenitor cells and cortical neurons. Neuronal Cell Culture. , 45-54 (2013).
  18. Gil-Perotín, S., et al. Adult neural stem cells from the subventricular zone: a review of the neurosphere assay. The Anatomical Record. 296 (9), 1435-1452 (2013).
  19. Ebert, A. D., McMillan, E. L., Svendsen, C. N. Isolating, expanding, and infecting human and rodent fetal neural progenitor cells. Current Protocols in Stem Cell Biology. 6 (1), 2 (2008).
  20. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676 (2012).
  21. Collins, T. J. ImageJ for microscopy. Biotechniques. 43 (1), 25-30 (2007).
  22. Bagheri, A., et al. HDAC Inhibitors Induce BDNF Expression and Promote Neurite Outgrowth in Human Neural Progenitor Cells-Derived Neurons. International Journal of Molecular Sciences. 20 (5), 1109 (2019).
  23. Sartor, G. C., et al. Enhancement of BDNF expression and memory by HDAC inhibition requires BET bromodomain reader proteins. Journal of Neuroscience. 39 (4), 612-626 (2019).
  24. Conde, C., Cáceres, A. Microtubule assembly, organization and dynamics in axons and dendrites. Nature Reviews Neuroscience. 10 (5), 319 (2009).
  25. Schmitz, S. K., et al. Automated analysis of neuronal morphology, synapse number and synaptic recruitment. Journal of Neuroscience Methods. 195 (2), 185-193 (2011).
  26. Grandjean, P., Landrigan, P. J. Developmental neurotoxicity of industrial chemicals. The Lancet. 368 (9553), 2167-2178 (2006).
  27. Dragunow, M. The adult human brain in preclinical drug development. Nature reviews Drug Discovery. 7 (8), 659 (2008).
  28. Dolmetsch, R., Geschwind, D. H. The human brain in a dish: the promise of iPSC-derived neurons. Cell. 145 (6), 831-834 (2011).
  29. Pan, C., Kumar, C., Bohl, S., Klingmueller, U., Mann, M. Comparative proteomic phenotyping of cell lines and primary cells to assess preservation of cell type-specific functions. Molecular & Cellular Proteomics. 8 (3), 443-450 (2009).
  30. Alge, C. S., Hauck, S. M., Priglinger, S. G., Kampik, A., Ueffing, M. Differential protein profiling of primary versus immortalized human RPE cells identifies expression patterns associated with cytoskeletal remodeling and cell survival. Journal of Proteome Research. 5 (4), 862-878 (2006).
  31. Yeo, Y., et al. Human Embryonic Stem Cell-Derived Neural Lineages as In Vitro Models for Screening the Neuroprotective Properties of Lignosus rhinocerus (Cooke) Ryvarden. BioMed Research International. 2019, (2019).

Play Video

Cite This Article
Bagheri, A., Razavipour, S. F., Wahlestedt, C., Mowla, S. J., Faghihi, M. A. A Neurite Outgrowth Assay and Neurotoxicity Assessment with Human Neural Progenitor Cell-Derived Neurons. J. Vis. Exp. (162), e60955, doi:10.3791/60955 (2020).

View Video