Summary

تصنيع مرحلة المجهر للمراقبة الرأسية مع وظيفة التحكم في درجة الحرارة

Published: July 31, 2019
doi:

Summary

يعرض هنا بروتوكول باستخدام مرحلة المجهر التي تسيطر عليها درجة الحرارة التي تسمح حاوية عينة ليتم تركيبها على المجهر الرأسي.

Abstract

وعادة ما توضع العينات على مرحلة المجهر الأفقي للمراقبة المجهرية. ومع ذلك، لمراقبة تأثير الجاذبية على عينة أو دراسة السلوك العائم، فمن الضروري لجعل مرحلة المجهر عمودي. ولتحقيق ذلك، تم تصميم مجهر مقلوب جانبية يميل بنسبة 90 درجة. لمراقبة العينات مع هذا المجهر، يجب تأمين حاويات عينة مثل أطباق بيتري أو الشرائح الزجاجية إلى المرحلة عموديا. وقد تم تطوير جهاز يمكن تأمين حاويات العينة في مكان على مرحلة المجهر الرأسي ويرد وصفه هنا. مرفق هذا الجهاز إلى المرحلة يسمح مراقبة ديناميات عينة في المستوى الرأسي. القدرة على تنظيم درجة الحرارة باستخدام سخان مطاط السيليكون يسمح أيضا مراقبة السلوكيات عينة تعتمد على درجة الحرارة. وعلاوة على ذلك، يتم نقل بيانات درجة الحرارة إلى خادم إنترنت. يمكن التحكم في إعدادات درجة الحرارة ومراقبة السجل عن بعد من جهاز كمبيوتر أو هاتف ذكي.

Introduction

الفحص المجهري البصري هو تقنية تستخدم لزيادة التفاصيل التي يمكن ملاحظتها عن طريق تكبير عينة مع العدسات والضوء المرئي. في الفحص المجهري البصري، يتم توجيه الضوء إلى عينة، ثم يتم نقلها، أو عكسها، أو يتم التقاط ضوء الفلورسنت بواسطة عدسات مكبرة للمراقبة. تتوفر أنواع مختلفة من المجهر التي تختلف في التصميم لاستيعاب الاستخدامات المختلفة وطرق المراقبة. وتشمل التصاميم المختلفة مجهر تستقيم، والتي تم تنظيمها لإلقاء الضوء على عينة من أدناه للمراقبة من فوق، ومجهر مقلوب، الذي يضيء العينة من فوق للمراقبة من أدناه. المجاهر تستقيم هي التصميم الأكثر شيوعا والمستخدمة على نطاق واسع. غالبًا ما تستخدم المجاهر المقلوبة لمراقبة العينات التي لا تسمح بقفل العدسة عن بعد من الأعلى، مثل الخلايا المستزرعة الملتصقة بأسفل الحاوية. وقد أبلغت العديد من مجموعات البحوث ملاحظات في مجموعةواسعة من المجالات باستخدام المجاهر المقلوبة 1،7. كما تم تطوير العديد من الأجهزة الإضافية التي تستفيدمن ملامح المجاهر المقلوبة 8،10،11،12،13 .

حاليا، في جميع التصاميم المجهر التقليدية، مرحلة المجهر أفقي، وبالتالي غير مناسبة لمراقبة العينات المنتجة الحركة في المستوى الرأسي، (بسبب الجاذبية، الطفو، الحركة، الخ). لجعل هذه الملاحظات ممكنة، يجب أن يتم تدوير مرحلة المجهر ومسار الضوء إلى عمودي. المرحلة الرأسية مطلوبة لتركيب عموديا الشرائح الزجاجية أو حاويات عينة مثل أطباق بيتري إلى المرحلة. ولمعالجة هذا الأمر، تم بالفعل وضع مجهر مقلوب جانبي يميل إلى 90 درجة. ومع ذلك، إرفاق عينات مع الشريط أو غيرها من المواد اللاصقة لا تسفر عن الجمود على المدى الطويل اللازمة. وصف هنا هو الجهاز الذي يمكن تحقيق الاستقرار اللازم. يسمح هذا الجهاز بالمراقبة مع مرور الوقت لحركة العينة في المستوى الرأسي. كما جعل تركيب سخان المطاط السيليكون من الممكن لمراقبة تأثير التباين في درجة الحرارة على سلوك العينة. يتم نقل بيانات درجة الحرارة إلى خادم الإنترنت عن طريق واي فاي، ويمكن التحكم في إعدادات درجة الحرارة ومراقبة السجل عن بعد من جهاز كمبيوتر أو هاتف ذكي. على حد علمنا، لم يتم الإبلاغ عن المرحلة المرفقة بمجهر مائل جانبية يميل بنسبة 90 درجة في الدراسات السابقة.

وتتكون مرحلة المجهر من ثلاث لوحات الألومنيوم. يتم تركيب لوحة الألومنيوم الأوسط إلى لوحة الألومنيوم السفلي التي تعلق على المرحلة. يتم إرفاق المطاط سيليكون التي تحتوي على جهاز استشعار درجة الحرارة بين لوحات الألومنيوم الأوسط والعلوي. وتستخدم العصابات المطاطية لتثبيت العينة. يتم إرفاق مخالب في اليسار واليمين أربع نقاط من لوحة الألومنيوم العلوي لتأمين العصابات المطاطية. تتلقى دائرة التحكم في منظم درجة الحرارة إشارة من مستشعر درجة الحرارة المدمج في مطاط السيليكون وتعدل الطاقة الكهربائية بواسطة طريقة تعديل عرض النبض (PWM). يمكن زيادة درجة الحرارة تدريجيا إلى 50 درجة مئوية في 1 زيادات مئوية. هذا الجهاز مفيد للتطبيقات التي قد تكون حركات العينة العمودية تعتمد على درجة الحرارة.

ويقدم هذا التقرير أمثلة على آثار درجة الحرارة على الظاهرة العائمة المتمثلة في الدياتومات. وكأمثلة على دراسات رصد دياتوم، أُبلغ عن قياسات لسرعة ترسب مجموعات الخلايا، وتحليلات الحركة، ودراسات الهيكل فائقة الدقة، وما إلى ذلك،14و15و16و17 , 18 سنة , 19 سنة , 20 , 21 , 22 , 23– والجاذبية المحددة للدياتومات العائمة في الماء مع الكائنات الاصطناعية الضوئية أعلى قليلا من جاذبية المياه، ولذلك فإنها تميل إلى الغرق؛ ومع ذلك، فإنها سوف ترتفع إذا كان حتى الحمل الحراري طفيف يحدث. لدراسة هذه الظاهرة ، يتم تثبيت شريحة زجاجية عموديا على مرحلة المجهر ، ويلاحظ آثار زيادة درجة الحرارة على الحركة الرأسية دياتوم.

Protocol

1. التصميم تصنيع ألواح الألومنيوم قطع ثقب 101 مم في وسط لوحة الألومنيوم من الأبعاد 150 مم × 200 مم × 2 مم لاستخدامها كلوحة طليعة مع آلة معالجة الليزر. مخالب الجهاز في ثماني نقاط لتثبيت اثنين من العصابات المطاطية عبر طول، أو اثنين عبر عرض هذه اللوحة (انظر الشكل التكميلي 1A والشكل …

Representative Results

ويبين الشكل 2 توزيع درجة حرارة سخان المطاط. وكانت درجة الحرارة السطحية للسخان المطاطي موحدة في كل درجة حرارة. ويبين الشكل 3 مدى استجابة درجة الحرارة المقاسة لتحديد التغيرات في درجات الحرارة. يظهر الخط البرتقالي درجة الحرارة المحددة ويظهر ?…

Discussion

تحليل مسار خلايا دياتوم المتحركة هو نهج مفيد لتقييم حركية الدياتوم. ومع ذلك، في حين أن المجهر المقلوب العادي يراقب العينات أفقيا، فإنه ليس مناسبا لرصد تأثير الجاذبية أو الحركة العائمة في الاتجاه الرأسي. وضعت ووصفت هنا هو مرحلة المجهر الرأسي مع التحكم في درجة الحرارة وتعلق على المجهر المق?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وليس لدى أصحاب البلاغ أي اعتراف.

Materials

AC adapter 12V2A Akizuki Denshi Tsusho Co., Ltd. AD-D120P200 Tokyo, Japan
ADS1015 Substrate Akizuki Denshi Tsusho Co., Ltd. adafruit PRODUCT ID: 1083 Tokyo, Japan
Alminium Plate (Back Side Plate) Inoval Co., Ltd. W 150mm×L 200㎜×T 1.5mm Gifu, Japan
Alminium Plate (Forefront Plate) Inoval Co., Ltd. W 150mm×L 200㎜×T 2mm Gifu, Japan
Alminium Plate (Middle Lower Plate) Inoval Co., Ltd. W 150mm×L 200㎜×T 4mm Gifu, Japan
Alminium Plate (Middle Upper Plate) Inoval Co., Ltd. W 150mm×L 200㎜×T 5mm Gifu, Japan
Aluminum Pedestal (Lower Plate) Inoval Co., Ltd. D 100mm×T 3mm (30Φ) Gifu, Japan
Aluminum Pedestal (Upper Plate) Inoval Co., Ltd. D 100mm×T 3mm (30Φ) Gifu, Japan
Bold Modified Basal Freshwater Nutrient Solution Sigma-Aldrich Co. LLC B5282-500ML St. Louis, USA
Controller Case Marutsu Elec Co., Ltd. pff-13-3-9 Tokyo, Japan
CPU Akizuki Denshi Tsusho Co., Ltd. ESP-WROOM-02D Tokyo, Japan
Inverted microscope Olympus Corporation CKX 53 Tokyo, Japan
Low temperature hardening epoxy resin adhesive ThreeBond Co., Ltd. TB2086M Tokyo, Japan
Multi-turn semi-fixed volume Vertical type 500 Ω Akizuki Denshi Tsusho Co., Ltd. 3296W-1-501LF Tokyo, Japan
OLED module Akihabara Inc. M096P4W Tokyo, Japan
Pressed Cork (For supporting electrode ) Tera Co., Ltd. W 42mm×L 30㎜ Ishikawa, Japan
Pressed Cork (Lower Disk) Tera Co., Ltd. D 100mm×T 0.5mm (20Φ) Ishikawa, Japan
Pressed Cork (Upper Disk) Tera Co., Ltd. D 100mm×T 2.5mm (20Φ) Ishikawa, Japan
Rotary encoder with switch with 2 color LED Akizuki Denshi Tsusho Co., Ltd. P-05772 Tokyo, Japan
Silicone rubber heater Three High Co., Ltd. D 100mm×T 2.5mm (20Φ) Kanagawa, Japan
Substrate Seeed Technology Co., Ltd. mh5.0 Shenzhen, China
Temperature sensor Akizuki Denshi Tsusho Co., Ltd. NXFT15XH103FA2B050 Tokyo, Japan
Three-terminal DC / DC regulator 3.3 V Marutsu Elec Co., Ltd. BR301 Tokyo, Japan
Universal Flexible Arm Banggood Technology Co., Ltd. YP-003-2 Hong Kong, China
USB cable USB-A – MicroUSB Akizuki Denshi Tsusho Co., Ltd. USB CABLE A-MICROB Tokyo, Japan
Video Canera Sony Corporation HDR-CX590 Tokyo, Japan

References

  1. Drum, R. W. Electron Microscope Observations of Diatos. Osterreichische Botanische Zeitschrift. 116, 321 (1969).
  2. McBride, T. P. Preparing Random Distributions of Datom Values on Microscope Slides. Limnology and Oceangraphy. 33, 1627-1629 (1988).
  3. Liu, X. Y., Lu, Z., Sun, Y. Orientation Control of Biological Cells Under Inverted Microscopy. IEEE-ASME Transactions on Mechatronics. 16, 918-924 (2011).
  4. Kahle, J., et al. Applications of a Compact, Easy-to-Use Inverted Fluorescence Microscope. American Laboratory. 43, 11-14 (2011).
  5. Prunet, N., Jack, T. P., Meyerowitz, E. M. Live confocal imaging of Arabidopsis flower buds. Developmental Biology. , 114-120 (2016).
  6. Nimchuk, Z. L., Perdue, T. D. Live Imaging of Shoot Meristems on an Inverted Confocal Microscope Using an Objective Lens Inverter Attachment. Frontiers in Plant Science. 8, 10 (2017).
  7. Hedde, P. N., Malacrida, L., Ahrar, S., Siryaporn, A., Gratton, E. sideSPIM – selective plane illumination based on a conventional inverted microscope. Biomedical Optics Express. 8, 3918-3937 (2017).
  8. Crowe, W. E., Wills, N. K. A simple Method for Monitoring Changes in Cell Height using Fluorescent Microbeads and an Ussing-type Chamber for the Inverted Microscope. Pflugers Archiv-Europian journal of Physiology. , 349-357 (1991).
  9. Bavister, B. D. A Minichamber Device for Maintaining a Constant Carbon-Dioxide in Air Atmosphere during Prolonged Culture of Cells on the Stage of an Inverted Microscope. In Vitro Cellular & Developmental Biology. 24, 759-763 (1988).
  10. Makler, A. A New version of the 10-MU-M Chamber and its use for Semen Analysis with Inverted Microscope. Archives of Andrology. 13, 195-197 (1984).
  11. Xu, Z., et al. Flexible microassembly methods for micro/nanofluidic chips with an inverted microscope. Microelectronic Engineering. 97, 1-7 (2012).
  12. Datyner, N. B., Gintant, G. A., Cohen, I. S. Versatile Temperature Controlled Tissue Bath for Studies of Isolated Cells using an Inverted Microscope. Pflugers Archive- Europian Journal of Physiology. 403, 318-323 (1985).
  13. Claudet, C., Bednar, J. Magneto-optical tweezers built around an inverted microscope. Applied Optics. 44, 3454-3457 (2005).
  14. Yamaoka, N., Suetomo, Y., Yoshihisa, T., Sonobe, S. Motion analysis and ultrastructural study of a colonial diatom, Bacillaria paxillifer. Microscopy. 65, 211-221 (2016).
  15. Apoya-Horton, M. D., Yin, L., Underwood, G. J. C., Gretz, M. R. Movement modalities and responses to environmental changes of the mudflat diatom Cylindrotheca closterium (Bacillariophyceae). Journal of Phycology. 42, 379-390 (2006).
  16. Bannon, C. C., Campbell, D. A. Sinking towards destiny: High throughput measurement of phytoplankton sinking rates through time-resolved fluorescence plate spectroscopy. PLoS One. 12, 16 (2017).
  17. Clarkson, N., Davies, M. S., Dixey, R. Diatom motility and low frequency electromagnetic fields – A new technique in the search for independent replication of results. Bioelectromagnetics. 20, 94-100 (1999).
  18. Iwasa, K., Shimizu, A. Motility of Diatom, Phaeodactylum-Tricornutum. Experimental Cell Research. 74, (1972).
  19. Edgar, L. A. Mucilage Secretions of Moving Diatoms. Protoplasma. 118, 44-48 (1983).
  20. Edgar, L. A. Diatom Locomotion. Computer-Assisted Analysis of Cine Film British Phycological Journal. 14, 83-101 (1979).
  21. Iversen, M. H., Ploug, H. Temperature effects on carbon-specific respiration rate and sinking velocity of diatom aggregates – potential implications for deep ocean export processes. Biogeosciences. 10, 4073-4085 (2013).
  22. Riebesell, U. Comparison of Sinking and Sedimentation-Rate Measurements in a Diatom Winter Spring Bloom. Marine Ecology Progress Series. 54, 109-119 (1989).
  23. Drum, R. W., Hopkins, J. T. Diatom Locomotion – An Explanation. Protoplasma. 62, (1966).

Play Video

Cite This Article
Matsukawa, Y., Ide, Y., Umemura, K. Fabrication of Microscope Stage for Vertical Observation with Temperature Control Function. J. Vis. Exp. (149), e59799, doi:10.3791/59799 (2019).

View Video