Summary

כרומטין פרוטוקול Immunoprecipitation (ChIP) עבור דגימות עובריים נמוך-שפע

Published: August 29, 2017
doi:

Summary

כאן, אנו מתארים של כרומטין immunoprecipitation (ChIP) ופרוטוקול שבב-seq ספריית הכנה ליצירת פרופילים epigenomic גלובל מדגימות עובריים נמוך-שפע עוף.

Abstract

Immunoprecipitation כרומטין (ChIP) היא טכניקה נפוץ עבור מיפוי הלוקליזציה של שינויים היסטוניים post-translationally שונה, גרסאות היסטון, גורמי שעתוק או שינוי כרומטין אנזימים של לוקוס נתון או בקנה מידה הגנום כולו. השילוב של מבחני שבב עם הדור הבא רצפי (קרי, צ’יפ-Seq) היא גישה רב-עוצמה לחשוף באופן גלובלי רשתות בקרה רגולטריות וכדי לשפר את הביאור פונקציונלי של הגנום, במיוחד של רצפי תקינה ללא קידוד. שבב פרוטוקולים מחייבים בדרך כלל כמויות גדולות של חומר הסלולר, ובכך מסלק את הישימות של שיטה זו לחקירת סוגי תאים נדיר או ביופסיות רקמות קטנה. על מנת להפוך וזמינותו שבב תואם כמות חומר ביולוגי אשר בדרך כלל ניתן להשיג ויוו במהלך המוקדמות מופרה חוליות, נתאר כאן פרוטוקול שבב פשוטה שבה מספר השלבים הדרושים להשלמת assay הצטמצם כדי למזער את אובדן הדגימה. פרוטוקול שבב זה שימש בהצלחה לחקור שינוי היסטון שונים שונים עוף עובריים ורקמות העכבר למבוגרים באמצעות נמוך עד בינוני תא מספרים (5 x 104 – 5 x 105 תאים). חשוב, פרוטוקול זה תואם טכנולוגיית שבב-seq בשיטות הכנה ספרייה תקנית, ובכך לספק epigenomic גלובל מפות ברקמות עובריים מאוד רלוונטי.

Introduction

שינויים post-translational היסטון מעורבים ישירות תהליכים תלויי-כרומטין שונים, כולל תמלול, שכפול ה-DNA תיקון1,2,3. יתר על כן, שינויים שונים היסטון להראות חיובי (למשל, H3K4me3 ו- H3K27ac) או שלילי (למשל, H3K9me3 ו- H3K27me3) מתאמים עם ביטוי גנים, יכול להיות מוגדר באופן רחב כמו הפעלת או מדכאת היסטון מסמן, בהתאמה2,3. כתוצאה מכך, מפות שינוי היסטון גלובלית, המכונה גם epigenomic מפות, הופיעו כלי אוניברסלי ועוצמתי להוסיף ביאור פונקציונלית הגנום חוליות4,5. לדוגמה, דיסטלי רצפים רגולטוריות כגון משפרי ניתן לזהות המבוסס על הנוכחות של חתימות כרומטין ספציפיים (למשל, פעיל משפרי: H3K4me1 ו- H3K27ac), אשר להבדיל ביניהם לבין יזם proximal אזורים (למשל, היזמים פעיל: H3K4me3)6,7,8. מצד שני, גנים עם פונקציות הרגולציה של זהות תא העיקריים נמצאים בדרך כלל עם כרומטין רחבה תחומים מסומנים H3K4me3 או H3K27me3, בהתאם למצב פעיל או לא פעיל transcriptionally של גנים הבסיסית, בהתאמה9 ,10. באופן דומה, הביטוי של גנים זהות תא מרכזי נראה להיות לעתים קרובות תחת פיקוח מרובים והמרגשים מקובצים באשכולות משפרי (קרי, סופר משפרי), אשר יכול להיות מזוהה תחומים רחבה המסומן H3K27ac11.

כיום, מפות שינוי היסטון נוצרות באמצעות טכנולוגיית שבב-seq, אשר לעומת גישות קודמות כגון צ’יפס-שבב (צ’יפ מצמידים מיקרו-מערכים) מספק רזולוציה גבוהה יותר, חפצים פחות, פחות רעש, כיסוי גדול ואת התחתון עולה12. ובכל זאת, הדור של מפות epigenomic באמצעות טכנולוגיית שבב-seq יש מגבלות הטבועות, הקשורים בעיקר היכולת לבצע בהצלחה שבב הדגימות עניין. פרוטוקולים שבב מסורתי נדרש בדרך כלל מיליוני תאים, אשר מגבלת תחולתה של שיטה זו חוץ גופית בתוך תא קווים או תאים אשר ניתן בקלות מבודד ויוו (למשל, תאי דם). השנים האחרונות, מספר פרוטוקולים שבב ששונה תואם עם מספרי הטלפון הנייד נמוך כבר מתואר13,14,15,16. עם זאת, פרוטוקולים אלה נועדו במיוחד כדי להיות יחד עם הדור הבא רצפי (קרי, צ’יפ-seq), הם בדרך כלל להשתמש אד הוק ספריית הכנה שיטות13,14, 15 , 16.

כאן, אנו המתואר פרוטוקול הצ’יפ שיכול לשמש כדי לחקור שינוי היסטון פרופילים באמצעות מספרי הטלפון הנייד נמוכים בינוניים (5 x 104 – 5 x 105 תאים) או לוקוסים שנבחר (קרי, שבב-qPCR) או באופן גלובלי (קרי, שבב-seq) (איור 1). כאשר משולב שבב-seq לטכנולוגיה, פרוטוקול השבב שלנו יכול לשמש יחד עם שיטות הכנה ספרייה תקנית, ובכך בהרחבה נגיש מעבדות רבות10. פרוטוקול זה שימש לחקור מספר סימני היסטון (למשל, H3K4me3, H3K27me3 ו H3K27ac) ברקמות עוף שונה עובריים (למשל, בעמוד השדרה שפופרת פגמים בתעלה (SNT), frontonasal prominences ו epiblast). עם זאת, אנו צופים כי זה צריך להיות בהרחבה החלים על אורגניזמים אחרים שבו דגימות רלוונטי מבחינה ביולוגית או קלינית יכולה להיות מושגת רק בסכומים נמוכים.

Protocol

בהתאם להנחיות גרמני טיפול בבעלי חיים, אין אישור מוסדי חיה טיפול, שימוש הוועדה (IACUC) היה צורך לבצע את הניסויים העובר עוף. על פי הנחיות מקומיות, רק ניסויים עם עוף HH44 (18-יום) העוברים ומעלה מחייבות אישור IACUC. עם זאת, העוברים השתמשו במחקר זה היו לבושים בבגדי בשלבים מוקדמים של התפתחות (קרי, HH19 (72 …

Representative Results

כדי להמחיש את הביצועים של פרוטוקול השבב שלנו, ביצענו ניסויים באמצעות סעיפים SNT במאגר מעוברים עוף HH19, prominences בלסת העליונה של HH22 עוף העוברים ולאחר שלב-HH3 עוברי עוף לחקור את הפרופילים איגוד של שבב-seq למגוון היסטון שינויים (קרי, H3K4me2, H3K27ac, H3K4me3 ו- H3K27me3). ברגע DNAs שבב התקבלו, היע…

Discussion

Epigenomic פרופיל של שינוי היסטון באמצעות שבב-seq יכול לשמש כדי לשפר את הביאור פונקציונלי של הגנום חוליות שונות בהקשרים הסלולר4,5,18. פרופילים אלה epigenomic יכול לשמש, בין היתר, כדי לזהות רכיבים משפר, להגדרת המדינה הרגולציה של מוצרי טיפוח טבעיים (קר?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים תודה Jan אפל לסיוע טכני מעולה שלו במהלך הקמתה של פרוטוקול זה. לעבודה במעבדה ראדה-איגלסיאס נתמך על-ידי CMMC מגזר מימון, מענקי מחקר DFG (RA 2547/1-1, RA 2547/2-1, ו טה 1007/3-1), UoC מתקדמים החוקרת קבוצת גרנט, המענק CECAD.

Materials

Reagent
BSA powder Carl Roth 3737.3
Phosphate Saline buffer (PBS) Sigma Aldrich D8537
Tris-HCL pH8.0 Sigma Aldrich T1503
NaCl Carl Roth 3957.2
EDTA Carl Roth 8043.2
EGTA Carl Roth 3054.2
Na-Deoxycholate Sigma Aldrich D6750-24
N-lauroylsarcosine Sigma Aldrich 61743-25G
Hepes Applichem A3724,0250
LiCl Carl Roth 3739.2
NP-40 Sigma Aldrich I3021-100ml
SDS Carl Roth 1833
Protein G/magnetic beads Invitrogen 1004D
37% Formaldehyde Sigma Aldrich 252549-1L
Glycine
RNase Peqlab 12-RA-03
Proteinase K Sigma Aldrich 46.35 E
Na-butyrate Sigma Aldrich SLB2659V
Proteinase inhibitor Roche 5892791001
SYBRgreen Mix biozym 617004
dH2O Sigma Aldrich W4502
1Kb ladder Thermofisher SM1333
Orange G Sigma Alrich 03756-25
Agarose Invitrogen 16500-500
0.25% Trypsin-EDTA (1X) Gibco 25200-072
Octylphenol Ethoxylate (Triton X 100) Roth 3051.4
DMEM (Dulbecco´s Modified Eagle Medium) Gibco 31331-028
Gel loading tips Multiflex A.Hartenstein GS21
qPCR Plates Sarstedt 721,985,202
384 well Sarstedt 721,985,202
1.5 mL tubes Sarstedt 72,706
100-1000µl Filter tips Sarstedt 70,762,211
2-20µl Filter tips Sarstedt 70,760,213
2-200µl Filter tips Sarstedt 70,760,211
0.5-10µl Filter tips Sarstedt 701,116,210
H3K27me3 antibody Active Motif 39155
H3K27ac antibody Active Motif 39133
H3K4me3 antibody Active Motif 39159
H3K4me2 antibody Active Motif 39141
End Repair Mix Illumina FC-121-4001
Paramagnetic beads Beckman Coulter A63881
Resuspension buffer Illumina FC-121-4001
A-Tailing Mix Illumina FC-121-4001
Ligation Mix Illumina FC-121-4001
RNA Adapter Indexes Illumina RS-122-2101
Stop Ligation Buffer Illumina FC-121-4001
PCR Primer Cocktail Illumina FC-121-4001
Enhanced PCR Mix Illumina FC-121-4001
Genomic DNA ladder Agilent 5067-5582
Elution Buffer Agilent 19086
Sample Buffer Agilent 5067-5582
Library Quantification Kit Kapa Biosystems KK4835 – 07960204001
Fertile chicken white eggs LSL Rhein Main KN: 15968
Needle (Neoject) A.Hartenstein 10001
Syringe (Ecoject 10ml) Dispomed witt oHG 21010
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Centrifuge Hermle Z 216 MK
Thermoshaker ITABIS MKR13
Sonicator Active Motive EpiShear probe sonicator
Sonicator Diagenode Bioruptor Plus
Rotator Stuart SB3
Variable volume (5–1,000 μl) pipettes Eppendorf N/A
Timer Sigma N/A
Magnetic holder Thermo Fisher DynaMag-2 12321D
Table spinner Heathrow Scientific Sprout
Mixer LMS VTX 3000L
Real-Time PCR Cycler Roche Light Cycler; Serial Nr.5662
PCR Cycler Applied Biosystems Gene Amp PCR System 9700
DNA and RNA quality control system Agilent Agilent 4200 TapeStation System
Forceps Dumont 5-Inox-H
Perforated spoon World precision instruments 501997

References

  1. Jenuwein, T., Allis, C. D. Translating the histone code. Science. 293 (5532), 1074-1080 (2001).
  2. Kouzarides, T. Chromatin modifications and their function. Cell. 128 (4), 693-705 (2007).
  3. Wang, Z., Schones, D. E., Zhao, K. Characterization of human epigenomes. Curr Opin. Genet Dev. 19 (2), 127-134 (2009).
  4. ENCODE Project Consortium. An integrated encyclopedia of DNA elements in the human genome. Nature. 489 (7414), 57-74 (2012).
  5. Roadmap Epigenomics Consortium. Integrative analysis of 111 reference human epigenomes. Nature. 518 (7539), 317-330 (2015).
  6. Heintzman, N. D., et al. Histone modifications at human enhancers reflect global cell-type-specific gene expression. Nature. 459 (7243), 108-112 (2009).
  7. Rada-Iglesias, A., Bajpai, R., Swigut, T., Brugmann, S. A., Flynn, R. A., Wysocka, J. A unique chromatin signature uncovers early developmental enhancers in humans. Nature. 470 (7333), 279-283 (2011).
  8. Creyghton, M. P., et al. Histone H3K27ac separates active from poised enhancers and predicts developmental state. Proc Nat Acad Sci USA. 107 (50), 21931-21936 (2010).
  9. Benayoun, B. A., et al. H3K4me3 breadth is linked to cell identity and transcriptional consistency. Cell. 158 (3), 673-688 (2014).
  10. Rehimi, R., et al. Epigenomics-Based Identification of Major Cell Identity Regulators within Heterogeneous Cell Populations. Cell Rep. 17 (11), 3062-3076 (2016).
  11. Whyte, W. A., et al. Master transcription factors and mediator establish super-enhancers at key cell identity genes. Cell. 153 (2), 307-319 (2013).
  12. Valouev, A., et al. Genome-wide analysis of transcription factor binding sites based on ChIP-Seq data. Nat Methods. 5 (9), 829-834 (2008).
  13. Dahl, J. A., et al. Broad histone H3K4me3 domains in mouse oocytes modulate maternal-to-zygotic transition. Nature. 537 (7621), 548-552 (2016).
  14. Rotem, A., et al. Single-cell ChIP-seq reveals cell subpopulations defined by chromatin state. Nat Biotech. 33 (11), 1165-1172 (2015).
  15. Schmidl, C., Rendeiro, A. F., Sheffield, N. C., Bock, C. ChIPmentation: fast, robust, low-input ChIP-seq for histones and transcription factors. Nat Methods. 12 (10), 963-965 (2015).
  16. Zhang, B., et al. Allelic reprogramming of the histone modification H3K4me3 in early mammalian development. Nature. 537 (7621), 553-557 (2016).
  17. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Dev Dynam. 195 (4), 231-272 (1951).
  18. Ho, J. W. K., et al. Comparative analysis of metazoan chromatin organization. Nature. 512 (7515), 449-452 (2014).
  19. Calo, E., Wysocka, J. Modification of enhancer chromatin: what, how, and why?. Mol Cell. 49 (5), 825-837 (2013).
  20. Spitz, F., Furlong, E. E. M. Transcription factors: from enhancer binding to developmental control. Nat Rev Genetics. 13 (9), 613-626 (2012).
check_url/56186?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Rehimi, R., Bartusel, M., Solinas, F., Altmüller, J., Rada-Iglesias, A. Chromatin Immunoprecipitation (ChIP) Protocol for Low-abundance Embryonic Samples. J. Vis. Exp. (126), e56186, doi:10.3791/56186 (2017).

View Video