هنا، نقدم مقايسة موثوقة وسهلة لقياس محتوى الجليكوجين في الخلايا السيانوباكتريال. الإجراء ينطوي على هطول الأمطار، اختيار البلمرة، والكشف عن بقايا الجلوكوز. هذا الأسلوب هو مناسبة لكل من ويلديب والسلالات المعدلة وراثيا ويمكن أن تسهل الهندسة الأيضية من البكتيريا الزرقاء.
البكتيريا الزرقاء تتراكم الجليكوجين كخلايا رئيسية داخل الخلايا وتخزين الطاقة أثناء عملية التمثيل الضوئي. وقد أبرزت التطورات الأخيرة في مجال البحوث آليات معقدة من استقلاب الجليكوجين، بما في ذلك دورة بيل من التخليق الحيوي والهدم، وتنظيم الأكسدة، ومشاركة الحمض النووي الريبي غير الترميز. وفي الوقت نفسه، تبذل جهود لإعادة توجيه الكربون من الجليكوجين إلى المنتجات المرغوبة في البكتيريا الزرقاء المعدلة وراثيا لتعزيز غلة المنتج. وتستخدم عدة طرق لتحديد محتويات الجليكوجين في البكتيريا الزرقاء، مع دقة متغيرة والتعقيدات التقنية. هنا، ونحن نقدم بروتوكول مفصل لتحديد موثوق من محتوى الجليكوجين في البكتيريا الزرقاء التي يمكن أن يؤديها في مختبر علوم الحياة القياسية. بروتوكول ينطوي على هطول الأمطار انتقائية من الجليكوجين من المحللة الخلية والبوليمرية إنزيمية من الجليكوجين لتوليد مونومرات الجلوكوز، والتي يتم الكشف عنها من قبل الثور الجلوكوزإديس-بيروكسيديز (الله-بود) انزيم يقترن الفحص. تم تطبيق هذه الطريقة على سينكوسيستيس سب. يك 6803 و سينيكوكوكوس سب. يك 7002، نوعين من الأنواع السيانوباكتريال التي تستخدم على نطاق واسع في الهندسة الأيضية. وعلاوة على ذلك، أظهرت الطريقة بنجاح الاختلافات في محتويات الجليكوجين بين ويلديب والمسوخ المعيبة في العناصر التنظيمية أو الجينات الجينية الجليكوجين.
البكتيريا الزرقاء تراكم الجليكوجين كمخزن الكربوهيدرات كبير من الكربون CO 2 من الثابت في الضوء من خلال عملية التمثيل الضوئي. الجليكوجين هو غليكان يتكون من الخطي α-1،4 مرتبطة الجلوكان مع الفروع التي تم إنشاؤها من قبل روابط α-1،6 مرتبطة الجلوكوزيل. الجليكوجين الحيوي في البكتيريا الزرقاء يبدأ مع تحويل الجلوكوز 6-الفوسفات إلى أدب الجلوكوز من خلال العمل المتسلسل من فسفوغلوكوموتاس و أدب الجلوكوز بيروفوسفوريلاز. يتم نقل شدة الجلوكوز في أدب الجلوكوز إلى نهاية غير الحد من العمود الفقري α-1،4-غلوكان من الجليكوجين من قبل واحد أو أكثر من سينثاسيس الجليكوجين (غلغا). في وقت لاحق، إنزيمات المتفرعة إدخال α-1،6 ربط الجلوكوزيل الربط، الذي هو أبعد من ذلك لتوليد الجسيمات الجليكوجين. في الظلام، يتم تقسيم الجليكوجين أسفل الفوسفوريلاز الجليكوجين، الانزيمات جليكوجين التحضير، α غلوكانوترانزفيراس، و فسفوريلاز مالتو ديكسترين إلى الجلوكوز فسفوريلاتد والجلوكوز الحر. هذه الخلاصة إنتo مسارات تقويضية، بما في ذلك مسار فوسفات البنتوز المؤكسد، ومسار إمبدين-مايرهوف-بارناس (التحلل)، ومسار إنتنر-دودوروف 1 ، 2 ، 3 ، 4 .
وقد اكتسب استقلاب الجليكوجين في البكتيريا الزرقاء اهتماما متزايدا في السنوات الأخيرة بسبب إمكانية أن تتطور البكتيريا الزرقاء إلى مصانع خلايا ميكروبية مدفوعة بأشعة الشمس لإنتاج المواد الكيميائية والوقود. ويمكن تعديل عملية التمثيل الغذائي الجليكوجين لزيادة العائد من المنتجات، لأن الجليكوجين هو أكبر تجمع الكربون المرن في هذه البكتيريا. مثال على ذلك هو سيانوباكتريوم سينيكوكوكوس سب. يك 7002، التي تم هندستها وراثيا لإنتاج مانيتول؛ والخلل الجيني من تخليق الجليكوجين يزيد من مانيتول العائد 3 أضعاف 5 . مثال آخر هو إنتاج الإيثانول الحيوي من ويلدت الجليكوجين المحملةيب سينيكوكوكوس سب. يك 7002 6 . قد يكون محتوى غليكوجين الخلية ويلديب تصل إلى 60٪ من الوزن الجاف للخلية خلال المجاعة النيتروجين 6 .
وقد توسع أيضا فهمنا لأيض الجليكوجين والتنظيم في السنوات الأخيرة. في حين من المعروف أن الجليكوجين تتراكم في الضوء، و كابوليزد في الظلام، حركية مفصلة من استقلاب الجليكوجين خلال دورة دييل كشفت مؤخرا فقط في سينكوسيستيس سب. يك 6803 7 . وعلاوة على ذلك، تم تحديد العديد من الجينات التي تؤثر على تراكم الجليكوجين. ومن الأمثلة البارزة على ذلك اكتشاف أن الكيناز الهستيدين المفترض بمغا والرنا غير المشفر PmgR1 تشكيل سلسلة تتالي والسيطرة على تراكم الجليكوجين. ومن المثير للاهتمام، وpmgA وpmgR1 المسوخ الحذف تتراكم ضعف كمية الجليكوجين لان السلالة wildtype من Synechocystis س. يك 68038 ، 9 . ومن المعروف أيضا أن العناصر التنظيمية الأخرى تؤثر على تراكم الجليكوجين، بما في ذلك عامل سيغما البديل E والعامل النسخي CyAbrB2 10 ، 11 .
كما الفائدة في تنظيم الجليكوجين والتمثيل الغذائي تنمو، وبروتوكول مفصل يصف تحديد محتوى الجليكوجين هو ما يبرره. وتستخدم عدة طرق في الأدب. يتبع التحليل المائي الحمضي الذي يتبعه تحديد محتوى السكريات الأحادية من خلال كروماتوجرافيا السائل الأنيوني ذات الضغط العالي إلى جانب كاشف أمبيروميتري نابض أو تحديد مطياف بعد المعاملات مع حامض والفينول على نطاق واسع أساليب لتقريب محتوى الجليكوجين 9 ، 10 ، 12 ، 13 . ومع ذلك، فإن الضغط العالي أنيون الصرف الكروماتوجرافي السائلc مكلفة جدا ولا تميز الجلوكوز المستمدة من الجليكوجين من تلك المستمدة من غيرها من غليكوكونجوغاتس التي تحتوي على الجلوكوز، مثل السكروز 14 ، الجلوكوسيل غليسيرول 15 ، والسليلوز 16 ، 17 ، 18 ، والتي من المعروف أن تتراكم في بعض الأنواع السيانوبكتيرية. طريقة حمض الفينول يمكن أن يؤديها باستخدام معدات المختبرات القياسية. ومع ذلك، فإنه يستخدم الكواشف عالية السمية ولا يميز الجلوكوز المستمدة من غليكوكونغاتاتس مختلفة، كما أنه لا يميز الجلوكوز من السكريات الأخرى التي تشكل المواد الخلوية، مثل السكر الشحمي، عديدات السكاريد الدهنية، والمصفوفات خارج الخلية 12 . والجدير بالذكر أن مقايسة الحمض الفينول الساخن غالبا ما تستخدم لتحديد محتوى الكربوهيدرات الكلي بدلا من التحديد المحدد لمحتوى الجلوكوز 12 . الأنزيمية هيدروليسيس من الجليكوجين إلى الجلوكوز بواسطة α-أميلوغلوكوسيداس تليها الكشف عن الجلوكوز من خلال مقايسة الإنزيم يقترن قراءات اللونية التي هي حساسة للغاية ومحددة للجلوكوز المستمدة من الجليكوجين. ويمكن تعزيز خصوصية أبعد من ذلك مع هطول الأمطار التفضيلية من الجليكوجين من ليسيتس الخلية عن طريق الإيثانول 5 ، 8 ، 19 .
هنا، نحن تصف بروتوكول مفصل لمقايسة القائم على الإنزيم من محتوى الجليكوجين في اثنين من الأنواع الدرامية سيانوباكتريال الأكثر دراسة على نطاق واسع، سينكوسيستيس سب. يك 6803 و سينيكوكوكوس سب. يك 7002، في ويلديب وسلالات متحولة. من أجل ضمان التحلل المائي الفعال، يتم استخدام كوكتيل من α- الأميليز و α-أميلوغلوكوسيداز 8 . تحلل α- الأميليز إندو المفعول α-1،4-الروابط في مختلف الجلوكان في ديكسترينز، والتي هي أكثر تحلل tس الجلوكوز بواسطة إكسو-أكتينغ α-أميلوغلوكوسيداز 20 . الآثار المتآزرة لهذه الانزيمات معروفة جيدا، وتستخدم هذه الانزيمات بشكل روتيني للتحلل المائي الانتقائي للنشا، وهو غلوكان مرتبط α مثل الجليكوجين، دون التأثير على غليكوكونوجانتس أخرى، مثل السليلوز، في الكتلة الحيوية النباتية 21 . تم الكشف عن الجلوكوز صدر كميا بعد مقايسة انزيم مقترنة تتكون من أوكسيديز الجلوكوز الذي يحفز خفض الأكسجين إلى بيروكسيد الهيدروجين وأكسدة الجلوكوز إلى لاكتون والبيروكسيديز – التي تنتج صبغة كينونيمين الوردي اللون من بيروكسيد الهيدروجين، مركب الفينول، و 4-أمينوانتيبيرين 22 .
الخطوات الحاسمة داخل البروتوكول هي الجليكوجين هطول الأمطار وإعادة تعليق. بعد الطرد المركزي التالية هطول الإيثانول، الجليكوجين يشكل بيليه شفافة التي تلتزم بشكل فضفاض إلى جدران أنابيب ميكروسنتريفوج. لذلك، عند إزالة طاف، يجب إيلاء اهتمام خاص حتى لا إزالة بيليه. الجلي…
The authors have nothing to disclose.
ويعترف المؤلفون ببحوث الطاقة الشمالية (أكوفيد، مشروع رقم 24)، و إنوفاتيونفوندن الدنمارك (بانت باور، مشروع رقم 12-131844)، و فيلوم فوندن (مشروع رقم 13363)
QSonica Sonicators Q700 | Qsonica, LLC | NA | QSonica |
SpectraMax 190 Microplate Reader | Molecular Devices | NA | Eliza plate reader |
Bullet Blender Storm | Next Advance | BBY24M-CE | Beads beater |
Ultrospec 3100 pro UV/Visible Spectrophotometer | Amersham Biosciences | NA | Spectrophotometer |
Tris | Sigma-Aldrich | T1503 | Buffer |
HCl | Merck | 1-00317 | pH adjutment |
Sodium acetate | Sigma-Aldrich | 32319 | Buffer |
Amyloglycosidase (Rhizopus sp.) | Megazyme | E-AMGPU | Enzyme for glycogen depolymerization |
α-Amylase, thermostable (Bacillus licheniformis) | Sigma-Aldrich | A3176 | Enzyme for glycogen depolymerization |
D-Glucose | Merch | 8337 | Standard for the glucose assay |
Pierce BCA Protein assay kit | Thermo Fisher scientific | 23225 | For determination of protein concentrations |
Aluminum drying trays, disposable | VWR | 611-1362 | For determination of cell dry weights |
D-Glucose assay kit (GODPOD format) | Megazyme | K-GLUC | For determination of glucose concentrations |
Zirconium oxide breads, 0.15 mm | Next Advance | ZrOB015 | Beads for cell lysis in a Bullet Blendar Storm |
RINO tubes | Next Advance | NA | Tubes for cell lysis in a Bullet Blendar Storm |