Summary

باستخدام الثقافات Neurosphere الأولية لدراسة الابتدائية سيليا

Published: April 14, 2017
doi:

Summary

وهدب الرئيسي هو أهمية أساسية في انتشار العصبية خلية سلفية، تمايز الخلايا العصبية، وظيفة الخلايا العصبية الكبار. هنا، نحن تصف طريقة لدراسة تكون الأهداب والاتجار يشير البروتينات إلى أهداب في الخلايا الجذعية / السلف العصبية والخلايا العصبية متباينة باستخدام الثقافات neurosphere الأولية.

Abstract

The primary cilium is fundamentally important for the proliferation of neural stem/progenitor cells and for neuronal differentiation during embryonic, postnatal, and adult life. In addition, most differentiated neurons possess primary cilia that house signaling receptors, such as G-protein-coupled receptors, and signaling molecules, such as adenylyl cyclases. The primary cilium determines the activity of multiple developmental pathways, including the sonic hedgehog pathway during embryonic neuronal development, and also functions in promoting compartmentalized subcellular signaling during adult neuronal function. Unsurprisingly, defects in primary cilium biogenesis and function have been linked to developmental anomalies of the brain, central obesity, and learning and memory deficits. Thus, it is imperative to study primary cilium biogenesis and ciliary trafficking in the context of neural stem/progenitor cells and differentiated neurons. However, culturing methods for primary neurons require considerable expertise and are not amenable to freeze-thaw cycles. In this protocol, we discuss culturing methods for mixed populations of neural stem/progenitor cells using primary neurospheres. The neurosphere-based culturing methods provide the combined benefits of studying primary neural stem/progenitor cells: amenability to multiple passages and freeze-thaw cycles, differentiation potential into neurons/glia, and transfectability. Importantly, we determined that neurosphere-derived neural stem/progenitor cells and differentiated neurons are ciliated in culture and localize signaling molecules relevant to ciliary function in these compartments. Utilizing these cultures, we further describe methods to study ciliogenesis and ciliary trafficking in neural stem/progenitor cells and differentiated neurons. These neurosphere-based methods allow us to study cilia-regulated cellular pathways, including G-protein-coupled receptor and sonic hedgehog signaling, in the context of neural stem/progenitor cells and differentiated neurons.

Introduction

وهدب الأساسي هو مقصورة التحت خلوية الحيوية القائمة على أنيبيب أن يعمل بمثابة الهوائي الحسي في تنسيق مسارات الإشارات الخلوية، بما في ذلك المسار سونيك القنفذ (صه) خلال تطوير الخلايا العصبية الجنينية 1 و 2 و إشارات التحت خلوية مجزأة في وظيفة الخلايا العصبية الكبار 3 و 4 . يشير مكونات هذه الممرات، مثل مستقبلات صه مرقع المنشط مسار مملس (SMO) وGpr161 ومستقبلات البروتين يقترن الأيتام G (GPCR) الذي ينظم سلبا على مسار صه، توطين لأهداب بطريقة ديناميكية. وقد تم الإبلاغ عن GPCRs متعددة لتوطين للأهداب الخلايا العصبية في الدماغ في 7 و 8 و 9 و 10 </سوب>، 11، 12، 13، 14، 15، 16. عيوب في أهداب ومسارات إشارات ولدت أهداب تؤثر على أنسجة متعددة ومعروفة جماعيا باسم ciliopathies 17 و 18 و 19. في كثير من الأحيان يشمل الطيف مرض ciliopathy عيوب النمو العصبي، مثل تشوهات القحفي 20 و 21 و 22. وبالإضافة إلى ذلك، أهداب الأساسي في الخلايا العصبية المهاد تنظيم مسارات الشبع المركزية، والعيوب يؤدي إلى السمنة المركزية 23، وهو ما يعكس السمنة في ciliopathies المتلازمات مثل متلازمة بارديه Biedel 24. وبالإضافة إلى ذلك، مستقبلات نيوروبيبتيدي يشير في أهداب ينظم الطرد المركزيآل الشبع مسارات 11 و 14. توطين الهدبية انزيمات سيكلاز III (ACIII) وGPCRs مثل السوماتوستاتين مستقبلات 3 في الخلايا العصبية الحصين يؤدي إلى عيوب الاعتراف جوه جديدة والعجز في الذاكرة 25 و 26 و يوازي غياب النزاهة الهدبية 27. ترتبط الجوانب التنموية للإشارات ولدت أهداب ارتباطا وثيقا توازن الأنسجة. على وجه الخصوص، أهداب هامة لتطور ورم أرومي نخاعي صه-فرعي الناتجة عن الأسلاف الحبيبية في المخيخ 28 و 29. وهكذا، أهداب الأولية تلعب أدوارا هامة خلال الجنينية، وبعد الولادة، والكبار تطوير الخلايا العصبية وظيفة.

الخلايا الجذعية العصبية (NSCs) يقيمون في منطقة subventricular (SVZ) من البطين الجانبي، والمنطقة جزئي التحبب من التلفيف المسنن من الحصين، ومنطقة البطين من البطين الثالث في منطقة ما تحت المهاد في الثدييات 30 و 31 و 32. NSCs هي متعددة القدرات، وتمتلك القدرة على التجديد الذاتي، وهي مهمة لنمو المخ والطب التجديدي 30. معظم NSCs في SVZ هي هادئة وتمتلك هدب الأساسي الانفرادي أنه في كثير من الحالات، ويمتد إلى البطين الجانبي 33. إشارات هدب الأولية عن طريق توطين مختلف المستقبلات، يحفز الاستجابات الخلوية المصب، وخصوصا فيما يتعلق صه، TGFβ، ومستقبلات التيروزين كيناز مسارات 34، 35، 36. منذ أهداب الأولية تمتد إلى البطين الجانبي، والافتراض بأن أهداب الابتدائي كشف السيتوكينات في السائل النخاعي (CSF) لتنشيط NSCs 37 </sتصل>. وتشير الدراسات الحديثة إلى أن إشارات الطريق صه وأهداب الأساسي حاسمة لتنشيط الخلايا الجذعية في إصلاح وتجديد الأنسجة متعددة، بما في ذلك الظهارة الشمية والرئة، والكلى 38 و 39 و 40 و 41. ومع ذلك، فإن الآليات التي CSF التواصل مع NSCs وما إذا أهداب الابتدائي تشارك ليست معروفة. ومهدبة NSCs ملتصقة في الثقافة؛ توطين مكونات مسار صه، مثل SMO وGpr161 في أهداب. وهي صه استجابة 42. وهكذا، يمكن NSCs بمثابة نظام المهم نموذج لدراسة مسار صه، والاتجار الهدبي، ومسارات التمايز العصبية. وبالإضافة إلى ذلك، الخلايا العصبية متباينة من NSCs يمكن أن تستخدم أيضا لفحوصات الاتجار الهدبية.

ويشكل Neurospheres من مجموعات من الخلايا التعويم الحر الناجمة عن انتشار neuraل الخلايا الجذعية / السلف التي تنمو في وجود عوامل نمو معينة والسطوح nonadhesive 43 و 44. Neurospheres بمثابة هاما في نماذج الثقافة المختبر لدراسة الخلايا الجذعية / السلف العصبية في التطور الطبيعي ومرض 31، 45، 46، 47. هنا، نحن تصف مقايسة على أساس neurosphere لزراعة الخلايا الجذعية العصبية / السلف والتمايز في الخلايا العصبية / الدبقية. ونحن نؤكد على وجه الخصوص الاتجار يشير إلى مكونات أهداب الجذعية العصبية / الخلايا الاولية والخلايا العصبية متباينة (الشكل 1). بدلا من زراعة الخلايا العصبية الأولية، neurospheres الأساسي من السهل نسبيا للثقافة، هي قابلة للفقرات متعددة ودورات ذوبان الجليد تجميد، ويمكن أن يخضع التمايز في الخلايا العصبية / الدبقية. الأهم من ذلك، توصلنا إلى أن العصبية المشتقة من neurosphereومهدبة الخلايا الجذعية / السلف والخلايا العصبية متباينة في الثقافة وتوطين الجزيئات مما يشير إلى وظيفة ذات الصلة الهدبية في هذه المقصورات. يمكن أن أساليب زراعة أساس Neurosphere-بمثابة نظام نموذجا مثاليا لدراسة تكون الأهداب والهدبية الاتجار NSCs والخلايا العصبية متباينة.

Protocol

1. عزل Neurospheres من الدماغ الكبار ماوس الموت ببطء الماوس الكبار (حوالي 2 أشهر من العمر) من خلال جرعة زائدة من الأيزوفلورين. انقر نقرا مزدوجا التحقق من أن الماوس توقف التنفس وتشريح فورا بعد الموت. …

Representative Results

بعد طلاء الخلايا من SVZ في NSC متوسطة لمدة أسبوع، لوحظت neurospheres العائمة (الشكل 2A). أحجام مجالات تتراوح بين 50 و 200 ميكرون. لفحص إذا كانت تستمد المجالات من الخلايا الجذعية / السلف العصبية، كانت مطلية من neurospheres على PLL- وcoverslips في NSC المتوسطة Laminin المغلف…

Discussion

هنا، نحن تصف طريقة لتوليد والحفاظ على الثقافات neurosphere من SVZ الماوس الكبار. هناك بعض النقاط ذات الصلة فيما يتعلق الثقافات هي على النحو التالي. أولا، أحجام المجالات وعادة ما تكون بين 50-200 ميكرون. في تجربتنا، وعندما يحصل على neurosphere أكبر من 300 ميكرون في القطر، وقد غاب عن الو?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Work in S.M.’s laboratory is funded by recruitment grants from CPRIT (R1220) and NIH (1R01GM113023-01).

Materials

12 mm round cover glass Fisherbrand 12-545-80 
24 well plate Falcon 353047
4 % paraformaldehyde Affymetrix 19943
50 ml tube Falcon 352098
95 mm X 15 mm petri dish, slippable lid Fisherbrand FB0875714G 10 cm dish
70 µm cell strainer Falcon 352350
Alexa Fluor 488 Affinipure Donkey Anti-Rabbit IgG (H+L) Jackson Immunoresearch 711-545-152 Donkey anti Rabbit, Alexa 488 secondary antibody
Arl13B, Clone N295B/66 Neuromab AB_11000053
B-27 Supplement (50X), serum free ThermoFisher Scientific 17504001 B27
Centrifuge Thermo scientific ST 40R
Cryogenic vial Corning 430488
DAPI Sigma D9542-10MG
Deoxyribonuclease I from bovine pancrease Sigma D5025-15KU Dnase I
Dimethyl sulfoxide Sigma D8418-100ML DMSO
Disposable Vinyl Specimen Molds Sakura Tissue-Tek Cryomold 4565 10 mm X 10 mm X 5 mm
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline 10×, Modified, without calcium chloride and magnesium chloride, liquid, sterile-filtered, suitable for cell culture Sigma D1408-500ML PBS
Dumont #5 Forceps Fine science tools 11254-20
FBS  Sigma F9026-500ML
Fluoromount-G solution Southern Biotech 0100-01 mounting solution
GFAP DAKO Z0334
Goat anti Mouse IgG1 Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 conjugate ThermoFisher Scientific A-21127 Goat anti Mouse IgG1, Alexa 555 secondary antibody
Goat anti Mouse IgG2a Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 conjugate ThermoFisher Scientific A-21137 Goat anti Mouse IgG2a, Alexa 555 secondary antibody
Gpr161 home made N/A
human bFGF Sigma F0291 FGF
hemocytometer Hausser Scientific 0.100 mm deep improved neubauer
Isothesia Henry Schein NDC 11695-0500-2 Isofluorane
Laminin from Engelbreth-Holm-Swarm Sarcoma basement membrane Sigma L2020 Laminin
L-Glutamine (200mM) Sigma G7513
Lipofectamine 3000 Transfection Reagent ThermoFisher Scientific L3000
Mr. Frosty Nalgene  5100-0036
N-2 supplement (100X) ThermoFisher Scientific 17502001 N2
Neurobasal medium Gibco 21103-049
Normal Donkey Serum Jackson ImmunoResearch 017-000-121
OCT compound Sakura Tissue-Tek 4583 OCT
Penicillin-Streptomycin Sigma P4333-100ML
Poly-L-lysine Sigma P4707
Recombinant human EGF protein, CF R and D systems 236-EG-200 EGF
Scissor Fine science tools 14060-10
Superfrost plus microscope slide Fisher scientific 12-550-15 slides
Triton X Bio-Rad 161-0407
Trypsin-EDTA solution (10X) Sigma T4174-100 Trypsin
COSTAR 6 Well Plate, With Lid Flat Bottom Ultra-Low Attachment Surface Polystyrene, Sterile Corning 3471 ultra-low binding 6 well plate
β-tubulin III Covance MMS-435P TUJ1

References

  1. Mukhopadhyay, S., Rohatgi, R. G-protein-coupled receptors, Hedgehog signaling and primary cilia. Semin Cell Dev Biol. 33, 63-72 (2014).
  2. Goetz, S. C., Anderson, K. V. The primary cilium: a signalling centre during vertebrate development. Nat Rev Genet. 11, 331-344 (2010).
  3. Guemez-Gamboa, A., Coufal, N. G., Gleeson, J. G. Primary cilia in the developing and mature brain. Neuron. 82, 511-521 (2014).
  4. Louvi, A., Grove, E. A. Cilia in the CNS: the quiet organelle claims center stage. Neuron. 69, 1046-1060 (2011).
  5. Rohatgi, R., Milenkovic, L., Scott, M. P. Patched1 regulates hedgehog signaling at the primary cilium. Science. 317, 372-376 (2007).
  6. Corbit, K. C., et al. Vertebrate Smoothened functions at the primary cilium. Nature. 437, 1018-1021 (2005).
  7. Mukhopadhyay, S., et al. The ciliary G-protein-coupled receptor Gpr161 negatively regulates the Sonic hedgehog pathway via cAMP signaling. Cell. 152, 210-223 (2013).
  8. Hilgendorf, K. I., Johnson, C. T., Jackson, P. K. The primary cilium as a cellular receiver: organizing ciliary GPCR signaling. Curr Opin Cell Biol. 39, 84-92 (2016).
  9. Berbari, N. F., Johnson, A. D., Lewis, J. S., Askwith, C. C., Mykytyn, K. Identification of ciliary localization sequences within the third intracellular loop of G protein-coupled receptors. Mol Biol Cell. 19, 1540-1547 (2008).
  10. Berbari, N. F., Lewis, J. S., Bishop, G. A., Askwith, C. C., Mykytyn, K. Bardet-Biedl syndrome proteins are required for the localization of G protein-coupled receptors to primary cilia. Proc Natl Acad Sci USA. 105, 4242-4246 (2008).
  11. Loktev, A. V., Jackson, P. K. Neuropeptide Y family receptors traffic via the Bardet-Biedl syndrome pathway to signal in neuronal primary cilia. Cell Rep. 5, 1316-1329 (2013).
  12. Marley, A., Choy, R. W., von Zastrow, M. GPR88 reveals a discrete function of primary cilia as selective insulators of GPCR cross-talk. PLoS One. 8, e70857 (2013).
  13. Marley, A., von Zastrow, M. DISC1 regulates primary cilia that display specific dopamine receptors. PLoS One. 5, e10902 (2010).
  14. Omori, Y., et al. Identification of G Protein-Coupled Receptors (GPCRs) in Primary Cilia and Their Possible Involvement in Body Weight Control. PLoS One. 10, e0128422 (2015).
  15. Koemeter-Cox, A. I., et al. Primary cilia enhance kisspeptin receptor signaling on gonadotropin-releasing hormone neurons. Proc Natl Acad Sci USA. 111, 10335-10340 (2014).
  16. Brailov, I., et al. Localization of 5-HT(6) receptors at the plasma membrane of neuronal cilia in the rat brain. Brain Res. 872, 271-275 (2000).
  17. Hildebrandt, F. .. ,. ,. T. .. ,. &. a. m. p. ;. K. a. t. s. a. n. i. s. ,. N. .., Benzing, T., Katsanis, N. Ciliopathies. N Engl J Med. 364, 1533-1543 (2011).
  18. Waters, A. M., Beales, P. L. Ciliopathies: an expanding disease spectrum. Pediatr Nephrol. 26, 1039-1056 (2011).
  19. Badano, J. L., Mitsuma, N., Beales, P. L., Katsanis, N. The ciliopathies: an emerging class of human genetic disorders. Annu Rev Genomics Hum Genet. 7, 125-148 (2006).
  20. Novarino, G., Akizu, N., Gleeson, J. G. Modeling human disease in humans: the ciliopathies. Cell. 147, 70-79 (2011).
  21. Brugmann, S. A., Cordero, D. R., Helms, J. A. Craniofacial ciliopathies: A new classification for craniofacial disorders. Am J Med Genet A. 152A (12), 2995-3006 (2010).
  22. Valente, E. M., Rosti, R. O., Gibbs, E., Gleeson, J. G. Primary cilia in neurodevelopmental disorders. Nat Rev Neurol. 10, 27-36 (2014).
  23. Davenport, J. R., et al. Disruption of intraflagellar transport in adult mice leads to obesity and slow-onset cystic kidney disease. Curr Biol. 17, 1586-1594 (2007).
  24. Zaghloul, N. A., Katsanis, N. Mechanistic insights into Bardet-Biedl syndrome, a model ciliopathy. J Clin Invest. 119, 428-437 (2009).
  25. Einstein, E. B., et al. Somatostatin signaling in neuronal cilia is critical for object recognition memory. J Neurosci. 30, 4306-4314 (2010).
  26. Wang, Z., Phan, T., Storm, D. R. The type 3 adenylyl cyclase is required for novel object learning and extinction of contextual memory: role of cAMP signaling in primary cilia. J Neurosci. 31, 5557-5561 (2011).
  27. Berbari, N. F., et al. Hippocampal and cortical primary cilia are required for aversive memory in mice. PLoS One. 9, e106576 (2014).
  28. Han, Y. G., Alvarez-Buylla, A. Role of primary cilia in brain development and cancer. Curr Opin Neurobiol. 20, 58-67 (2010).
  29. Han, Y. G., et al. Dual and opposing roles of primary cilia in medulloblastoma development. Nat Med. 15, 1062-1065 (2009).
  30. Lim, D. A., Alvarez-Buylla, A. The Adult Ventricular-Subventricular Zone (V-SVZ) and Olfactory Bulb (OB) Neurogenesis. Cold Spring Harbor perspectives in biology. 8, (2016).
  31. Shimada, I. S., LeComte, M. D., Granger, J. C., Quinlan, N. J., Spees, J. L. Self-renewal and differentiation of reactive astrocyte-derived neural stem/progenitor cells isolated from the cortical peri-infarct area after stroke. J Neurosci. 32, 7926-7940 (2012).
  32. Mich, J. K., et al. Prospective identification of functionally distinct stem cells and neurosphere-initiating cells in adult mouse forebrain. eLife. 3, e02669 (2014).
  33. Mirzadeh, Z., Merkle, F. T., Soriano-Navarro, M., Garcia-Verdugo, J. M., Alvarez-Buylla, A. Neural stem cells confer unique pinwheel architecture to the ventricular surface in neurogenic regions of the adult brain. Cell stem cell. 3, 265-278 (2008).
  34. Pedersen, L. B., Mogensen, J. B., Christensen, S. T. Endocytic Control of Cellular Signaling at the Primary Cilium. Trends Biochem Sci. , (2016).
  35. Christensen, S. T., Clement, C. A., Satir, P., Pedersen, L. B. Primary cilia and coordination of receptor tyrosine kinase (RTK) signalling. J Pathol. 226, 172-184 (2012).
  36. Clement, C. A., et al. TGF-beta signaling is associated with endocytosis at the pocket region of the primary cilium. Cell reports. 3, 1806-1814 (2013).
  37. Taverna, E., Gotz, M., Huttner, W. B. The cell biology of neurogenesis: toward an understanding of the development and evolution of the neocortex. Annu Rev Cell Dev Biol. 30, 465-502 (2014).
  38. Joiner, A. M., Green, W. W., McIntyre, J. C. Primary Cilia on Horizontal Basal Cells Regulate Regeneration of the Olfactory Epithelium. J Neurosci. 35, 13761-13772 (2015).
  39. Inaba, M., Buszczak, M., Yamashita, Y. M. Nanotubes mediate niche-stem-cell signalling in the Drosophila testis. Nature. 523, 329-332 (2015).
  40. Peng, T., et al. Hedgehog actively maintains adult lung quiescence and regulates repair and regeneration. Nature. 526, 578-582 (2015).
  41. Rauhauser, A. A., et al. Hedgehog signaling indirectly affects tubular cell survival after obstructive kidney injury. Am J Physiol: Renal Physiol. 309, F770-F778 (2015).
  42. Chavez, M., et al. Modulation of Ciliary Phosphoinositide Content Regulates Trafficking and Sonic Hedgehog Signaling Output. Dev Cell. 34, 338-350 (2015).
  43. Lobo, M. V., et al. Cellular characterization of epidermal growth factor-expanded free-floating neurospheres. J. Histochem. Cytochem. 51, 89-103 (2003).
  44. Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
  45. Pastrana, E., Silva-Vargas, V., Doetsch, F. Eyes wide open: a critical review of sphere-formation as an assay for stem cells. Cell stem cell. 8, 486-498 (2011).
  46. Nishino, J., Kim, I., Chada, K., Morrison, S. J. Hmga2 promotes neural stem cell self-renewal in young but not old mice by reducing p16Ink4a and p19Arf Expression. Cell. 135, 227-239 (2008).
  47. Shimada, I. S., Peterson, B. M., Spees, J. L. Isolation of locally derived stem/progenitor cells from the peri-infarct area that do not migrate from the lateral ventricle after cortical stroke. Stroke. 41, e552-e560 (2010).
  48. Mirzadeh, Z., Doetsch, F., Sawamoto, K., Wichterle, H., Alvarez-Buylla, A. The subventricular zone en-face: wholemount staining and ependymal flow. J Vis Exp. , (2010).
  49. Coles-Takabe, B. L., et al. Don’t look: growing clonal versus nonclonal neural stem cell colonies. Stem Cells. 26, 2938-2944 (2008).
  50. Pal, K., et al. Smoothened determines beta-arrestin-mediated removal of the G protein-coupled receptor Gpr161 from the primary cilium. J Cell Biol. 212, 861-875 (2016).
  51. Caspary, T., Larkins, C. E., Anderson, K. V. The graded response to Sonic Hedgehog depends on cilia architecture. Dev Cell. 12, 767-778 (2007).
  52. Bangs, F. K., Schrode, N., Hadjantonakis, A. K., Anderson, K. V. Lineage specificity of primary cilia in the mouse embryo. Nat Cell Biol. 17, 113-122 (2015).
  53. Berbari, N. F., Bishop, G. A., Askwith, C. C., Lewis, J. S., Mykytyn, K. Hippocampal neurons possess primary cilia in culture. J Neurosci Res. 85, 1095-1100 (2007).
  54. Paridaen, J. T., Wilsch-Brauninger, M., Huttner, W. B. Asymmetric inheritance of centrosome-associated primary cilium membrane directs ciliogenesis after cell division. Cell. 155, 333-344 (2013).
  55. Kiprilov, E. N., et al. Human embryonic stem cells in culture possess primary cilia with hedgehog signaling machinery. J Cell Biol. 180, 897-904 (2008).
  56. Mukhopadhyay, S., et al. TULP3 bridges the IFT-A complex and membrane phosphoinositides to promote trafficking of G protein-coupled receptors into primary cilia. Genes Dev. 24, 2180-2193 (2010).
  57. Ishikawa, H., Marshall, W. F. Efficient live fluorescence imaging of intraflagellar transport in mammalian primary cilia. Methods Cell Biol. 127, 189-201 (2015).

Play Video

Cite This Article
Shimada, I. S., Badgandi, H., Somatilaka, B. N., Mukhopadhyay, S. Using Primary Neurosphere Cultures to Study Primary Cilia. J. Vis. Exp. (122), e55315, doi:10.3791/55315 (2017).

View Video