وهدب الرئيسي هو أهمية أساسية في انتشار العصبية خلية سلفية، تمايز الخلايا العصبية، وظيفة الخلايا العصبية الكبار. هنا، نحن تصف طريقة لدراسة تكون الأهداب والاتجار يشير البروتينات إلى أهداب في الخلايا الجذعية / السلف العصبية والخلايا العصبية متباينة باستخدام الثقافات neurosphere الأولية.
The primary cilium is fundamentally important for the proliferation of neural stem/progenitor cells and for neuronal differentiation during embryonic, postnatal, and adult life. In addition, most differentiated neurons possess primary cilia that house signaling receptors, such as G-protein-coupled receptors, and signaling molecules, such as adenylyl cyclases. The primary cilium determines the activity of multiple developmental pathways, including the sonic hedgehog pathway during embryonic neuronal development, and also functions in promoting compartmentalized subcellular signaling during adult neuronal function. Unsurprisingly, defects in primary cilium biogenesis and function have been linked to developmental anomalies of the brain, central obesity, and learning and memory deficits. Thus, it is imperative to study primary cilium biogenesis and ciliary trafficking in the context of neural stem/progenitor cells and differentiated neurons. However, culturing methods for primary neurons require considerable expertise and are not amenable to freeze-thaw cycles. In this protocol, we discuss culturing methods for mixed populations of neural stem/progenitor cells using primary neurospheres. The neurosphere-based culturing methods provide the combined benefits of studying primary neural stem/progenitor cells: amenability to multiple passages and freeze-thaw cycles, differentiation potential into neurons/glia, and transfectability. Importantly, we determined that neurosphere-derived neural stem/progenitor cells and differentiated neurons are ciliated in culture and localize signaling molecules relevant to ciliary function in these compartments. Utilizing these cultures, we further describe methods to study ciliogenesis and ciliary trafficking in neural stem/progenitor cells and differentiated neurons. These neurosphere-based methods allow us to study cilia-regulated cellular pathways, including G-protein-coupled receptor and sonic hedgehog signaling, in the context of neural stem/progenitor cells and differentiated neurons.
وهدب الأساسي هو مقصورة التحت خلوية الحيوية القائمة على أنيبيب أن يعمل بمثابة الهوائي الحسي في تنسيق مسارات الإشارات الخلوية، بما في ذلك المسار سونيك القنفذ (صه) خلال تطوير الخلايا العصبية الجنينية 1 و 2 و إشارات التحت خلوية مجزأة في وظيفة الخلايا العصبية الكبار 3 و 4 . يشير مكونات هذه الممرات، مثل مستقبلات صه مرقع 5؛ المنشط مسار مملس (SMO) 6؛ وGpr161 7، ومستقبلات البروتين يقترن الأيتام G (GPCR) الذي ينظم سلبا على مسار صه، توطين لأهداب بطريقة ديناميكية. وقد تم الإبلاغ عن GPCRs متعددة لتوطين للأهداب الخلايا العصبية في الدماغ في 7 و 8 و 9 و 10 </سوب>، 11، 12، 13، 14، 15، 16. عيوب في أهداب ومسارات إشارات ولدت أهداب تؤثر على أنسجة متعددة ومعروفة جماعيا باسم ciliopathies 17 و 18 و 19. في كثير من الأحيان يشمل الطيف مرض ciliopathy عيوب النمو العصبي، مثل تشوهات القحفي 20 و 21 و 22. وبالإضافة إلى ذلك، أهداب الأساسي في الخلايا العصبية المهاد تنظيم مسارات الشبع المركزية، والعيوب يؤدي إلى السمنة المركزية 23، وهو ما يعكس السمنة في ciliopathies المتلازمات مثل متلازمة بارديه Biedel 24. وبالإضافة إلى ذلك، مستقبلات نيوروبيبتيدي يشير في أهداب ينظم الطرد المركزيآل الشبع مسارات 11 و 14. توطين الهدبية انزيمات سيكلاز III (ACIII) وGPCRs مثل السوماتوستاتين مستقبلات 3 في الخلايا العصبية الحصين يؤدي إلى عيوب الاعتراف جوه جديدة والعجز في الذاكرة 25 و 26 و يوازي غياب النزاهة الهدبية 27. ترتبط الجوانب التنموية للإشارات ولدت أهداب ارتباطا وثيقا توازن الأنسجة. على وجه الخصوص، أهداب هامة لتطور ورم أرومي نخاعي صه-فرعي الناتجة عن الأسلاف الحبيبية في المخيخ 28 و 29. وهكذا، أهداب الأولية تلعب أدوارا هامة خلال الجنينية، وبعد الولادة، والكبار تطوير الخلايا العصبية وظيفة.
الخلايا الجذعية العصبية (NSCs) يقيمون في منطقة subventricular (SVZ) من البطين الجانبي، والمنطقة جزئي التحبب من التلفيف المسنن من الحصين، ومنطقة البطين من البطين الثالث في منطقة ما تحت المهاد في الثدييات 30 و 31 و 32. NSCs هي متعددة القدرات، وتمتلك القدرة على التجديد الذاتي، وهي مهمة لنمو المخ والطب التجديدي 30. معظم NSCs في SVZ هي هادئة وتمتلك هدب الأساسي الانفرادي أنه في كثير من الحالات، ويمتد إلى البطين الجانبي 33. إشارات هدب الأولية عن طريق توطين مختلف المستقبلات، يحفز الاستجابات الخلوية المصب، وخصوصا فيما يتعلق صه، TGFβ، ومستقبلات التيروزين كيناز مسارات 2، 34، 35، 36. منذ أهداب الأولية تمتد إلى البطين الجانبي، والافتراض بأن أهداب الابتدائي كشف السيتوكينات في السائل النخاعي (CSF) لتنشيط NSCs 37 </sتصل>. وتشير الدراسات الحديثة إلى أن إشارات الطريق صه وأهداب الأساسي حاسمة لتنشيط الخلايا الجذعية في إصلاح وتجديد الأنسجة متعددة، بما في ذلك الظهارة الشمية والرئة، والكلى 38 و 39 و 40 و 41. ومع ذلك، فإن الآليات التي CSF التواصل مع NSCs وما إذا أهداب الابتدائي تشارك ليست معروفة. ومهدبة NSCs ملتصقة في الثقافة؛ توطين مكونات مسار صه، مثل SMO وGpr161 في أهداب. وهي صه استجابة 42. وهكذا، يمكن NSCs بمثابة نظام المهم نموذج لدراسة مسار صه، والاتجار الهدبي، ومسارات التمايز العصبية. وبالإضافة إلى ذلك، الخلايا العصبية متباينة من NSCs يمكن أن تستخدم أيضا لفحوصات الاتجار الهدبية.
ويشكل Neurospheres من مجموعات من الخلايا التعويم الحر الناجمة عن انتشار neuraل الخلايا الجذعية / السلف التي تنمو في وجود عوامل نمو معينة والسطوح nonadhesive 43 و 44. Neurospheres بمثابة هاما في نماذج الثقافة المختبر لدراسة الخلايا الجذعية / السلف العصبية في التطور الطبيعي ومرض 31، 45، 46، 47. هنا، نحن تصف مقايسة على أساس neurosphere لزراعة الخلايا الجذعية العصبية / السلف والتمايز في الخلايا العصبية / الدبقية. ونحن نؤكد على وجه الخصوص الاتجار يشير إلى مكونات أهداب الجذعية العصبية / الخلايا الاولية والخلايا العصبية متباينة (الشكل 1). بدلا من زراعة الخلايا العصبية الأولية، neurospheres الأساسي من السهل نسبيا للثقافة، هي قابلة للفقرات متعددة ودورات ذوبان الجليد تجميد، ويمكن أن يخضع التمايز في الخلايا العصبية / الدبقية. الأهم من ذلك، توصلنا إلى أن العصبية المشتقة من neurosphereومهدبة الخلايا الجذعية / السلف والخلايا العصبية متباينة في الثقافة وتوطين الجزيئات مما يشير إلى وظيفة ذات الصلة الهدبية في هذه المقصورات. يمكن أن أساليب زراعة أساس Neurosphere-بمثابة نظام نموذجا مثاليا لدراسة تكون الأهداب والهدبية الاتجار NSCs والخلايا العصبية متباينة.
هنا، نحن تصف طريقة لتوليد والحفاظ على الثقافات neurosphere من SVZ الماوس الكبار. هناك بعض النقاط ذات الصلة فيما يتعلق الثقافات هي على النحو التالي. أولا، أحجام المجالات وعادة ما تكون بين 50-200 ميكرون. في تجربتنا، وعندما يحصل على neurosphere أكبر من 300 ميكرون في القطر، وقد غاب عن الو?…
The authors have nothing to disclose.
Work in S.M.’s laboratory is funded by recruitment grants from CPRIT (R1220) and NIH (1R01GM113023-01).
12 mm round cover glass | Fisherbrand | 12-545-80 | |
24 well plate | Falcon | 353047 | |
4 % paraformaldehyde | Affymetrix | 19943 | |
50 ml tube | Falcon | 352098 | |
95 mm X 15 mm petri dish, slippable lid | Fisherbrand | FB0875714G | 10 cm dish |
70 µm cell strainer | Falcon | 352350 | |
Alexa Fluor 488 Affinipure Donkey Anti-Rabbit IgG (H+L) | Jackson Immunoresearch | 711-545-152 | Donkey anti Rabbit, Alexa 488 secondary antibody |
Arl13B, Clone N295B/66 | Neuromab | AB_11000053 | |
B-27 Supplement (50X), serum free | ThermoFisher Scientific | 17504001 | B27 |
Centrifuge | Thermo scientific | ST 40R | |
Cryogenic vial | Corning | 430488 | |
DAPI | Sigma | D9542-10MG | |
Deoxyribonuclease I from bovine pancrease | Sigma | D5025-15KU | Dnase I |
Dimethyl sulfoxide | Sigma | D8418-100ML | DMSO |
Disposable Vinyl Specimen Molds | Sakura Tissue-Tek Cryomold | 4565 | 10 mm X 10 mm X 5 mm |
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline 10×, Modified, without calcium chloride and magnesium chloride, liquid, sterile-filtered, suitable for cell culture | Sigma | D1408-500ML | PBS |
Dumont #5 Forceps | Fine science tools | 11254-20 | |
FBS | Sigma | F9026-500ML | |
Fluoromount-G solution | Southern Biotech | 0100-01 | mounting solution |
GFAP | DAKO | Z0334 | |
Goat anti Mouse IgG1 Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 conjugate | ThermoFisher Scientific | A-21127 | Goat anti Mouse IgG1, Alexa 555 secondary antibody |
Goat anti Mouse IgG2a Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 conjugate | ThermoFisher Scientific | A-21137 | Goat anti Mouse IgG2a, Alexa 555 secondary antibody |
Gpr161 | home made | N/A | |
human bFGF | Sigma | F0291 | FGF |
hemocytometer | Hausser Scientific | 0.100 mm deep | improved neubauer |
Isothesia | Henry Schein | NDC 11695-0500-2 | Isofluorane |
Laminin from Engelbreth-Holm-Swarm Sarcoma basement membrane | Sigma | L2020 | Laminin |
L-Glutamine (200mM) | Sigma | G7513 | |
Lipofectamine 3000 Transfection Reagent | ThermoFisher Scientific | L3000 | |
Mr. Frosty | Nalgene | 5100-0036 | |
N-2 supplement (100X) | ThermoFisher Scientific | 17502001 | N2 |
Neurobasal medium | Gibco | 21103-049 | |
Normal Donkey Serum | Jackson ImmunoResearch | 017-000-121 | |
OCT compound | Sakura Tissue-Tek | 4583 | OCT |
Penicillin-Streptomycin | Sigma | P4333-100ML | |
Poly-L-lysine | Sigma | P4707 | |
Recombinant human EGF protein, CF | R and D systems | 236-EG-200 | EGF |
Scissor | Fine science tools | 14060-10 | |
Superfrost plus microscope slide | Fisher scientific | 12-550-15 | slides |
Triton X | Bio-Rad | 161-0407 | |
Trypsin-EDTA solution (10X) | Sigma | T4174-100 | Trypsin |
COSTAR 6 Well Plate, With Lid Flat Bottom Ultra-Low Attachment Surface Polystyrene, Sterile | Corning | 3471 | ultra-low binding 6 well plate |
β-tubulin III | Covance | MMS-435P | TUJ1 |