A strategy for generating mutations in histone genes at their endogenous location in Saccharomyces cerevisiae is presented.
We describe a PCR- and homologous recombination-based system for generating targeted mutations in histone genes in budding yeast cells. The resulting mutant alleles reside at their endogenous genomic sites and no exogenous DNA sequences are left in the genome following the procedure. Since in haploid yeast cells each of the four core histone proteins is encoded by two non-allelic genes with highly homologous open reading frames (ORFs), targeting mutagenesis specifically to one of two genes encoding a particular histone protein can be problematic. The strategy we describe here bypasses this problem by utilizing sequences outside, rather than within, the ORF of the target genes for the homologous recombination step. Another feature of this system is that the regions of DNA driving the homologous recombination steps can be made to be very extensive, thus increasing the likelihood of successful integration events. These features make this strategy particularly well-suited for histone gene mutagenesis, but can also be adapted for mutagenesis of other genes in the yeast genome.
ארבעת החלבונים היסטון הליבה H2A, H2B, H3, ו- H4 ממלאים תפקידים מרכזיים הדחיסה, ארגון ותפקוד של כרומוזומים איקריוטיים. שני סטים של כל אחד היסטונים אלה יוצרים את octamer היסטון, סליל מולקולרי שמנתב את העטיפה של זוגות בסיסים ~ 147 של DNA סביב עצמו, בסופו של דבר וכתוצאה מכך ההיווצרות של הנוקלאוזום 1. נוקלאוזום הם משתתפים פעילים במגוון תהליכים מבוסס כרומוזום, כגון הסדרת שעתוק גנים לבין ההיווצרות של euchromatin ו heterochromatin פני הכרומוזומים, וככזה הוא העיקר של מחקר אינטנסיבי במהלך העשורים האחרונים. מספר המנגנונים תואר שבאמצעותו נוקלאוזום ניתן להשפיע בדרכים שיכולים להקל על ביצוע של תהליכים ספציפיים – מנגנונים אלה כוללים שינוי posttranslational של שאריות היסטון, שיפוץ הנוקלאוזום תלוי ATP, וארגון מחדש הנוקלאוזום ATP-עצמאיוהרכבה / פירוק 2, 3.
השמרים ניצני שמר האפייה הוא אורגניזם מודל חזק במיוחד להבנת תפקוד היסטון אאוקריוטים. זו ניתן לייחס במידה רבה את הרמה הגבוהה של שימור אבולוציוני של חלבונים היסטון ברחבי eukarya תחום רמת המוכנות של שמרים למגוון ניסיוני גנטיים ביוכימיים מתקרב 4. גישות Reverse-גנטיות בשמרים היו בשימוש נרחב כדי לחקור את ההשפעות של מוטציות ספציפיות היסטון על היבטים שונים של ביולוגיה הכרומטין. עבור אלו סוגים של ניסויים הוא לעתים קרובות עדיף להשתמש בתאים בם ההיסטונים המוטציה באים לידי ביטוי מן הלוקוסים הגנומי מולדתם, כמו ביטוי מן פלסמידים אוטונומיים יכול להוביל לרמות תאיים החריגות של חלבונים היסטון (עקב מספרים שונים של פלסמידים בתאים) ו שינוי מקביל של הכרומטין environments, אשר בסופו של דבר יכול לבלבל את הפרשנות של תוצאות.
כאן אנו מתארים טכניקה PCR מבוססת המאפשרת mutagenesis הממוקד של גני היסטון במקומות גנומי מולדתם שאינו דורשים צעד שיבוט ותוצאות בדור של המוטציה הרצויה (ים) ללא רצפי DNA אקסוגני שאריות בגנום. טכניקה זו מנצלת את המערכה ההומולוגית היעילה שמרים ויש לו כמה תכונות משותפות עם בטכניקות דומות אחרות שפותחו על ידי קבוצות אחרות – בעיקר Delitto Perfetto, אתר ספציפי גנומי (SSG) mutagenesis, שיבוט ללא אלל מבוסס PCR שיטות החלפה 5, 6, 7. עם זאת, הטכניקה נתאר יש היבט זה עושה את זה במיוחד מתאים היטב mutagenesis של גני היסטון. בתאי שמרים הפלואידים, כל אחד ההיסטונים הליבה ארבעה מקודד על ידי שתי שאינוגני llelic ו הומולוגיים מאוד: למשל, H3 היסטון מקודדים על ידי גני HHT1 ו HHT2, ואת מסגרות הקריאה הפתוחות (ORFs) משני הגנים הן מעל 90% זהות ברצף. רמה גבוהה זו של הומולוגיה יכולה לסבך ניסויים שנועדו למקד ספציפי אחד הגנים שני קידוד-היסטון עבור mutagenesis. בעוד השיטות הנ"ל לעתים קרובות דורשים שימוש לפחות כמה רצפים בתוך ORF של גן המטרה לנהוג הומולוגיים, הטכניקה שאנו מתארים כאן עושה שימוש רצפים איגוף ORFs של גנים היסטון (אשר חולקים הרבה פחות הומולוגיה ברצף) עבור צעד רקומבינציה, ובכך להגדיל את הסבירות של מיקוד המוצלח של mutagenesis אל המוקד הרצוי. יתר על כן, באזורים ההומולוגיים שמניעים רקומבינציה יכולים להיות מאוד נרחבים, ובכך תורמים עוד יותר הומולוגי ממוקדים ויעיל.
הרמה הגבוהה של הומולוגיה ברצף בין שני גנים שאינם אללים שקוד לכל אחד החלבונים היסטון ארבע ליבות בתאים הפלואידים cerevisiae ס יכול לייצג אתגר עבור חוקרים המבקשים למקד ספציפית אחת משני הגנים עבור mutagenesis. שתואר לעיל מתודולוגיות mutagenesis שמרים, כולל Perfetto Delitto, אתר ספציפ…
The authors have nothing to disclose.
We thank Reine Protacio for helpful comments during the preparation of this manuscript. We express our gratitude to the National Science Foundation (grants nos. 1243680 and 1613754) and the Hendrix College Odyssey Program for funding support.
1 kb DNA Ladder (DNA standards) | New England BioLabs | N3232L | |
Agarose | Sigma | A5093-100G | |
Boric Acid | Sigma | B0394-500G | |
dNTP mix (10 mM each) | ThermoFisher Scientific | R0192 | |
EDTA solution (0.5M, pH 8.0) | AmericanBio | AB00502-01000 | |
Ethanol (200 Proof) | Fisher Scientific | 16-100-824 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt dihydrate (EDTA) | Sigma | E4884-500G | |
Lithium acetate dihydrate | Sigma | L6883-250G | |
MyCycler Thermal Cycler | BioRad | 170-9703 | |
Poly(ethylene glycol) (PEG) | Sigma | P3640-1KG | |
PrimeSTAR HS DNA Polymerase (high fidelity DNA polymerase) and 5X buffer | Fisher Scientific | 50-443-960 | |
Salmon sperm DNA solution | ThermoFisher Scientific | 15632-011 | |
Sigma 7-9 (Tris base, powder form) | Sigma | T1378-1KG | |
Sodium acetate trihydrate | Sigma | 236500-500G | |
Supra Sieve GPG Agarose (low metling temperature agarose) | AmericanBio | AB00985-00100 | |
Taq Polymerase and 10X Buffer | New England BioLabs | M0273X | |
Toothpicks | Fisher Scientific | S67859 | |
Tris-HCl (1M, pH 8.0) | AmericanBio | AB14043-01000 | |
a-D(+)-Glucose | Fisher Scientific | AC170080025 | for yeast media |
Agar | Fisher Scientific | DF0140-01-0 | for yeast media |
Peptone | Fisher Scientific | DF0118-07-2 | for YPD medium |
Yeast Extract | Fisher Scientific | DF0127-17-9 | for YPD medium |
4-aminobenzoic acid | Sigma | A9878-100G | for complete minimal dropout medium |
Adenine | Sigma | A8626-100G | for complete minimal dropout medium |
Glycine hydrochloride | Sigma | G2879-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Alanine | Sigma | A7627-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Arginine monohydrochloride | Sigma | A5131-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Asparagine monohydrate | Sigma | A8381-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Aspartic acid sodium salt monohydrate | Sigma | A6683-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Cysteine hydrochloride monohydrate | Sigma | C7880-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Glutamic acid hydrochloride | Sigma | G2128-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Glutamine | Sigma | G3126-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Histidine monohydrochloride monohydrate | Sigma | H8125-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Isoleucine | Sigma | I2752-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Leucine | Sigma | L8000-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Lysine monohydrochloride | Sigma | L5626-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Methionine | Sigma | M9625-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Phenylalanine | Sigma | P2126-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Proline | Sigma | P0380-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Serine | Sigma | S4500-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Threonine | Sigma | T8625-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Tryptophan | Sigma | T0254-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Tyrosine | Sigma | T3754-100G | for complete minimal dropout medium |
L-Valine | Sigma | V0500-100G | for complete minimal dropout medium |
myo-Inositol | Sigma | I5125-100G | for complete minimal dropout medium |
Uracil | Sigma | U0750-100G | for complete minimal dropout medium |
Ammonium Sulfate | Fisher Scientific | A702-500 | for complete minimal dropout medium |
Yeast Nitrogen Base | Fisher Scientific | DF0919-07-3 | for complete minimal dropout medium |
5-Fluoroorotic acid (5-FOA) | AmericanBio | AB04067-00005 | for 5-FOA medium |