Nous présentons ici pluripotentes humaines protocoles de culture de cellules souches (hPSC), utilisés pour différencier les hPSCs en CD34+ progéniteurs hématopoïétiques. Cette méthode utilise la manipulation spécifique au stade de canonique WNT de signalisation indiquer les cellules exclusivement pour le programme hématopoïétique de définitif ou primitif.
Un des objectifs majeurs pour la médecine régénérative est la production et la maintenance de cellules souches hématopoïétiques (CSH) dérivé des cellules souches pluripotentes humaines (hPSCs). Jusqu’à une date récente, efforts pour hPSCs se différencient en CSH ont généré principalement des progéniteurs hématopoïétiques qui manquent potentiel d’HSC et plutôt ressembler à l’hématopoïèse sac vitellin. Ces progéniteurs hématopoïétiques qui en résulte peuvent ont une utilité pour in vitro de modélisation maladie de divers troubles hématopoïétiques adultes, particulièrement ceux des lignées lymphoïdes limitée. Cependant, nous avons récemment décrit des méthodes pour générer l’érythro-myélo-lymphoïdes multilignées progéniteurs hématopoïétiques définitifs de hPSCs à l’aide d’un protocole spécifique au stade de différenciation dirigée, qui nous exposons ici. Par le biais de dissociation enzymatique du hPSCs sur la membrane basale enduit de matrice ustensiles en plastique, corps embryoïdes (EBs) sont forment. EBs sont différenciés au mésoderme par BMP4 recombinant, qui est spécifié par la suite au programme hématopoïétique définitif par l’inhibiteur de la GSK3β, CHIR99021. Alternativement, l’hématopoïèse primitif est spécifiée par l’inhibiteur de la PORCN, IWP2. Hématopoïèse est plus entraîné par l’addition de recombinant VEGF et soutien hématopoïétique cytokines. Les progéniteurs hématopoïétiques résultants générés à l’aide de cette méthode ont le potentiel d’être utilisé pour la modélisation du développement, in vitroet de maladie.
Les cellules souches pluripotentes humaines (hPSCs) sont définis comme englobant les cellules souches embryonnaires humaines (CSEh) et les cellules souches humaines pluripotentes induites (hiPSCs) et ont la capacité unique non seulement en cours de renouvellement automatique dans des conditions appropriées de croissance, mais aussi, la capacité à se différencier en tous types de cellules dérivées des trois couches de germe : ectoderme, mésoderme et endoderme1. En raison de ces capacités uniques, hPSCs sont très prometteurs pour la médecine régénérative, modélisation de maladies et thérapies à base cellulaire2. Alors que plusieurs types de cellules ont été différenciés avec succès de hPSCs, un défi important est la spécification in vitro d’exclusivement adulte comme dérivé de hPSC les cellules souches hématopoïétiques (CSH) et des progéniteurs hématopoïétiques définitifs.
Une barrière susceptible au développement du CSH humaine de hPSCs est la présence de multiples programmes hématopoïétiques dans l’ embryon humain3. Le premier programme qui émerge, appelé « hématopoïèse primitif », prend sa source dans les tissus extra-embryonnaires sac vitellin et est mieux caractérisé par sa production transitoire des progéniteurs des érythroblastes (EryP-CFC), les macrophages et les mégacaryocytes. Notamment, ce programme ne donne pas lieu à CSH, ni il donne naissance à des progéniteurs lymphoïdes T et B. Toutefois, le sac vitellin transitoirement suscite restreints progéniteurs hématopoïétiques définitifs, tels que le progéniteur myéloïde érythro (EMP4,5,6,7,8) et le déficient érythroïdes lymphoïdes-amorcé multipotentes progéniteurs (PPSP9). Cependant, PGE ni LMPPs sont entièrement multipotentes, ou capable de prise de greffe de CSH-comme chez les receveurs adultes. En revanche, plus tard dans le développement, le programme hématopoïétique « définitif » classiquement définie est spécifié dans la région de l’aorte-gonades-celles de l’embryon proprement dit, donnant lieu à toutes les lignées hématopoïétiques adultes, y compris le HSC. La spécification de ces cellules hématopoïétiques définitifs intra embryonnaires se produit de manière Notch-dépendante, via une transition endothéliales-à-hématopoïétiques du hemogenic l’endothélium (il)3,10,11 ,12,13,14. En dehors de la capacité de reconstitution, le potentiel de multilineage et Notch-dépendance à l’égard de ces cellules peuvent être utilisé pour distinguer ces progéniteurs hématopoïétiques définitifs de l’EMP et le PPSP (révisé dans les références3,13 ).
Comprendre les mécanismes qui régissent la spécification hématopoïétique primitive et définitive de hPSCs est probablement essentiel à la production reproductible de progéniteurs hématopoïétiques définitifs dans un éventail de lignes hPSC. Jusqu’à tout récemment, des protocoles de différenciation hPSC qui pourraient séparer multipotentes progéniteurs hématopoïétiques primitives et définitives n’existaient pas de15,16,17,18, 19,20,21,22,23,24,25. Beaucoup d’approches à l’aide de sérum fœtal (SVF) et/ou stromal co-culture tout d’abord souligné le potentiel hématopoïétique de différenciation hPSC, avec des mélanges de primitives et définitive hématopoïétiques potentiel15,16, 17,19,22,23,25. En outre, de nombreux protocoles sans sérum hématopoïétiques ont décrit les exigences en matière de signal pour la spécification du mésoderme de hPSCs qui abrite hématopoïétiques potentiels18,20,21, 24. Cependant, comme ces méthodes ont toujours donné lieu à des mélanges hétérogènes des deux programmes, leur utilisation dans des applications cliniques et de la compréhension des mécanismes du développement peut être limitée.
Nous avons récemment construit sur ces études, alors que nous avons décrit les exigences spécifiques au stade signal ACTIVIN/NODAL et signalisation WNT dans spécification hématopoïétique primitive et définitive du mésoderme dérivé hPSC18,26 . Ce dernier était particulièrement unique, car son utilisation de la manipulation de signaux spécifiques au stade WNT permet la spécification d’exclusive primitive ou exclusivement des progéniteurs hématopoïétiques définitif26. Au cours de la spécification du mésoderme, l’inhibition de la signalisation WNT canonique avec l’inhibiteur de la PORCN IWP2 se traduit par la spécification de CD43+ EryP-CFC et des progéniteurs myéloïdes, sans potentiel lymphoïdes détectable. Contraste, stimulation des canonique WNT signaling avec l’inhibiteur de la GSK3β, CHIR99021, au cours de la même étape de différenciation a provoqué l’absence totale de CD43 détectable+ EryP-CFC, tout en menant simultanément à la spécification du CD34+CD43− HE. Cette population possédait myéloïde, HBG-exprimant érythroïdes et lymphoïdes T potentiel. Les analyses subséquentes identifié ce qu’il manque l’expression CD7327,28 CD18428et son potentiel hématopoïétique était dépendante NOTCH28. En outre, unicellulaires analyses clonales ont démontré que ces lignées hématopoïétiques définitives pourraient provenir de cellules multipotentes28. Pris ensemble, ces études indiquent que stade WNT signaling manipulation permet de spécifier des progéniteurs hématopoïétiques primitives pures, ou multipotentes progéniteurs hématopoïétiques définitifs de NOTCH-dépendante.
Ici, nous exposons notre stratégie de différentiation qui génère des progéniteurs hématopoïétiques exclusivement primitifs ou définitifs, par manipulation de canonique WNT signalisation lors mésodermiques structuration et leur lignée hématopoïétique en aval des essais. Ce protocole est d’une grande utilité pour les chercheurs qui s’intéressent à la production de progéniteurs hématopoïétiques primitives ou définitifs de hPSCs pour les applications de la médecine régénérative.
Ce protocole décrit une méthode rapide, sans sérum, exempt de stroma de la différenciation des progéniteurs hématopoïétiques primitives ou définitifs. Mésodermiques spécification des progéniteurs hématopoïétiques primitives ou définitifs peut être réalisée de façon fiable utilisant notre protocole, qui exploite uniquement des petites molécules inhibitrices de la signalisation WNT canonique. Activation de WNT spécifiques au stade de l’inhibiteur de la GSK3β CHIR9902133 donn…
The authors have nothing to disclose.
Ce travail a été soutenu par le Department of Internal Medicine, Division d’hématologie, Washington University School of Medicine. CD a été pris en charge par T32HL007088 du National Heart, Lung, and Blood Institute. CMS a été pris en charge par une société américaine d’hématologie Scholar Award.
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMD) | Corning | 10-016 | |
Fetal Bovine Serum (FBS), ES cell rated | Gemini Bioproducts | 100-500 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Hyclone | SH30396.03 | |
L-glutamine, 200 mM solution | Life Technologies | 25030-081 | |
Penicillin-streptomycin | Life Technologies | 15070-063 | |
0.25% Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25200056 | |
0.05% Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25300054 | |
Gelatin, porcine skin, Type A | Sigma-Aldrich | G1890 | |
Alpha-MEM | Life Technologies | 12000-022 | |
DMEM-F12 | Corning | 10-092-CV | |
Knock-out serum replacement | Life Technologies | 10828028 | "KOSR" |
Non-essential amino acids (NEAA) | Life Technologies | 11140050 | |
b-mercaptoethanol, 55 mM solution | Life Technologies | 21985023 | |
Hydrochloric acid | Sigma-Aldrich | H1758 | |
Fraction V, Bovine Serum Albumin | Fisher Scientific | BP1605 | |
Ham's F12 | Corning | 10-080 | |
N2 supplement | Life Technologies | 17502048 | |
B27 supplement, no vitamin A | Life Technologies | 12587010 | |
Stempro-34 (SP34) | Life Technologies | 10639011 | "SP34" |
Growth factor reduced Matrigel | Corning | 354230 | "MAT" |
L-absorbic acid | Sigma-Aldrich | A4403 | |
Human serum transferrin | Sigma-Aldrich | 10652202001 | |
Monothioglycerol (MTG) | Sigma-Aldrich | M6145 | |
Collagenase B | Roche | 11088831001 | |
Collagenase II | Life Technologies | 17101015 | |
DNaseI | Calbiochem | 260913 | |
Phosphate Buffered Saline (PBS) | Life Technologies | 14190144 | |
bFGF | R&D Systems | 233-FB | |
BMP4 | R&D Systems | 314-BP | |
Activin A | R&D Systems | 338-AC | |
VEGF | R&D Systems | 293-VE | |
SCF | R&D Systems | 255-SC | |
IGF-1 | R&D Systems | 291-G1 | |
IL-3 | R&D Systems | 203-IL | |
IL-6 | R&D Systems | 206-IL | |
IL-7 | R&D Systems | 207-IL | |
IL-11 | R&D Systems | 218-1L | |
TPO | R&D Systems | 288-TP | |
EPO | Peprotech | 100-64 | |
Flt-3 ligand (FLT3-L) | R&D Systems | 308-FK | |
CHIR99021 | Tocris | 4423 | |
IWP2 | Tocris | 3533 | |
Angiotensin II | Sigma-Aldrich | A9525 | |
Losartan Potassium | Tocris | 3798 | |
CD4 PerCP Cy5.5 Clone RPA-T4 | BD Biosciences | 560650 | Dilution 1:100; T cell assay |
CD8 PE Clone RPA-T8 | BD Biosciences | 561950 | Dilution 1:10; T cell assay |
CD34 APC Clone 8G12 | BD Biosciences | 340441 | Dilution 1:100; EHT assay |
CD34 PE-Cy7 Clone 8G12 | BD Biosciences | 348801 | Dilution 1:100; Hemogenic endothelium |
CD43 FITC Clone 1G10 | BD Biosciences | 555475 | Dilution 1:10; Hemogenic endothelium |
CD45 APC-Cy7 Clone 2D1 | BD Biosciences | 557833 | Dilution 1:50; T cell assay |
CD45 eFluor450 Clone 2D1 | BD Biosciences | 642284 | Dilution 1:50; EHT assay |
CD56 APC Clone B159 | BD Biosciences | 555518 | Dilution 1:20; T cell assay |
CD73 PE Clone AD2 | BD Biosciences | 550257 | Dilution 1:50; Hemogenic endothelium |
CD184 APC Clone 12G5 | BD Biosciences | 555976 | Dilution 1:50; Hemogenic endothelium |
4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) | BD Biosciences | 564907 | Dilution 1:10,000; T cell assay |
OP9 DL4 cells | Holmes, R. and J.C. Zuniga-Pflucker. Cold Spring Harb Protoc, 2009. 2009(2): p. pdb prot5156 | ||
MethoCult H4034 | Stemcell Technologies | 4034 | "MeC" |
Milli-Q water purification system | EMD Millipore | ||
5% CO2 incubator | Set at 37 C | ||
Multigas incubator | Set at 37 C, 5% CO2, 5% O2 | ||
6 well tissue culture plate | Corning | 353046 | |
24 well tissue culture plate | Corning | 353226 | |
6 well low-adherence tissue culture plate | Corning | 3471 | |
24 well low-adherence tissue culture plate | Corning | 3473 | |
35 mm tissue culture dishes | Corning | 353001 | |
Blunt-end needle, 16 gauge | Corning | 305198 | |
3 cc syringes | Corning | 309657 | |
5 mL polypropylene test tube | Corning | 352063 | |
5 mL polystyrene test tube | Corning | 352058 | |
15 mL polypropylene conical | Corning | 430791 | |
50 mL polypropylene conical | Corning | 430921 | |
2 mL serological pipette | Corning | 357507 | |
5 mL serological pipette | Corning | 4487 | |
10 mL serological pipette | Corning | 4488 | |
25 mL serological pipette | Corning | 4489 | |
Cell scrapers | Corning | 353085 | |
2.0 mL cryovials | Corning | 430488 | |
5 mL test tube with 40 µM cell strainer | Corning | 352235 | |
40 µM cell strainer | Corning | 352340 | |
Cell culture centrifuge | |||
Biosafety hood | |||
FACS AriaII or equivalent | |||
LSRii or equivalent | |||
FlowJo software | TreeStar | ||
Water bath | Set at 37 C | ||
0.22 µM filtration system | Corning | ||
Autoclave | |||
4 C refrigerator | |||
-20 C Freezer | |||
-80 C Freezer |