Summary

Ex Vivo Infectie van Muizen Epidermis met Herpes simplex virus type 1

Published: August 24, 2015
doi:

Summary

The skin is one target tissue of the human pathogen herpes simplex virus type 1 (HSV-1). To explore the invasion route of HSV-1 into tissue, we established an ex vivo infection model of murine epidermal sheets which represent the outermost layer of skin.

Abstract

Om de menselijke gastheer voeren, moet herpes simplex virus type 1 (HSV-1) de dam van mucosale oppervlakken, huid, cornea of ​​overwinnen. HSV-1 targets keratinocyten tijdens de eerste invoer en wordt een primaire infectie in het epitheel, gevolgd door latente infectie van neuronen. Na reactivatie, kunnen virussen duidelijk geworden bij mucocutane sites die als de huid blaasjes of mucosale zweren verschijnen. Hoe HSV-1 binnendringt huid of het slijmvlies en bereikt zijn receptoren wordt slecht begrepen. Om de invasie route van HSV-1 in epidermaal weefsel op celniveau te onderzoeken, hebben we een ex vivo infectiemodel van muizen epidermis, die de plaats van primaire en recidiverende infecties in de huid weergeeft. De assay omvat de bereiding van muizenhuid. De epidermis wordt gescheiden van de dermis met dispase II behandelen. Na drijvende de epidermale bladen op virus-bevattend medium, het weefsel vast en infectie kan worden gevisualiseerd op verschillende tijdstippen na infectie doorkleuring geïnfecteerde cellen met een antilichaam tegen het HSV-1 directe vroege eiwit ICP0. ICP0-exprimerende cellen kunnen worden waargenomen in de basale keratinocyten laag reeds op 1,5 uur na infectie. Bij langere tijden infectie worden gedetecteerd in geïnfecteerde cellen suprabasale lagen, wat aangeeft dat infectie niet beperkt tot de basale keratinocyten, maar het virus zich naar andere lagen in het weefsel. Gebruik van epidermale bladen van verschillende muismodellen, het infectieprotocol laat vaststellen van de betrokkenheid van cellulaire componenten die bijdragen aan HSV-1 invasie in weefsel. Bovendien is de test geschikt remmers in weefsels die interfereren met de eerste ingang stappen cel tot cel verspreiding en virusproductie testen. Hier beschrijven we de ex vivo infectieprotocol in detail en presenteren onze resultaten met behulp Nectin-1- of HVEM-deficiënte muizen.

Introduction

Herpes simplex virus (HSV) kunnen verschillende ziekten bij mensen van mild ongecompliceerde mucocutane laesies tot levensbedreigende infecties. HSV type 1 (HSV-1) is dominant geassocieerd met orofaciale infectie en encefalitis, terwijl HSV type 2 (HSV-2) waarschijnlijk veroorzaakt genitale infecties 1. Hoewel er aanzienlijke vooruitgang geboekt in het begrijpen van hoe HSV binnenkomt cellen in cultuur, initieert infectie en produceert virale nageslacht, weten we weinig over de virale invasie route (s) in het weefsel op cellulair niveau 2. Voor studies van HSV huid of mucosale infecties, muizen, hebben konijnen en cavia's gebruikt als diermodellen. Huidinfectie werd vastgesteld door intradermale injectie of door krassen van de huid in de aanwezigheid van virus, en ziekteontwikkeling werd gecorreleerd met virusproductie. Deze werkwijzen geholpen om verschillende aspecten van de ziekte pathogenese begrijpen, en worden gebruikt om antivirale middelen te evalueren. HSV infectie studeren aan de tissue niveau zijn organotypische menselijke huid modellen toegepast. Als de snelheid van de infectie beperkt is in deze raft culturen, hebben slechts een beperkt aantal studies die een infectie, virale verspreiding en de effecten van antivirale componenten gepubliceerd 3-6.

Om cellulaire determinanten die een rol spelen tijdens HSV-1 infectie in de intacte epitheel karakteriseren hebben we een protocol voor ex vivo studies infectie van muizen epidermis 7. Huid werd bereid uit pasgeborenen en uit de staart van volwassen muizen. Omdat HSV-1 niet kunnen infecteren volledige huid monsters, die werden ondergedompeld in virusbevattende medium, we scheidde de epidermis van de dermis met dispase II behandelen. Na drijven van de epidermale bladen op virus-bevattend medium kunnen geïnfecteerde cellen worden gevisualiseerd in de epidermale basale laag op verschillende tijdstippen na infectie (pi) 7. Om de opening van de infectie in individuele cellen voorafgaand visualiseren om virale replicatie eennd virusproductie, we gekleurd met een antilichaam tegen de geïnfecteerde cel proteïne 0 (ICP0), één van de eerste eiwitten die tijdens HSV-1 infectie. De cellulaire lokalisatie van ICP0 doorloopt verschillende fasen tijdens de vroege infectie. Hoewel ICP0 aanwezig in nucleaire foci in een vroeg stadium van virale genexpressie, herlokalisatie van ICP0 naar het cytoplasma duidt een volgende fase van de infectie 8.

We gebruikten de ex vivo infectie assay van epidermale bladen van verschillende muismodellen om de mogelijke rol van verschillende cellulaire factoren testen tijdens infectie. Om het effect van Rac1 als een belangrijke regulator van actine dynamiek pakken we besmette epidermis van muizen met een keratinocyt-specifieke deletie van het gen Rac1 9. Dit model konden we de gevolgen van deficiënte Rac1 bestuderen van de efficiëntie van HSV-1 infectie bij epidermale keratinocyten lagen. De vergelijking met geïnfecteerde epidermis controle nestgenoten opnieuwgeopenbaard geen significant verschil wat aangeeft dat het ontbreken van Rac1 geen invloed op de inleiding van infectie in de basale laag van de epidermis 7 had. Het gebruik van verdere muismodellen konden we pakken die cellulaire receptoren bemiddelen binnenkomst in de opperhuid. Infecteren epidermale bladen van ofwel Nectin-1- of HVEM-deficiënte muizen met HSV-1 onthulde dat de eerste virale binnenkomst in weefsel sterk afhankelijk van de aanwezigheid van Nectin-1 10. Bovendien tonen onze resultaten aan dat HVEM ook kan dienen als receptor in muizen epidermis, hoewel minder efficiënt dan Nectin-1 10.

Om de ruimtelijke verdeling van de geïnfecteerde cellen in de epidermale lagen te pakken, visualiseren we ICP0 expressie in weefselsecties en epidermale whole mounts (figuur 1). In cryosecties volledige huid, worden geen ICP0 expressie brengende cellen gedetecteerd (Figuur 1). Daarentegen vriescoupes van epidermale bladen tonen cytoplasmatischeICP0 expressie in de basale laag reeds op 3 uur pi (figuur 1). Op latere tijdstippen, virale verspreiding naar suprabasale lagen kunnen worden gevisualiseerd. De ruimtelijke verdeling van de geïnfecteerde cellen in de basale laag kan gemakkelijk worden gevolgd epidermale whole mounts (figuur 1). Na infectie met HSV-1 bij 100 PFU / cel, ongeveer 50% van de basale keratinocyten in de epidermis interfolliculaire tonen ICP0 expressie in 1,5 uur pi Op dit tijdstip meeste geïnfecteerde cellen tot expressie nucleaire ICP0. De herlokalisatie van ICP0 naar het cytoplasma aangeeft een later stadium van vroege genexpressie is aanwezig in bijna alle cellen bij 3 uur pi (figuur 1). Deze modi visualiseren geïnfecteerde cellen na ex vivo HSV-1 infectie een krachtige test om het effect van remmers of gewist / gemuteerde cellulaire componenten op virale binnenkomst en verspreid in het weefsel te bestuderen.

Protocol

Ethische verklaring. De voorbereiding van de epidermale bladen van geofferde dieren wordt uitgevoerd in strikte overeenstemming met de aanbevelingen van de Gids van Landesamt für Natur, Umwelt en Verbraucherschutz, Noordrijn-Westfalen (Duitsland) uitgevoerd. De studie werd goedgekeurd door LANUV NRW (Aantal 8.84-02.05.20.13.018). 1. Voorbereiding van de instrumenten en cultuur Media Ontwikkel epidermale bladen in Dulbecco's gemodificeerd Eagle&#39…

Representative Results

The challenge of the method is to prepare epidermal sheets into which HSV-1 can penetrate from the basal layer. The critical step is the separation of the epidermis from the dermis by dispase II treatment, which, depending on the mouse strain, needs to be adapted. The concentration of dispase II can range from 2.5 to 5 mg/ml, and the time of incubation from 20 to 45 min. The staining of the intermediate filament protein keratin 14 readily allows predicting whether the basal epidermal layer can be infected or whether it w…

Discussion

When epidermal sheets of adult skin from C57BL/6 are infected with HSV-1 at approximately 100 PFU/cell, we observe infection in nearly all cells of the basal layer in the interfollicular epidermis while lower virus doses correlate with less infected cells and a slower progress of infection. In general, hair follicles show a variable number of infected cells; while most of the rather small keratinocytes lining the developing hair follicles are infected, only the hair germ of the adult hair follicle is completely infected….

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Peter Staeheli for providing B6.A2G-Mx1 mice and Semra Özcelik for technical advice.

This work was supported by the German Research Foundation through SFB829 and KN536/16, and the Köln Fortune Program/Faculty of Medicine, University of Cologne.

Materials

DMEM/high glucose/GlutaMAX Life Technologies 31966047 needed for cultivation of epidermal sheets
dispase II powder Roche 4942078001 has to be solved in heated PBS
enzyme-free cell dissociation solution Sigma C5914 needed for very gentle dissociation of epidermal sheets
TrypLE select cell dissociation solution Life Technologies 12563-029 needed for dissociation of epidermal sheets
chelex 100 resin Bio-Rad 142-2832 needed for chelation of polyvalent metal ions from the fetal calf serum
gelatin from cold water fish skin  Sigma G7765 needed for minimization of non-specific antibody binding
Keratin 14 Polyclonal Antibody (AF64) (conc.: 1 mg/ml) Covance PRB-155P used to visualize the intermediate filament keratin 14 which is a marker of the basal layer of the epidermis
Mouse IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor® 488 conjugate (conc.: 2 mg/ml) Life Technologies A-11029 used as secondary antibodies
Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor® 555 conjugate (conc.: 2 mg/ml) Life Technologies A-21429 used as secondary antibodies
4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride (DAPI dihydrochloride)                             (conc.: 0.1 mg/ml) Sigma 36670 used to counterstain the nucleus

References

  1. Koelle, D. M., Corey, L. Herpes simplex: insights on pathogenesis and possible vaccines. Annu. Rev. Med. 59, 381-395 (2013).
  2. Roizman, B., Knipe, D. M., Whitley, R. J. Herpes simplex Viruses. Fields Virology. , 1823-1897 (2013).
  3. Syrjänen, S., Mikola, H., Nykänen, M., Hukkanen, V. In vitro establishment of lytic and nonproductive infection by herpes simplex virus type 1 in three-dimensional keratinocyte culture. J. Virol. 70, 6524-6528 (1996).
  4. Visalli, R. J., Courtney, R. J., Meyers, C. Infection and replication of herpes simplex virus type 1 in an organotypic epithelial culture system. Virology. 230, 236-243 (1997).
  5. Hukkanen, V., Mikola, H., Nykänen, M., Syrjänen, S. Herpes simplex virus type 1 infection has two separate modes of spread in three-dimensional keratinocyte culture. J. Gen. Virol. 80, 2149-2155 (1999).
  6. Gescher, K., et al. Inhibition of viral adsorption and penetration by an aqueous extract from Rhododendron ferrugineum L. as antiviral principle against herpes simplex virus type-1. Antiviral Res. 82, 408-413 (2010).
  7. Petermann, P., Haase, I., Knebel-Mörsdorf, D. Impact of Rac1 and Cdc42 signaling during early herpes simplex virus type 1 infection of keratinocytes. J. Virol. 83, 9759-9772 (2009).
  8. Everett, R. D., Maul, G. G. HSV-1 IE protein Vmw110 causes redistribution of PML. EMBO J. 13, 5062-5069 (1994).
  9. Chrostek, A., et al. Rac1 is crucial for hair follicle integrity but is not essential for maintenance of the epidermis. Mol. Cell. Biol. 26, 6957-6970 (2006).
  10. Petermann, P., et al. Entry mechanisms of Herpes Simplex Virus Type 1 into murine epidermis: Involvement of nectin-1 and HVEM as cellular receptors. J. Virol. 89, 262-274 (2015).
  11. McGeoch, D. J., et al. The complete DNA sequence of the long unique region in the genome of herpes simplex virus type 1. J. Gen. Virol. 69, 1531-1574 (1988).
  12. Schelhaas, M., Jansen, M., Haase, I., Knebel-Mörsdorf, D. Herpes simplex virus type 1 exhibits a tropism for basal entry in polarized epithelial cells. J. Gen. Virol. 84, 2473-2484 (2003).
  13. Braun, K. M., Niemann, C., Jensen, U. B., Sundberg, J. P., Silva-Vargas, V., Watt, F. M. Manipulation of stem cell proliferation and lineage commitment: visualisation of label-retaining cells in wholemounts of mouse epidermis. Development. 130, 5241-5255 (2003).
  14. Rahn, E., Petermann, P., Hsu, M. J., Rixon, F. J., Knebel-Mörsdorf, D. Entry pathways of herpes simplex virus type 1 into human keratinocytes are dynamin- and cholesterol-dependent. PLoS One. 6, e25464 (2011).
  15. Everett, R. D., Cross, A., Orr, A. A truncated form of herpes simplex virus type 1 immediate-early protein Vmw110 is expressed in a cell type dependent manner. Virology. 197, 751-756 (1993).
  16. Horisberger, M. A., Staeheli, P., Haller, O. Interferon induces a unique protein in mouse cells bearing a gene for resistance to influenza virus. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 80, 1910-1914 (1983).
  17. Christian, A. E., Haynes, M. P., Phillips, M. C. Use of cyclodextrins for manipulating cellular cholesterol content. J. Lipid Res. 38, 2264-2272 (1997).
  18. Ilangumaran, S., Hoessli, D. C. Effects of cholesterol depletion by cyclodextrin on the sphingolipid microdomains of the plasma membrane. Biochem. J. 335, 433-440 (1998).
  19. Yancey, P. G., et al. Cellular cholesterol efflux mediated by cyclodextrins: Demonstration of kinetic pools and mechanism of efflux. J. Biol. Chem. 271, 16026-16034 (1996).
  20. Montgomery, R. I., Warner, M. S., Lum, B. J., Spear, P. G. Herpes simplex virus-1 entry into cells mediated by a novel member of the TNF/NGF receptor family. Cell. 87, 427-436 (1996).
  21. Geraghty, R. J., Krummenacher, C., Cohen, G. H., Eisenberg, R. J., Spear, P. G. Entry of alphaherpesviruses mediated by poliovirus receptor-related protein 1 and poliovirus receptor. Science. 280, 1618-1620 (1998).
  22. Taylor, J. M., Lin, E., Susmarski, N., Yoon, M., Zago, A., Ware, C. F., Pfeffer, K., Miyoshi, J., Takai, Y., Spear, P. G. Alternative entry receptors for herpes simplex virus and their roles in disease. Cell Host Microbe. 2, 19-28 (2007).
  23. Barron, M. J., Brookes, S. J., Draper, C. E., Garrod, D., Kirkham, J., Shore, R. C. The cell adhesion molecule nectin-1 is critical for normal enamel formation in mice. Hum. Mol. Genet. 17, 3509-3520 (2008).
  24. Wang, Y., Subudhi, S. K., Anders, R. A., Lo, J., Sun, Y., Blink, S., Wang, Y., Liu, X., Mink, K., Degrandi, D., Pfeffer, K., Fu, Y. X. The role of herpesvirus entry mediator as a negative regulator of T cell-mediated responses. J. Clin. Invest. 115, 711-717 (2005).
check_url/53046?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Rahn, E., Thier, K., Petermann, P., Knebel-Mörsdorf, D. Ex Vivo Infection of Murine Epidermis with Herpes Simplex Virus Type 1. J. Vis. Exp. (102), e53046, doi:10.3791/53046 (2015).

View Video