Summary

Вывод для взрослых фибробластов человека и их прямое преобразование в расширения нейронной клетки-предшественники

Published: July 29, 2015
doi:

Summary

Генерация индуцированные плюрипотентные стволовые клетки обеспечивает увлекательные перспективы вывода аутологичных трансплантаций. Тем не менее, прогресс через состояние плюрипотентных и кропотливой повторного дифференцирования еще мешает клиническую перевод. Здесь мы опишем вывод взрослых фибробластов человека и их прямое преобразование в индуцированных клеток нервной предшественников и последующего дифференциации в нейронных линий.

Abstract

Генерация индуцированные плюрипотентные стволовые клетки (ИПСК) из взрослых фибробластов кожи и последующего дифференцировке в соматических клетках обеспечивает увлекательные перспективы вывода аутологичных трансплантаций, что обойти гистосовместимости барьеры. Тем не менее, прогресс через состояние плюрипотентных и последующей полной дифференцировки в желаемые линий остается препятствием для клинического перевод технологии IPSC из-за связанных опухолевого потенциала и геномной нестабильности. В последнее время мы и другие показали, что соматические клетки не могут быть преобразованы только в ИПСК, но и в разных типах соматических мультипотентными стволовых клеток с помощью определенных факторов, таким образом, обходя прогрессирование через плюрипотентных государства. В частности, прямое преобразование человеческих фибробластов в индуцированные нервные клетки-предшественники (iNPCs) предвещает возможность нового источника аутологичных клеток для различных применений, таких как замена клеток, заболевания моделированияи скрининг лекарств. Здесь мы опишем изоляции взрослого человека первичных фибробластов по биопсии кожи и их эффективного прямого преобразования в iNPCs своевременной ограниченной экспрессии Oct4, Sox2, Klf4, а также с-Мус. Sox2-положительных нейроэпителиальные колонии появляются после 17 дней индукции и INPC линии могут быть установлены эффективно моноклональных изоляции и расширения. Точная регулировка вирусной множественности инфекции и добавок ингибирующий лейкоз фактор во время фазы индукции представляют критические факторы для достижения эффективности преобразования до 0,2%. До сих пор, конкретного пациента INPC линии может быть расширен более чем на 12 проходов и равномерно отображения морфологические и молекулярные особенности нейронных стволовых клеток / клеток-предшественников, таких как выражения нестин и Sox2. Линии INPC могут быть дифференцированы в нейроны и астроциты, о чем судили путем окрашивания против TUJ1 и GFAP, соответственно. В заключение, мы сообщают надежные протокол для вывода и тяжелаяПреобразование КТ фибробластов человека в стабильно расширяющихся нейронных клеток-предшественников, которые могли бы обеспечить сотовой источник биомедицинских приложений, таких как аутологичных клеток нервной замены и моделирования заболевания.

Introduction

В 2006 году Яманака и его коллеги смогли показать, впервые возможность перепрограммирования соматических клеток в плюрипотентных государства 1. Это дедифференцировка было достигнуто гиперэкспрессией четырех факторов транскрипции Oct4, Sox2, Klf4 и C-Мус в мышиных фибробластов. Сформированные так называемые индуцированные плюрипотентные стволовые клетки (ИПСК) показывают функциональную эквивалентность эмбриональных стволовых клеток (ЭСК) и, таким образом, могут быть дифференцированы во все типы клеток взрослого организма. Один год спустя перепрограммирования для ИПСК также может быть достигнуто за фибробластов человека 2. Эксперименты на животных моделях показывают, что Ipsc-клеток, полученных как правило, могут быть использованы для клеточной терапии замены, например, в болезни Паркинсона (PD) 3-5. Тем не менее, некоторые ограничения, связанные с использованием ИПСК представляют препятствия для полной реализации их терапевтического потенциала. Прежде всего, перепрограммирования клеток в плюрипотентные состоянии и последующееКонтроль качества, как правило, отнимает много времени и неэффективный процесс уступая в обширных и, таким образом, дорогостоящие процедуры для культивирования клеток. Во-вторых, иПСК должны быть повторно дифференцировать в нужный тип клеток, представляющих интерес до биомедицинского применени, и вероятность остаточных клеток плюрипотентных в дифференцированной популяции таит значительную онкогенного потенциала и, таким образом, показывает высокий риск после трансплантации клеток 6. В-третьих, процесс перепрограммирования, как правило, достигается путем индукции факторы перепрограммирования lenti- или ретровирусной инфекции. Интеграция этих вирусов в геном хозяина, может привести к инсерционного мутагенеза и / или неконтролируемого реактивации трансгенов 7,8. Номера интегративные системы были разработаны для обеспечения факторы перепрограммирования в клетки-мишени, которые минимизируют риск инсерционного мутагенеза и трансгенной реактивации. Примерами таких трансгенных свободной подходов перепрограммирование клеток с использованием не-интеграцииАдено или вирус Сендай 9,10 векторы на основе ДНК 11 или применение методов ДНК-бесплатно, как трансфекции синтетического мРНК 12 или трансдукции рекомбинантных белков 13,14. Другой перспективный метод для вывода трансгенной свободной IPSC является использование LoxP модифицированный лентивирусный перепрограммирования конструкций и последующего удаления трансгенов, используя систему 15,16 рекомбинации Cre-LoxP ДНК.

Более простой подход к генерации нервных клеток для клеточной терапии замены представляет собой прямое преобразование фибробластов в постмитотических нейронов 17-20. Vierbuchen др. Сообщили, что избыточная экспрессия транскрипционных факторов Ascl1, Brn2 и Myt1l результаты в поколение 20% нейронов из мышиных фибробластов 17. В 2011 году было показано, что этот же три фактора транскрипции в сочетании с гиперэкспрессией NeuroD1 включить трансдифференцировки фибробластов человека в NeuРОНС 19. Нейроны человека индуцированных может также быть получены путем избыточной экспрессии Ascl1 и Ngn2 под двойной SMAD- и GSK3β- торможения 20. Примечательно, прямое преобразование фибробластов в нейроны генерирует непролиферативная, постмитотические клеточной популяции, которые не позволяют дальнейшее расширение и Biobanking.

Недавно прямого преобразования фибробластов в пролиферации клеточной популяции нейронных стволовых / клеток-предшественников сообщается 21-26. Для ясности, все эти типы клеток будет называться индуцированных нервных клеток-предшественников (iNPCs) в этом докладе. Хан и др. Сверхэкспрессируется Brn4, Sox2, с-Мус и Klf4 генерировать iNPCs. Как и их коллеги нервных стволовых клеток, полученных из тканей либо основной или плюрипотентных клеток эти iNPCs являются tripotential и может быть дифференцированы в нейроны, астроциты и олигодендроциты 21. Наша группа сообщила немного другой протокол преобразования участием сверхэкспрессию Sox2, Klf4И с-Myc и Oct4 индуцированных выражение только 5 дней. При таком подходе мы могли бы генерировать стабильно пролиферирующих iNPCs из мышиных эмбриональных и взрослых фибробластов, которые обладают полной молчание перепрограммирование факторы 22. В отличие от ИПСК, iNPCs не проявляют онкогенного потенциала после трансплантации 27. Мы успешно использоваться превращают клетки в животной модели демиелинизации миелиновых, дефицитных крыс, демонстрируя, что iNPCs клинически полезны 22. До тех пор, пока НПС может быть генерируется только из плюрипотентных стволовых клеток или первичной нервной ткани 28-32. iNPCs стабильно расширяемая клетки, которые могут быть криоконсервированных и способны дифференцироваться в нейроны, астроциты и олигодендроциты. Много усилий было сделано, чтобы адаптировать прямой протокол преобразования из мыши с клетками человека 23,26,33,34. В 2012 году она была опубликована, что избыточная экспрессия одного фактора Sox2 в фибробластах достаточно для создания мышиных и человеческих iNPCs <sдо 33>. Авторы сообщили поколение человека из эмбриональных iNPCs крайней плоти фибробластов и характеризуется их окрашиванием против Sox2 и нестин. Тем не менее, клетки-мишени, используемые для перепрограммирования представляют собой очень специфический тип клеток, которые не будут доступны в клинической практике, и не было никакой функциональной характеристики преобразованных клеток трансплантации в животной модели выполнена. Более недавняя публикация описывает генерацию нервных клеток-предшественников из ограниченных фетальных фибробластов человека избыточной экспрессией Sox2, с-Мус и либо Brn2 или Brn4 34. Сформированные клеточные линии показали самообновлению мощности и может быть дифференцированы в различные типы терминалов нейронов. Тем не менее, использование эмбриональных фибробластов является неблагоприятным, так как эти клетки являются гетерогенной происхождения и никто не может исключить наличие остаточной например, нервного гребня стволовых клеток в препаратах. В 2014 году Чжу и др. Сообщили прямое преобразование взрослого человека и неоНатальные фибробластов в tripotential нейронных клеток-предшественников сверхэкспрессией Sox2 вместе с Oct4 или Oct4 в покое и добавлением небольших молекул в клеточной культуральной среде. Следует отметить, что на основе их исследования Sox2 было недостаточно, чтобы вызвать прямое преобразование 26. Совсем недавно, Лу и др. Сообщили, что избыточная экспрессия Яманака факторы Oct4-, Sox2-, Klf4-, с-Мус вирусом Сендай в течение 24 ч и последующей инактивацией вируса увеличением температуры приводит к генерации расширяемой tripotential нервной клетки-предшественники 23. В заключение, хотя протоколы преобразования опубликованных для человеческих клеток до сих пор имеют в общем сверхэкспрессии по меньшей мере одного или более факторов YAMANAKA, часто в своевременной ограниченным образом, нет четкое указание минимальных молекулярных факторов, необходимых для управления прямой преобразование в iNPCs. Своевременно ограничено избыточная экспрессия Oct4 либо путем генетических средств, трансфекции с синтетическим мРНК, или сELL проникающий белок вместе с конститутивной экспрессии Sox2, КФК-4 и С-Мус не приводят к стабильным человека линий INPC еще. Таким образом, применение вируса Сендай для сверхэкспрессии все факторы YAMANAKA и своевременно ограничить свою активность путем термической инактивации вируса 23 вместе с оптимизированных условиях нейронной медиа индукционных 22,31 представляет собой предпочтительный стратегии до сих пор.

Несколько исследований показывают, сотовый функциональность НСК или их дифференцированных коллегами в различных моделях болезни животных. Нервные клетки-предшественники из человеческих плюрипотентных стволовых клеток были пересажены в мышиных моделях заболевания нейровоспалительных склероза 35,36. Применимость чЭСК полученных нервных клеток-предшественников в EAE (экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит) -mice был впервые показан в 2008 году 35. Мультипотентные нервные клетки-предшественники вводили в желудочки мозга мыши, и результат трансплантацииред в уменьшении клинических признаков ЭАЭ. Ким и др. Генерируются олигодендроглиальным прекурсоров из ЭСК и пересадить тех интрацеребровентрикулярно в EAE-мышей. Хотя пересадка не проживет больше 10 дней, мышей показали значительное улучшение неврологической функции и снижение провоспалительных иммунных клеток в белом веществе 36. Стволовые клеточной терапии применяется также для доклинического адресности болезни Паркинсона, как НПС может быть успешно применен в соответствующих моделях животных. Для этого клетки-предшественники были либо получены из эмбриональной ткани головного мозга 37 дифференцированной из плюрипотентных стволовых клеток или 38-40 мезенхимальных стволовых клеток 41 были использованы. В 2012 году мы показали, что мыши iNPCs способны производить протеолипидного белок, основной компонент миелина белок, после трансплантации в мозг миелин-дефицитных (MD) крыс 22. К этому доказательством правильности принципа эксперимента терапевтический applicabilность iNPCs был, во-первых доказано, и вскоре подтвердил и в другом исследовании 32. Тем не менее, весь потенциал терапевтического использования человеческих iNPCs остается изучить.

Здесь мы показывают надежную и комплексного процесса (I) выводе человека из первичных клеток взрослых пациентов через биопсии кожи, (II) прямое преобразование фибробластов человека в состоянии нервной предшественников и (III) способность iNPCs быть дифференцированы в нейрональный и глиальные линий. Использование этого протокола позволит ускорить генерацию аутологичных клеток человека для терапевтического применения.

Protocol

Человеческие фибробласты, используемые в этом исследовании, были получены от удара кожа биопсии после получения информированного согласия и разрешение этического комитетом по этике Университета Вюрцбурга, Германия (этический доклад не: 96/11 от 10.06.2011). 1. Удар биопсии …

Representative Results

Здесь мы представляем описание интегрированного процесса, что позволяет поколение индуцированных нервных клеток-предшественников (iNPCs) из фибробластов человека, которые были получены с помощью биопсии удар с кожи в течение менее чем 8 недель (рис 1). Пациент-iNPCs, специфические ?…

Discussion

Здесь мы показываем, изоляцию и прямое преобразование фибробластов человека в расширяемых трансгенных клеток, свободных нервной предшественников и их дифференцированное потомство как предполагаемого основе для сотового-заместительной терапии или применения в скрининге лекарствен…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы хотели бы поблагодарить всех членов Stem Cell и регенеративной медицины группы университета Вюрцбурга за полезные предложения и Мартина Гебхардт, а также Хайке Arthen за отличную техническую поддержку. Эта работа была поддержана грантами от Deutsche Forschungsgemeinschaft DFG (ED79 / 1-2), немецкого министерства образования и научных исследований BMBF (01 GN 0813), баварский исследовательской сети индуцированных плюрипотентных стволовых клеток "forIPS" и "Stiftung Sibylle Ассмуса ". На рисунке 1 было получено с использованием Servier Medical Art, доступные из www.servier.com.

Materials

Astrocyte media ScienCell 1801
B27 LifeTechnologies 17504-044
BDNF Peprotech 450-02
Biopsy Punch pfm medical 48301
cAMP Sigma A6885
CHIR99021 Axon medchem 1386
Collagenase Type2 Worthington Biochemical LS004177
Dispase PAN  P10-032100
DMEM LifeTechnologies 41966-029
DMEM F12 LifeTechnologies 11320-033
DMSO Roth 4720
DPBS LifeTechnologies 14190-094
EGF Life Technologies PHG0313
FCS Biochrom AG 50115
GDNF Peprotech 450-10
Gentamicin Sigma G1397
GFAP-antibody Dako Z0334
GlutaMAX LifeTechnologies 35050-038
hLIF Peprotech 300-05
Insulin Seralab GEM-700-112-P
Ki67-antibody NeoMarkers RM-9106-S
L-Glutamine LifeTechnologies 25030-024
Laminin Sigma L2020
N2 LifeTechnologies 17502-048
Nestin-antibody R&D Systems MAB1259
Neurobasal LifeTechnologies 21103-049
Non-essential amino acids LifeTechnologies 11140-050
NSC freezing media Sigma C6295
Oct4-antibody Santa Cruz sc9081
Pax6-antibody Covance PRB-278P
SB431542 Invivogen inh-sb43
Sendai virus: CytoTune Sendai Reprogramming Kit  LifeTechnologies A1378001
Sodiumpyruvate Life Technologies 11360-039
Sox1-antibody R&D Systems AF3369
Sox2-antibody R&D Systems MAB2018
T3 Santa Cruz sc-205725
Trypsin/EDTA Life Technologies 15400-054
TUJ1-antibody Covance MMS-435P-250
Vitamin C Sigma A4544
Y27632 Calbiochem CAS 146986-50-7
β-Mercaptoethanol LifeTechnologies 21985023

References

  1. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126 (4), 663-676 (2006).
  2. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  3. Cai, J., Yang, M., Poremsky, E., Kidd, S., Schneider, J. S., Iacovitti, L. Dopaminergic neurons derived from human induced pluripotent stem cells survive and integrate into 6-OHDA-lesioned rats. Stem Cells Dev. 19 (7), 1017-1023 (2010).
  4. Kriks, S., et al. Dopamine neurons derived from human ES cells efficiently engraft in animal models of Parkinson’s disease. Nature. 480 (7378), 547-551 (2011).
  5. Rhee, Y. H., et al. Protein-based human iPS cells efficiently generate functional dopamine neurons and can treat a rat model of Parkinson disease. J Clin Invest. 121 (6), 2326-2335 (2011).
  6. Okita, K., Ichisaka, T., Yamanaka, S. Generation of germline-competent induced pluripotent stem cells. Nature. 448 (7151), 313-317 (2007).
  7. Soldner, F., et al. Parkinson’s disease patient-derived induced pluripotent stem cells free of viral reprogramming factors. Cell. 136 (5), 964-977 (2009).
  8. Sommer, C. A., Stadtfeld, M., Murphy, G. J., Hochedlinger, K., Kotton, D. N., Mostoslavsky, G. Induced pluripotent stem cell generation using a single lentiviral stem cell cassette. Stem Cells. 27 (3), 543-549 (2009).
  9. Zhou, W., Freed, C. R. Adenoviral gene delivery can reprogram human fibroblasts to induced pluripotent stem cells. Stem Cells. 27, 2667-2674 (2009).
  10. Fusaki, N., Ban, H., Nishiyama, A., Saeki, K., Hasegawa, M. Efficient induction of transgene-free human pluripotent stem cells using a vector based on Sendai virus, an RNA virus that does not integrate into the host genome. Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci. 85, 348-362 (2009).
  11. Montserrat, N., et al. Simple generation of human induced pluripotent stem cells using poly-beta-amino esters as the non-viral gene delivery system. J Biol Chem. 286 (14), 12417-12428 (2011).
  12. Warren, L., Nu, Y., Wang, J., Guo, X. Feeder-free derivation of human induced pluripotent stem cells with messenger RNA. Sci Rep. 2, 657 (2012).
  13. Bosnali, M., Edenhofer, F. Generation of transducible factors. Biol Chem. 389 (7), 851-861 (2008).
  14. Zhou, H., et al. Generation of induced pluripotent stem cells using recombinant proteins. Cell Stem Cell. 4 (5), 381-384 (2009).
  15. Awe, J. P., et al. Generation and characterization of transgene-free human induced pluripotent stem cells and conversion to putative clinical-grade state. Stem Cell Res Ther. 4 (4), 87 (2013).
  16. Kadari, A., et al. Excision of viral reprogramming cassettes by Cre protein transduction enables rapid, robust and efficient derivation of transgene-free human induced pluripotent stem cells. Stem Cell Res Ther. 5 (2), 47 (2014).
  17. Vierbuchen, T., Ostermeier, A., Pang, Z. P., Kokubu, Y., Südhof, T. C., Wernig, M. Direct conversion of fibroblasts to functional neurons by defined factors. Nature. 463 (7284), 1035-1041 (2010).
  18. Caiazzo, M., et al. Direct generation of functional dopaminergic neurons from mouse and human fibroblasts. Nature. 476 (7359), 224-227 (2011).
  19. Pang, Z. P., et al. Induction of human neuronal cells by defined transcription factors. Nature. 476 (7359), 220-223 (2011).
  20. Ladewig, J., et al. Small molecules enable highly efficient neuronal conversion of human fibroblasts. Nat Methods. 9 (6), 575-578 (2012).
  21. Han, D. W., et al. Direct reprogramming of fibroblasts into neural stem cells by defined factors. Cell Stem Cell. 10 (4), 465-472 (2012).
  22. Thier, M., et al. Direct conversion of fibroblasts into stably expandable neural stem cells. Cell Stem Cell. 10 (4), 473-479 (2012).
  23. Lu, J., et al. Generation of integration-free and region-specific neural progenitors from primate fibroblasts. Cell Rep. 3 (5), 1580-1591 (2013).
  24. Lujan, E., Chanda, S., Ahlenius, H., Südhof, T. C., Werning, M. Direct conversion of mouse fibroblasts to self-renewing, tripotent neural precursor cells. Proc Natl Acad Sci USA. 109 (7), 2527-2532 (2012).
  25. Tian, C., et al. Direct conversion of dermal fibroblasts into neural progenitor cells by a novel cocktail of defined factors. Curr Mol Med. 12 (2), 126-137 (2012).
  26. Zhu, S., et al. Small molecules enable OCT4-mediated direct reprogramming into expandable human neural stem cells. Cell Res. 24 (1), 126-129 (2014).
  27. Hemmer, K., et al. Induced neural stem cells achieve long-term survival and functional integration in the adult mouse brain. Stem Cell Reports. 3 (3), 423-431 (2014).
  28. Conti, L., et al. Niche-independent symmetrical self-renewal of a mammalian tissue stem cell. PLoS Biol. 3 (9), e283 (2005).
  29. Elkabetz, Y., Panagiotakos, G., Al Shamy, ., Socci, G., Tabar, N. D., Studer, V., L, Human ES cell-derived rosettes reveal a functional distinct early neural stem cell stage. Genes Dev. 22 (2), 152-165 (2008).
  30. Koch, P., Opitz, T., Steinbeck, J. A., Ladewig, J., Brüstle, O. A rosette-type self-renewing human ES cell-derived neural stem cell with potential for in vitro instruction and synaptic integration. Proc Natl Acad Sci USA. 106 (9), 3225-3230 (2009).
  31. Li, W., et al. Rapid induction and long-term self-renewal of primitive neural precursors from human embryonic stem cells by small molecule inhibitors. Proc Natl Acad Sci USA. 108 (20), 8299-8304 (2011).
  32. Reinhardt, P., et al. Derivation and expansion using only small molecules of human neural progenitors for neurodegenerative disease modeling. PLoS One. 8 (3), c59252 (2013).
  33. Ring, K. L., et al. Direct reprogramming of mouse and human fibroblasts into multipotent neural stem cells with a single factor. Cell Stem Cell. 11 (1), 100-109 (2012).
  34. Zou, Q., et al. Direct conversion of human fibroblasts into neuronal restricted progenitors. J Biol Chem. 289 (8), 5250-5260 (2014).
  35. Aharonowiz, M., Einstein, O., Fainstein, N., Lassmann, H., Reubinoff, B., Ben-Hur, T. Neuroprotective effect of transplanted human embryonic stem cell-derived neural precursor in an animal model of multiple sclerosis. PLoS One. 3 (9), e3145 (2008).
  36. Kim, H., et al. Immunomodulation by transplanted human embryonic stem cell-derived oligodendroglial progenitors in experimental autoimmune encephalomyelitis. Stem Cells. 30 (12), 2810-2829 (2012).
  37. Kondoh, T., Pundt, L. L., Blount, J. P., Conrad, J. A., Low, W. C. Transplantation of human fetal tissue from spontaneous abortions to a rodent model of Parkinson’s disease. Cell Transplant. 5 (1), 69-75 (1996).
  38. Takagi, Y., et al. Dopaminergic neurons generated from monkey embryonic stem cells function in a Parkinson primate model. J Clin Invest. 115 (1), 102-109 (2005).
  39. Kikuchi, T., et al. Survival of human induced pluripotent stem cell-derived midbrain dopaminergic neurons in the brain of a primate model of Parkinson’s disease. J Parkinson’s Dis. 1 (4), 395-412 (2011).
  40. Kirkeby, A., et al. Generation of regionally specified neural progenitors and functional neurons from human embryonic stem cells under defined conditions. Cell Rep. 1 (6), 703-714 (2012).
  41. Dezawa, M., et al. Specific induction of neuronal cells from bone marrow stromal cells and application for autologous transplantation. J Clin Invest. 113, 1701-1710 (2004).
  42. Izrael, M., et al. Human oligodendrocytes derived from embryonic stem cells: Effect of noggin on phenotypic differentiation in vitro and on myelination in vivo. Mol Cell Neurosci. 34 (3), 310-323 (2007).
  43. Cassady, J. P., et al. Direct lineage conversion of adult mouse liver cells and B lymphocytes to neural stem cells. Stem Cell Rep. 3 (6), 948-956 (2014).
  44. Castano, J., et al. Fast and efficient neural conversion of human hematopoietic cells. Stem Cell Rep. 3 (6), 1118-1131 (2014).
  45. Thoma, E. C., et al. Chemical conversion of human fibroblasts into functional Schwann cells. Stem Cell Rep. 3 (4), 539-547 (2014).

Play Video

Cite This Article
Meyer, S., Wörsdörfer, P., Günther, K., Thier, M., Edenhofer, F. Derivation of Adult Human Fibroblasts and their Direct Conversion into Expandable Neural Progenitor Cells. J. Vis. Exp. (101), e52831, doi:10.3791/52831 (2015).

View Video