エストロゲンとマイクロRNAの両方を介したシグナル伝達分子は、乳がんの発展と成長において重要である。エストロゲンは転写因子であるエストロゲン受容体を活性化する。多くの転写因子は、マイクロRNAの発現を調節することができ、エストロゲン調節マイクロRNAは、異なる大規模な技術を用いてプロファイリングすることができる。
エストロゲンは乳腺発達および乳癌進行において重要な役割を果たしている。これは、に結合し、エストロゲン受容体(ERの)を活性化することによってその機能を媒介ERαおよびERβ。 ERαは、しばしば、乳癌においてアップレギュレートし、乳癌細胞の増殖を駆動する。 ERは、転写因子として機能し、遺伝子発現を調節する。タンパク質をコードする遺伝子のERαの規制が十分に確立されているのに対し、マイクロRNA(miRNAを)の非コードの、その規制が少ない探検です。 miRNAは、それらの翻訳を阻害すること又はそれらのmRNAを分解する遺伝子の転写後調節において主要な役割を果たす。 miRNAは、癌遺伝子や癌抑制として機能することができ、また、バイオマーカーを期待されている。利用可能なmiRNAアッセイの中で、マイクロアレイおよび定量的リアルタイムポリメラーゼ連鎖反応(qPCR)は、広範囲のmiRNAレベルを検出および定量するために使用されている。乳癌、目にエストロゲンシグナル伝達によって調節されるmiRNAを同定するためにERα陽性乳癌細胞株をμParafloマイクロ流体マイクロアレイおよびデュアル標識プローブ低密度アレイの両方を使用して、エストロゲンの活性化の前後で比較したEIR発現。結果は、シアニン色素系および二重標識プローブベースの化学の両方を適用し、特定の定量PCRアッセイを用いて検証した。さらに、時間ポイントアッセイは、経時的に規則を識別するために使用した。本研究で使用したmiRNAアッセイアプローチの利点は、それがさらに制限されたサンプル量で、多数の試料中の成熟miRNA規制の高速スクリーニングを可能にすることである。特定の細胞培養のための条件とエストロゲン治療、生物学的および技術的反復、および大規模なスクリーニングを含むレイアウトは、別々の技術を使用して、詳細な確認をした後、miRNAの規制のロバストな検出が保証され、偽陽性やその他の成果物を除去します。しかし、変異または未知のmiRNA、またはプライマリおよび前駆体転写産物のleveの規制Lは、検出されません。ここで紹介する方法は、エストロゲン媒介miRNA調節の徹底的な調査を表しています。
エストロゲンは乳腺発達の間には重要であるホルモンです。エストロゲンはまた、乳癌1の開発、保守、リスク、および治療 において重要な役割を果たしている。エストロゲンは転写因子であり、特定の標的遺伝子を調節するのERへの結合によってその機能を発揮する。 2つの受容体の変異体のうち、ERαは乳癌細胞のエストロゲン依存性増殖に必須である。ほとんどの乳癌は、ERα陽性であり、成長のためのエストロゲンに依存します。これはエストロゲンシグナル伝達およびホルモン受容体陽性乳癌の治療のため、ERα標的になった。 ERαの基本的なメカニズムを理解することは、治療成績を向上させ、治療に対する抵抗性を克服し、乳がんが発展方法を理解することが重要です。
miRNAは、原因転写後遺伝子調節にその大きな影響を細胞機能において重要な役割を果たしている。 miRNAは、19〜24ヌクレオチド短く、一本鎖、最初にプライマリのmiRNA転写産物(プリmiRNA)にRNAポリメラーゼIIによって転写される非コードRNA。それらは、短ヘアピン前駆体のmiRNA(プレmiRNA)へのDroshaにより核内で処理された後、ダイサーによって処理され、細胞質中の成熟miRNAを形成するために一本鎖に分離される。一本鎖の成熟miRNAがRISC複合体を形成するアルゴノートタンパク質に転写される。次いで、miRNAは翻訳を遮断または標的mRNA を分解することによって2転写後調節をもたらす、標的mRNAの3'-非翻訳領域(3'-UTR)とハイブリダイズすることができる。
によるエストロゲンおよびmiRNAの両方が正常であるか破壊されたエストロゲンシグナル伝達に関連するmiRNAを同定する、腫瘍の進行に果たす重要な役割に発展の我々の理解を高め、乳癌の治療を改善するために重要である。 ERαは、タンパク質をコードする遺伝子を制御する方法を十分に理解、拡張がありますがとRNAの規制非コードの詳細は徹底的に調査されていない。乳癌細胞株におけるmiRNAのERα調節を解明することを目的と初期の研究では、同一の細胞株は3-6分析された場合であっても、矛盾する結果が得られている。これは、様々な治療、生物学的な変形、異なる技術の使用、およびmiRNAの小さいサイズはそれらを分析するために挑戦させるという事実の結果であってもよい。ここで、変動及び方法の成果物用のコントロールプロトコルが記述されている。
miRNAはエストロゲンによって調節されるかを識別するために、ERα活性の明確に定義された乳癌モデルのプロファイリングは、最初のステップである。いくつかの細胞株は、臨床的な乳癌の大多数と同様のエストロゲンに依存するヒトERα陽性乳癌腫瘍から生成されている。 ERαおよびその下流標的の発現を含むこれらの細胞株のうちの2つT47DおよびMCF7の分子特性、プロゲステロンホルモン受容体(PR)、膜受容体HER2の発現の欠如は、エストロゲン応答及び管腔の上皮分化遺伝子の発現とともに、乳房腫瘍7-10の管腔サブタイプのモデルは、それらに適したものにする。 17β-エストラジオール(E2)は、エストロゲンの主要な形態であり、ERαの転写活性化のための最適な濃度および時点は、複数の研究において特徴付けられている。このプロトコルでは24時間、10nMのE2処理は、乳癌細胞におけるERα1活性のためのモデルとして使用され、T47D及びMCF7れる。また、時間依存性のmiRNAの規制は、具体的には、例えば 1〜72時間の時間間隔で分析することができる。
第二に、分析のmiRNAは、その短いサイズに部分的には、別々の課題があります。定期的なグアニジンthiocyanate-phenol/chloroform/isopropanolたRNA沈殿を行った場合、またはSTれるときmiRNAは良く、全RNA調製に保持されていませんandard列精製は使用されている。特別な措置は維持またはRNAの小さな部分を濃縮するために注意する必要がある。遠心分離(-80°C)の前に温度を下げ、イソプロパノールの体積を増大し、70%エタノールでの洗浄を省略することにより、miRNAの保持は、沈殿中に向上させることができる。あるいは、miRNAを含むトータルRNAの高品質と堅牢調製のための特定の列および緩衝液を用いることができる。また、分析の自身のために、彼らの短いサイズは、課題を作成します。マイクロアレイ、定量PCR、次世代シーケンシング:ゲノムワイドなmiRNAスクリーニングのために、3つの一般的な中から選択する技術をプロファイリングmiRNAがあります。各技術は、アーチファクトを導入する別のリスクにそれぞれ、複数の異なるプラットフォームを使用して行うことができ、異なるサンプル調製が必要である。 miRNAのマイクロアレイでは、スライドは、オリゴヌクレオチドの数千でスポットまたは合成される。これらのオリゴヌクレオチドはプローブとして使用され、プローブの各々sが、特定のmiRNA配列にハイブリダイズするように設計されている。この研究で実行されるようにマイクロアレイのためのサンプル調製は、最初のmiRNAのために豊かにしてからのmiRNAの上のCy5およびCy3ラベリングを紹介します。マイクロアレイは、同時に多数の遺伝子の相対的発現レベルを観察する機会を与え、迅速かつ多数の試料をスクリーニングするのに適しているが、唯一のマイクロアレイ上に配列が存在し、分析することができ、 例えば、変化を検出しないであろう未知のまたは変異miRNAは。このプロトコルで実行されるようなマイクロアレイ分析はまた、分析用試料当たりの全RNA、比較的大量の、約5μgを必要とする。低密度のqPCR miRNAプロファイリングは、少ない材料(700 NG /サンプルおよび複製)を必要とし、miRNAの検出および定量化を可能にします。転写レベルを決定することができる、および量は、絶対量又は相対量であることができる。 qPCR分析は、第ここでループを用いて、cDNAへのmiRNAの変換を必要とするだけ成熟したmiRNAの解析を確実にそれぞれの特定のmiRNAのためのプライマー。これは、miRNA特異的順方向プライマーおよびループ配列に相補的なユニバーサルリバースプライマーを用いて増幅することができる、より長いテンプレートを生成し、その特異性について二重標識プローブの包含を抱くことができる。定量PCRは、数百のmiRNAが、各々のウェル11内の個々のプライマー対を有する1つまたはいくつかの384ウェルプレートを用いて並行して検出することができる低密度形式で使用することができる。次世代シークエンシングは、一方では、試料中の全てのRNAが11を配列決定することができるように新規な変異または編集されたmiRNAの発見を可能にするこれらの技術のみである。しかしながら、この技術は、低分子RNAを豊かにし、それらのサンプル間の相対的な発現レベルを調節する後続の強化されたリスクにリンカーライゲーションおよび精製のいくつかのステップを使用して小RNAライブラリーを生成するために複数のステップを必要とする。それはまた、有意なbioinformatiを必要とCS分析。 miRNAプロファイリングのための様々な技術を考えると、最も適切な方法は、アプリケーションによって異なります。材料は比較的豊富で、関心は既に知られているmiRNAの発現差を定義するときにマイクロアレイが最も適しています。試料の限られた量が使用可能であり、低発現miRNAの高感度が要求される場合に、低密度のqPCRアレイが最も適している。配列決定により、変異した未知のmiRNA、またはmiRNAの異なるアイソフォームの分析が必要な場合に最適です。
乳癌におけるエストロゲン制御されたmiRNAの研究では、2つのモデル細胞株は、大量のRNAは、容易に入手可能であるT47D及びMCF7を、使用されている。各細胞株は、治療の技術的反復において、それぞれ異なる通路を使用して、複製された細胞培養物中で分析した。これは再現性、ERα調節性miRNAの堅牢な検出を可能にする。相対的なmiRNAの発現レベルは、両方のmiRNAマイクロアレイを用いて比較した二重標識プローブ – 低密度アレイ(DLP-LDA)とシアニン色素とDLPの化学的性質の両方を使用して、特定の定量PCRの結果を検証しました。 miRNAの規制はその後さらにエストロゲン誘導規制からランダムまたは概日変動を差別化し、二次的効果から主な効果を示すことができます時間をかけてその正確なレギュレーションを定義するために、時系列で分析した。 ERαのクロマチン結合の研究とバイオインフォマティクスの比較は二次的影響に対する原発の分化をさらに助けることができます。アッセイは、それが24時間のE2処理タンパク質をコードする転写産物の後に容易に調節されたが、成熟したmiRNAは1に影響を与えていなかったことを確立することができたのmiRNA規制の信頼できる評価が得られた。しかしながら、選択されたmiRNAの1の時系列分析で実証されるように、miRNAは後述の時点で調節されることが可能である。詳細はさらに検討する必要があり、ここに提示プロトコルはローバスを提供乳癌細胞株における成熟miRNAのホルモン調節を研究するためのtの方法。
乳癌細胞におけるmiRNAのホルモン調節する機構を決定することは、この疾患を理解するためのプラットフォームを提供することができ、乳癌の潜在的な治療を提供することができる。ホルモン作用のための最適条件を提供するために、これらの細胞を培養することは非常に重要である。ここで、目的のホルモン(エストロゲン)が治療前に除外し、E2の最適用量について説明したが、治療中に適当な時間のために使用されたことをしたことを確実にするプロトコル。他のホルモンおよび成長因子の効果は徐々に血清レベルを低下させ、そのホルモン、サイトカインおよび増殖因子のほとんどが取り除かれているFBSでDCC-FBSを用いて最小限に保った。フェノールレッドを含まない培地は、さらに、フェノールレッドがエストロゲン活性を有し、細胞株20,21内の特定の機能に影響することが報告されていることを考えると、他の非ホルモンの影響を最小にするために使用した。ホルモンに対する細胞の曝露時間は非常に重要である。遺伝子のエストロゲンに関連する調節のために、以前の24 hrexposureは、乳癌細胞1,18における直接の標的遺伝子の有意な応答を生じることが示されている。 miRNAは、RNAポリメラーゼIIによって転写されるので、mRNAのように、これはまた、miRNAの直接の調節を検出するための適切な時点であると考えられる。なお、これらのmiRNAは、乳癌細胞におけるこれらの公知のER標的の発現にどのように影響する場合には、まだ決定されていない。
miRNA発現プロファイリングが原因のmiRNA、成熟miRNA配列は、プリmiRNAおよびプレmiRNAでも見つけることができるという事実の相対的なサイズが小さい挑戦すること、およびため、そのGC含量22内の不均一性のことができます。いくつかのプロファイリング技術および化学物質はこの困難を克服するために使用されてきた。これらの中で、マイクロアレイおよびqPCR分析の異なるアプローチ( 図2)である。マイクロアレイは広く全ゲノム肛門のために受け入れているがysis、それは偽陰性を提供することができ、化学から印刷技術23に至るまで、可能なプラットフォーム間の相違が存在する。 mRNA転写物の何万と比較して、何千もカウントされる比較的少数のmiRNA遺伝子を解析する際にも、正規化処理は課題を提示する。定量PCRは、一方では、より感受性であり、少数の遺伝子があるとみなされるべきであるときに良好に適用される。プレートごとに1つの技術的反復で、大きな384ウェルプレートにおいて実施ところが、複数のプレートは、分析が高価になり、各試料について分析する必要がある。また、我々の手で、より多くの偽陰性の結果は、マイクロアレイと比較して、DLP-LDA分析を用いて得た。成熟miRNA配列がプリmiRNAおよびプレmiRNA配列中に存在することを考えると、それはPCR法24を用いてこれらの転写物を区別するために重要である。 DLPプローブは、事前のmiRNA、およびSPのためにも利用できますecificプライマーはまた、シアニン染料定量PCR技術を用いて、異なる変異体の成熟または前駆体を排除するように設計することができる。
定量PCRは、プロファイリング結果から発現差の検証のための黄金の標準です。定量PCRの有効性は、しかしながら、RNA抽出、RNAの完全性(品質)、cDNA合成、プライマー設計、検出方法(化学)、およびデータ正規化のための1,22,25参照遺伝子を含むいくつかのパラメータに依存する。短いmiRNA配列の長さがはるかに別のプライマー設計のための余地を与えないので、miRNAの分析のためのプライマー設計のための選択肢は非常に限られており、唯一つのプライマーは、この短い配列内に保持することができる。従って、 図2に示されるような別の操作が必要とされている。技術的反復は、増幅方法および使用されるプロセスの堅牢性を検証するために重要である。生物学的複製は、一般的な生物学的variatioの表現のために必要とされるnは、リガンド処理し、細胞内で見られた効果が再現可能であることを示すために変数の応答を含む。我々の経験に基づいて、細胞培養の間のmiRNA発現の変動が発生する可能性があります。通常、これらの違いは1.3倍未満であり、その平均値とそれに対応するSDは、自然と技術の変化を識別します。この変化は、細胞密度および細胞機能が通路に通路から変更される可能性があるという事実を含む様々な要因から生じうる。 p値が0.05未満である場合、リガンド処理から生じる統計的に有意な表現を識別するために、広く受け入れられている意義がある。ここで、両側分布および二標本不等分散パラメータを用いて生物学的および技術的反復にスチューデントt検定が使用されている。他のT-テストパラメータが存在し、選択は実験装置26に依存します。
成熟miRのホルモン規制を評価する上で詳細なプロトコル乳癌細胞におけるNAが提供されている。プロファイリングにおけるこれらのmiRNAの表現を検証し、重要な技術や化学が明確に説明されています。乳癌細胞におけるmiRNAの研究のために選択された技術は、最終的に正確に調査されているかに依存する。
The authors have nothing to disclose.
我々は彼らのmiRNAの専門知識を共有するため、博士カリンEdvardsson、カロリンスカ研究所、スウェーデン、博士Eylem Aydogduに、LC科学のmiRNAマイクロアレイプラットフォームへのアドバイスを提供するため、ヒューストン大学博士Xiaolianガオ、ヒューストン大学に感謝しています。この刊行物で報告された研究が受賞番号R01CA172437の下で国立衛生研究所の国立癌研究所によってサポートされていました。内容はもっぱら著者の責任であり、必ずしも国立衛生研究所の公式見解を示すものではありません。この作品はまた、合意の下で、テキサスエマージングテクノロジーファンドからの補助金によって支えられている。 300-9-1958。
DMEM | Life Technologies | 11885092 |
F12 | Life Technologies | 11765054 |
FBS | Sigma-Aldrich | F0926-500ML |
Penicillin Streptomycin | Life Technologies | 15140122 |
phenol red-free DMEM | Life Technologies | 11054020 |
Ultrapure Water | EMD Millipore | Specific equipment |
DCC-FBS | Sigma-Aldrich | F6765-500ML |
100X L-glutamine | Life Technologies | 25030081 |
PBS tablet | Medicago, Accurate chemicals | Accurate (BF092051-100), Medicago (09-9400-100) |
17β-estradiol | Sigma-Aldrich | E2758 |
ICI 182,780 | Sigma-Aldrich | I4409 |
Ethanol | Sigma-Aldrich | E7023-600ML |
T47D or MCF7 cells lines | American Type Culture Collection (ATCC) | T47D (ATCC HTB-133) and MCF7 (ATCC HTB-22) |
T-75 flask | VWR International LLC | BD353136 (vented cap) |
Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25300062 |
Serological pipet | VWR International LLC | 53300. For 5mL (53300-421) |
Countess Cell Counting chamber | Life Technologies | C10228 |
Countess Automated Cell Counter | Life Technologies | C10227 |
100 mm plates | VWR International LLC | 25382-166 |
Guanidinium thiocyanate-Phenol solution (TRizol) | Life Technologies | 15596026 |
Rubber cell scraper | VWR International LLC | 82050-470 |
Guanidinium thiocyanate-Phenol-Chloroform method (miRNeasy Mini Kit/Trizol) | Qiagen | 217004 |
Rnase-Free DNase I kit (DNA degradation) | Qiagen | 79254 |
RNase-free water (Nuclease-free water) | Thermoscientific | SH30538.02 |
Nanodrop 1000 Spectrophotometer | Thermoscientific | ND-1000 |
Agilent RNA 6000 Nano Assay kit | Agilent | 5067-1512 |
Agilent 2100 Bioanalyzer | Agilent | G2938C and for software (G2946) |
All primers (except TaqMan primers) | Integrated DNA Technologies | Specific per order for each gene/miRNA |
First strand buffer, DTT, dNTPs, superscript III (Superscript III cDNA synthesis kit) | Life Technologies | 18080085 |
MicroAmp Fast 96-Well reaction plate | Life Technologies | 4346906 |
Fast Optical Adhesive Covers | Life Technologies | 4311971 |
2X SYBR green PCR master mix (Cyanine dye) | Life Technologies | 4385612 |
7500 Fast Real-Time PCR System and software | Life Technologies | 4351106 |
μParaflo Microfluidic Biochip Technology | LCSciences | MRA-1001 and AS-2001(for result analysis) |
DLP-LDA (TLDA) Megaplex Pools Assay (Rt primers/Human pool set) | Life Technologies | 4400928 |
Dual Labeled Probes (TaqMan) miRNA RT kit | Life Technologies | 4366596 |
GeneAmp PCR System 9700 thermocycler | Life Technologies | 4310899 |
Dual Labeled Probes (TaqMan) 2X Universal PCR Master Mix-No AmpErase UNG | Life Technologies | 4324018 |
7900HT Fast Real-Time PCR system | Life Technologies | 4329001 |
SDS and RQ manager softwares | Life Technologies | 4444202 |
NCode miRNA First-Strand cDNA Synthesis and qRT-PCR Kit | Life Technologies | MIRC-50 |
10X DPL (TaqMan) RT primers | Life Technologies | Specific for each miRNA |
20X DPL (TaqMan) real-time assay primer | Life Technologies | Specific for each miRNA |