Облитерирующий бронхиолит является ключевым препятствием для долгосрочного выживания получателей пересадка легкого, а также отсутствие надежной доклинических модель исключает рассмотрения облитерирующего бронхиолита иммунопатогенезе. В отличие от других твердых трансплантации органов, сосудистой мыши трансплантации легких лишь недавно была разработана. Здесь мы показываем нашу самостоятельно разработал модель облитерирующего бронхиолита после мышиной ортотопической одной трансплантации легких.
Ортотопической трансплантации легких у крыс было впервые сообщено Asimacopoulos и его коллеги в 1971 году 1. В настоящее время этот метод хорошо приняты и стандартизированы не только для изучения алло-отказ, но и между сингенных штаммов для изучения механизмов ишемии-реперфузии после трансплантации легких. Хотя применение крыс и других крупных животных 2 модели внесли значительный вклад в выяснение этих исследований, объем этих исследований ограничены нехваткой нокаут и трансгенных крыс. Благодаря нет эффективных методов лечения для облитерирующего бронхиолита, ведущей причиной смерти у пациентов пересадка легкого, наблюдается интенсивный поиск доклинических моделях, которые копируют облитерирующего бронхиолита. Трахеи модели аллотрансплантата является наиболее широко используемым и может воспроизводить некоторые гистологические особенности облитерирующего бронхиолита 3. Тем не менее, отсутствие нетронутыми vasculatЮр, не имеющих отношения к проведению дыхательных путей получателя, и неполное патологические признаки облитерирующего бронхиолита ограничивает полезность этой модели 4. В отличие от трансплантации других солидных органов, сосудистой трансплантации легких мышей только недавно сообщили Окадзаки и его коллеги впервые в 2007 году 5. Применение основных принципов по трансплантации легких крыс, наша лаборатория приступила к облитерирующего бронхиолита модель использования незначительных histoincompatible антигена мышиные ортотопической одного левого легкого трансплантации, которая позволяет в дальнейшем изучении облитерирующего бронхиолита иммунопатогенезе 6.
Ортотопической трансплантации легких у мышей является сложной задачей в связи с микрохирургической требования и чрезвычайная хрупкость тканей. Введение в манжету техники позволило широко распространенное использование ортотопической трансплантации легких у крыс 8. Это стало основой для разработки модели ортотопической трансплантации легких у мышей, в нашей лаборатории. У мышей и крыс, в отличие от людей, левого легкого содержит только одну долю и составляет лишь 25% от общей массы легких. Это делает левая одной трансплантации легких возможно в мышиной модели без системы поддержки кровообращения.
Наши предварительные операции выяснилось, что вентиляция и кровоснабжение пересаженных легких в значительной степени зависит от размера PV анастомоза. Конкретные PV анастомоза Размер манжеты были использованы в соответствии с донорами и получателями, как сообщил 9. Несоответствующий манжета размера в результате либо ателектаз трансплантированных легких или зияние в PV anastomosis. Окадзаки и др. сообщили об использовании комбинированных перевязки сосуда и отсечения бронха 5. В настоящем исследовании мы используем аневризмы клип для всех внутригрудных структур, которые мы предлагаем может сократить теплой ишемии. Одним из ограничений ортотопической трансплантации левого легкого в мышиной модели является то, что получатель животные могут выжить после аллоимунный опосредованного некроз их аллотрансплантатов 5. Таким образом, выживание исследований не представляется возможным и взяточничества оценка зависит от гистологического исследования пересаженных легких 10.
Используя эту технику, мы разработали модель доклинических облитерирующего бронхиолита у мышей. В частности, доноры мыши C57BL/10 и получатель C57BL / 6. Это говорит о роли несовершеннолетнего, а не основной, гистосовместимости антигенов в патогенезе облитерирующего бронхиолита 6. Кроме того, мы уже сообщали нейтрализации IL-17 позволяет облитерирующий бронхиолит в мышиной модели. Этот режимл представляет собой новый инструмент исследования для изучения трансплантации легких и улучшения клинической трансплантации легких.
The authors have nothing to disclose.
Источники финансирования: Эта работа поддерживается Национальным институтом здравоохранения грантов HL067177, HL096845 и P01AI084853 в DSW
Name of the equipment | Company | Catalogue number |
Zeiss Opmi 6SFC-1880 | Prescott’s Inc | PMZ014 |
Harvard Rodent Ventilator | Harvard Apparatus | 55-7058 |
20-gauge I.V. catheter | Terumo Medical Corporation | 100510D |
22-gauge I.V. catheter | Terumo Medical Corporation | 081015S |
24-gauge I.V. catheter | Terumo Medical Corporation | 100522A |
9/0 Meth Blue Virgin Silk | Ashaway Line & Twine Mfg. CO | MBVS-90 |
10-0 Alcon Surgical Suture | Alcon Laboratories, Inc | 8065-192101 |
Black Braided Silk 5-0/18inches | Henry Schein | M652630 |
Heparin Sodium 1000 units/ml | APP Pharmaceuticals | 407156 |
Betadine Solution | Purdue Product | 67618-150 |
Lactated Ringer’s injection | Hospira | NDC 0409-7953-03 |
Strain of the mice | Vendor | Age, Weight | Gender, Comments |
C57BL/10 | Harlan Sprague-Dawley | 8-12 weeks, 25-30g | Male, Donor |
C57BL/6 | Harlan Sprague-Dawley | 8-12 weeks, 25-30g | Male, Donor or recipient |
Table 2. Table of mice, specific reagents and equipment.