Summary

유전자 변형 마우스 생산을 중재 하는 lentiviral: 창시자의 직접적인 연구를 위한 간단 하 고 매우 효율적인 방법

Published: October 07, 2018
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Summary

여기, 선물이 수정된 oocyte의 perivitelline 공간에서 lentiviral 벡터의 간단한 주입에 의해 transgene 통합 및 높은 효능과 설립자 유전자 변형 생쥐의 생산을 촉진 하는 프로토콜.

Abstract

거의 40 년 동안, pronuclear DNA 주입 transgenes의 임의의 통합 유전자 변형 쥐를 생성 하는 표준 메서드를 나타냅니다. 일상적인 절차는 전 세계에 걸쳐 널리 활용 하 고 그것의 주요 제한은 transgene 통합, 설립자 동물의 낮은 수율 결과의 가난한 효능에 있는. 주입 된 수정 된 oocytes의 이식 후 동물의 몇 %만는 transgene를 통합 했습니다. 반면, lentiviral 벡터 통합 유전자 이동에 대 한 강력한 도구 이며 transduce 수정 된 oocytes를 그들의 사용 허용 설립자의 고효율 생산 70% 이상 평균 수확량을 가진 유전자 변형 쥐. 또한, 모든 마우스 변형 유전자 변형 동물을 생산 하기 위해 사용할 수 있습니다 이며 transgene 표현의 penetrance lentiviral 중재 transgenesis DNA microinjection에 비해 80% 이상의 매우 높은. Lentiviral 벡터에 의해 화물을 될 수 있는 DNA 조각의 크기 10 kb로 제한 하 고이 방법의 주요 한계를 나타냅니다. 간단 하 고 쉽게 수정 된 oocytes의 zona pellucida 아래 주입 절차를 수행 하려면 사용 하 여, 50 개 이상의 설립자 동물 microinjection의 단일 세션에서 생산 수 있습니다. 이러한 메서드는 설립자 동물, 신속한 이득 및 손실 함수 연구 또는 자신의 능력을 제어 하 고 진 식에 vivo에서규제에 대 한 화면 genomic DNA 영역에서 직접 수행에 매우 적응.

Introduction

1980 년에 고 든 의 선구적인 작품 pseudopregnant 마우스에 이식 후 수정 된 oocytes의 남성 pronuclei 에 플라스 미드 DNA 주입 통합 유전자 변형 동물의 생산 얻을 수 있습니다 보여주었다는 플라스 미드 DNA1. Transgenic 포유류를 생성할 수 있습니다 데모 모두 기본적인 과학 및 변환 생물 의학 연구의 새로운 분야에 길을 열어 글로벌 생명과학에 엄청난 영향을 했다. 지난 4 년간 DNA microinjection은 일상적인 연습 되었다. 유전자 변형 쥐의 거 대 한 수 제작 되었습니다, 하지만 표준 방법 모든 마우스 긴장에 대 한 완벽 하 게 사용할 수 이며 시간이 소요 backcrosses2,3를 요구 한다. 다른 종에의 응용 도전4 유적과 전반적인 transgene 통합 수익률 태어난된 동물5의 몇 %로 제한 됩니다. 또한, transgene 통합의 효능 pronuclear DNA 주입의 가난한 전체 수익률을 설명 하는 제한 요소를 나타냅니다. 이 점에서 통합 바이러스 성 벡터 화물을 가장 효율적인 도구 transgenes 통합 그리고 이렇게 크게 증가 통합 수확량, 유일한 제한은 transgene 크기를 10 kb6 초과할 수 없습니다 되 고 새로운 의미를 제공할 수 있습니다. .

Lentiviral 벡터 의사 봉투 단백질 Vesicular 구내 염 바이러스 (VSV)의 형식의 pantropic 및 높은 통합 유전자 전송 도구 이며 transduce 수정 된 oocytes7을 사용할 수 있습니다. Zona pellucida 는 oocytes를 둘러싼 자연 바이러스 방 벽 고 lentiviral 벡터와 변환 있도록 전달 될 필요 합니다. 유전자 변형 동물 마이크로 드릴링 또는 zona pellucida8,9의 제거 후 수정 된 oocytes 시험에 의해 생성 된 것. 그러나, zona pellucida perivitelline 공간에서 아래 주입 transduce 로이스와 동료7에서 처음 설명한 대로 수정 된 달걀을 간단한 방법으로 나타납니다.

Lentiviral 벡터의 perivitelline 주입 태어난된 동물의 70% 이상 유전자 변형 동물의 생산에 높은 수율을 수 있습니다. 이러한 수익률 표준 pronuclei DNA 주입7,,1011를 사용 하 여 얻을 수 있는 최고의 수익률 보다 10 배 이상 높습니다. 이러한 맥락에서 주사의 단일 세션 50 유전자 변형 설립자 (F0)를 생성 합니다. 설립자의 다 수는, 그러므로, F0 생쥐 유전자 변형 마우스 라인을 생성 하는 필요 없이 직접 수행 transgene 효과의 형질과 호환. 이 장점은 transgene 효과의 신속한 심사 가능 하며 특히 적응 주 이내 vivo에서 이득과 손실의 기능 연구를 수행 하는. 또한, 규제 DNA 요소 수 있습니다 또한 빠르게 상영 지도 강화 및 녹음 방송 요인11,12으로 DNA 주제에. Pronuclear 주사와 transgenes는 일반적으로 독특한 소재 시로 여러 복사본 통합. Lentiviral 벡터와 통합 로커 스10,13당 단일 복사본으로 여러 loci에서 발생합니다. 따라서, 통합된 loci의 다양성 유전자 변형 설립자에서 관찰은 새로운 생성 된 모델을 더 강력한 시키는 매우 높은 식 penetrance에 관련 된 가장 가능성이 높습니다.

중요 한 것은, DNA의 pronuclear 주입을 사용 하 여, 절차 동안 pronuclei 의 시각화는 절대적으로 필요 합니다. 이 기술적 제한 수정 된 oocytes 마우스 긴장의 큰 다양성에서 발생의 사용을 방지 합니다. 따라서, 특정에서 유전자 변형 모델의 생산 뒤에 적어도 10 연속 backcrosses 원하는 마우스 transgene 전송 허용 스트레인에 동물의 생산을 필요는 pronuclei 표시 되지 않습니다 변형 스트레인입니다. Lentiviral 벡터 주사 perivitelline 공간은 항상 표시와 주사 매우 구체적인 기술이 필요 하지 않습니다. 예를 들어, pronuclei 주입에 적합 하지 않은 끄 덕/SCID 유전자 변형 쥐 바이러스 성 벡터 주사14로 얻은 되었습니다 있다.

여기, 포괄적인 프로토콜 lentiviral 벡터 주사 한 세포 단계 태아의 perivitelline 공간에를 사용 하 여 유전자 변형 마우스의 간단한 생산을 허용 하도록 제공 됩니다. Transgene 식으로 제어 유비 쿼터 스 또는 셀 특정 발기인 자세하게 설명 됩니다.

PTrip ΔU3 lentiviral 백본15이 연구 사용 되었다. 이 벡터는 U3 시퀀스 부분적으로 삭제 된 U3 발기인 활동을 제거 하 고16자기 inactivating 벡터 (죄) 생성 하는 복제 결함 lentiviral 벡터를 생산 수 있습니다. Lentiviral 벡터 주식 p8.91 캡슐화 플라스 미드 (ΔVpr ΔVif ΔVpu ΔNef)6, pHCMV-G 인코딩 vesicular 구내 염 바이러스 (VSV) 당단백질-G17및 pTRIP ΔU3와 HEK 293T 세포의 과도 transfection에 의해 제작 재조합 벡터입니다. 자세한 생산 절차 보완 방법으로 제공 됩니다.

생산의 높은 titer lentiviral 벡터 주식 Biosafety 수준 2 세 조건 (BSL-2)에서 수행 됩니다. 이 BSL-3에서 생산 해야 oncogenes 제외한 대부분 transgenes 마찬가지입니다. 따라서, 대부분의 경우 BSL-2 조건에서 생산은 충분 합니다. 또한, 사용 및 생산 일반적으로 끊어집니다 유전자 변형된 생물체 (GMO)을 다루는 대부분 국가 규제 기관에 대 한. 제한 된 양의 복제 무능 한 죄 lentiviral 벡터 (p24 capsid 단백질의 2 µ g) 아래 유럽 연합 권고와 프랑스 조합에 의해 설명 된 대로 BSL-1 조건에서 사용할 수 있습니다.

Protocol

동물 작업을 포함 하는 모든 절차 윤리적인 승인을 얻은 및 번호 APAFIS #5094-20 16032916219274 v6 교육과 연구의 프랑스 내각 및 05311.02에 의해 승인 되었습니다. PHENOPARC는 인증 번호 B75 프랑스 농림에 의해 공인 된 ICM 동물 시설 13 19. 전체 프로토콜 그림1에서에서 요약 된 정확한 시간 프레임 내에서 각 절차를 수행 해야 합니다. 1. 동물 구입과 기본적인 화합물의…

Representative Results

유전자 변형 동물 여기에 제시 된 프로토콜을 사용 하 여 생성 되었다. 대표 결과 모두 유비 쿼터 스 그리고 셀 형식 특정 transgene 식 설명 된다. Transgenes 제정 표현 유비 쿼터 스 발기인은 transgenes는 지속적이 고 효율적인 방식으로 표현에 기초 연구 도구입니다. 이러한 …

Discussion

여기서 설명 하는 수정 된 oocytes에서 lentiviral 벡터의 perivitelline 주입 수집 된 배아의 총 수를 기준으로 유전자 변형 태아의 70% 이상 생성 하는 유전자 변형 태아의 생산 귀착되는. 이 결과 이전 보고서와 일치 하 고 절차2,7,10,,1112의 특이성을 단적으로 보여준다. 표 1</str…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리 마 갈리 Dumont와 롤란도 Meloni lentiviral 벡터 생산 및 동물 각각 주택 기술 지원에 대 한 원고와 iVector 및 Phenoparc ICM 코어의 중요 한 독서에 대 한 감사. 이 작품은 인 Hospitalo 대학 드 신경 과학 Translationnelles 드에 의해 지원 되었다 파리, IHU-A-ICM, Investissements d’Avenir ANR-10-IAIHU-06. 협회 드 언어 프랑스에 대 한 자금 지원을 받은 홍보 부 l’Etude du Diabète 동부 표준시 데스 외관 Métaboliques (ALFEDIAM)와 공동 JDRF INSERM 부여 /.

Materials

PMSG 50UI Sigma G4527
hCG 5000UI Sigma CG5-1VL
NaCl Sigma 7982
100 mm petri dish Dutsher 353003
4 wells Nunc dish Dutsher 56469 IVF dish
M2 medium Sigma M7167
M16 medium Sigma M7292
0,22 µm Syringe filter Dutsher 146611
Hyaluronidase Enzyme 30mg Sigma H4272 mouse embryo tested
Insulin serynge VWR 613-3867 Terumo Myjector
Curved forceps Moria 2183
Curved scissors Moria MC26
Aspirator tube assemblies for calibrated microcapillary pipettes Sigma A5177-5EA
Borosilicate glass capillaries Harvard apparatus GC 100-10
Horizontal micropipette puller Narishige PN-30
Microforge Narishige MF-900
Inverted microscope Nikon Transferman NK2 5188 Hoffman modulation contrast illumination is required
Micromanipulator Eppendorf Celltram air
Controler of holding pipet Eppendorf Femtojet
Mineral oil Sigma M8410 mouse embryo tested
Microinjector Eppendorf Femtojet Can be used to inject DNA or viral vectors
Dumont # 5 forceps Moria MC 40
vannas micro scissors Moria 9600
Isoflurane centravet ISO005 ISO-VET 100% 250ml
ocrygel centravet OCR002
Povidone iodure centravet VET001 vetedine 120ml
Buprenorphine centravet BUP002 Buprecare 0,3Mg/ml 10ml
Tris-HCl Sigma T5941 Trizma hydrochloride
EDTA Sigma E9884
SDS Sigma 436143
NaCl Sigma S7653 powder
proteinase K Sigma P2308 
oneTaq kit NEB M0480L
Primers Eurogentec
Strip of 8 PCR tube 4titude 4ti-0781
96 well thermal cycler Applied Biosystems 4375786 Veriti
Genomic DNA mini kit invitrogen K1820-02
Nanodrop 2000 Thermo Scientific ND-2000C 
qPCR Master mix Roche 4887352001 SYBR Green 
Multiwell plate 384 Roche 5217555001
qPCR instrument 384 well Roche 5015243001 LightCycler 480

Referências

  1. Gordon, J. W., Scangos, G. A., Plotkin, D. J., Barbosa, J. A., Ruddle, F. H. Genetic transformation of mouse embryos by microinjection of purified DNA. Proceedings of the National Academy of Science USA. 77 (12), 7380-7384 (1980).
  2. Bock, T. A., Orlic, D., Dunbar, C. E., Broxmeyer, H. E., Bodine, D. M. Improved engraftment of human hematopoietic cells in severe combined immunodeficient (SCID) mice carrying human cytokine transgenes. Journal of Experimental Medicine. 182 (6), 2037-2043 (1995).
  3. Miyakawa, Y., et al. Establishment of human granulocyte-macrophage colony stimulating factor producing transgenic SCID mice. British Journal of Haematology. 95 (3), 437-442 (1996).
  4. Hirabayashi, M., et al. A comparative study on the integration of exogenous DNA into mouse, rat, rabbit, and pig genomes. Experimental Animals. 50 (2), 125-131 (2001).
  5. Isola, L. M., Gordon, J. W. Transgenic animals: a new era in developmental biology and medicine. Biotechnology. 16, 3-20 (1991).
  6. Zufferey, R., Nagy, D., Mandel, R. J., Naldini, L., Trono, D. Multiply attenuated lentiviral vector achieves efficient gene delivery in vivo. Nature Biotechnology. 15 (9), 871-875 (1997).
  7. Lois, C., Hong, E. J., Pease, S., Brown, E. J., Baltimore, D. Germline transmission and tissue-specific expression of transgenes delivered by lentiviral vectors. Science. 295 (5556), 868-872 (2002).
  8. Ewerling, S., et al. Evaluation of laser-assisted lentiviral transgenesis in bovine. Transgenic Research. 15 (4), 447-454 (2006).
  9. Ritchie, W. A., Neil, C., King, T., Whitelaw, C. B. Transgenic embryos and mice produced from low titre lentiviral vectors. Transgenic Research. 16 (5), 661-664 (2007).
  10. Park, F. Lentiviral vectors: are they the future of animal transgenesis. Physiological Genomics. 31 (2), 159-173 (2007).
  11. van Arensbergen, J., et al. A distal intergenic region controls pancreatic endocrine differentiation by acting as a transcriptional enhancer and as a polycomb response element. PLoS One. 12 (2), e0171508 (2017).
  12. Friedli, M., et al. A systematic enhancer screen using lentivector transgenesis identifies conserved and non-conserved functional elements at the Olig1 and Olig2 locus. PLoS One. 5 (12), e15741 (2010).
  13. Sauvain, M. O., et al. Genotypic features of lentivirus transgenic mice. Journal of Virology. 82 (14), 7111-7119 (2008).
  14. Punzon, I., Criado, L. M., Serrano, A., Serrano, F., Bernad, A. Highly efficient lentiviral-mediated human cytokine transgenesis on the NOD/scid background. Blood. 103 (2), 580-582 (2004).
  15. Zennou, V., et al. The HIV-1 DNA flap stimulates HIV vector-mediated cell transduction in the brain. Nature Biotechnology. 19 (5), 446-450 (2001).
  16. Miyoshi, H., Blomer, U., Takahashi, M., Gage, F. H., Verma, I. M. Development of a self-inactivating lentivirus vector. Journal of Virology. 72 (10), 8150-8157 (1998).
  17. Yee, J. K., et al. A general method for the generation of high-titer, pantropic retroviral vectors: highly efficient infection of primary hepatocytes. Proceedings of the National Academy of Science USA. 91 (20), 9564-9568 (1994).
  18. Castaing, M., et al. Efficient restricted gene expression in beta cells by lentivirus-mediated gene transfer into pancreatic stem/progenitor cells. Diabetologia. 48 (4), 709-719 (2005).
  19. Gradwohl, G., Dierich, A., LeMeur, M., Guillemot, F. neurogenin3 is required for the development of the four endocrine cell lineages of the pancreas. Proceedings of the National Academy of Science USA. 97 (4), 1607-1611 (2000).
  20. Scharfmann, R., Axelrod, J. H., Verma, I. M. Long-term in vivo expression of retrovirus-mediated gene transfer in mouse fibroblast implants. Proceedings of the National Academy of Science USA. 88 (11), 4626-4630 (1991).
  21. Norrman, K., et al. Quantitative comparison of constitutive promoters in human ES cells. PLoS One. 5 (8), e12413 (2010).
  22. Vandegraaff, N., Kumar, R., Burrell, C. J., Li, P. Kinetics of human immunodeficiency virus type 1 (HIV) DNA integration in acutely infected cells as determined using a novel assay for detection of integrated HIV DNA. Journal of Virology. 75 (22), 11253-11260 (2001).
  23. Ohtsuka, M., et al. One-step generation of multiple transgenic mouse lines using an improved Pronuclear Injection-based Targeted Transgenesis (i-PITT). BMC Genomics. 16, 274 (2015).
  24. Tasic, B., et al. Site-specific integrase-mediated transgenesis in mice via pronuclear injection. Proceedings of the National Academy of Science USA. 108 (19), 7902-7907 (2011).
  25. Sumiyama, K., Kawakami, K., Yagita, K. A simple and highly efficient transgenesis method in mice with the Tol2 transposon system and cytoplasmic microinjection. Genomics. 95 (5), 306-311 (2010).
  26. Garrels, W., et al. Cytoplasmic injection of murine zygotes with Sleeping Beauty transposon plasmids and minicircles results in the efficient generation of germline transgenic mice. Biotechnology Journal. 11 (1), 178-184 (2016).
  27. Ding, S., et al. Efficient transposition of the piggyBac (PB) transposon in mammalian cells and mice. Cell. 122 (3), 473-483 (2005).
  28. Aida, T., et al. Cloning-free CRISPR/Cas system facilitates functional cassette knock-in in mice. Genome Biology. 16, (2015).
  29. Philippe, S., et al. Lentiviral vectors with a defective integrase allow efficient and sustained transgene expression in vitro and in vivo. Proceedings of the National Academy of Science USA. 103 (47), 17684-17689 (2006).

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Citar este artigo
Dussaud, S., Pardanaud-Glavieux, C., Sauty-Colace, C., Ravassard, P. Lentiviral Mediated Production of Transgenic Mice: A Simple and Highly Efficient Method for Direct Study of Founders. J. Vis. Exp. (140), e57609, doi:10.3791/57609 (2018).

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