Summary

Дактилоскопирование кардиолипина в лейкоцитах масс-спектрометрией для быстрой диагностики синдрома Барта

Published: March 23, 2022
doi:

Summary

Этот протокол показывает, как получить масс-спектрометрический «отпечаток» кардиолипина лейкоцитов для диагностики синдрома Барта. Оценка повышенного соотношения монолизокардиолипина к кардиолипину отличает пациентов с синдромом Барта от контрольных пациентов с сердечной недостаточностью со 100% чувствительностью и специфичностью.

Abstract

Кардиолипин (CL), димерный фосфолипид, несущий в своей структуре четыре цепи жирных кислот, является липидным маркером митохондрий, в котором он играет решающую роль в функционировании внутренней мембраны. Его метаболит монолизокардиолипин (MLCL) физиологически почти отсутствует в липидном экстракте клеток животных, а его внешний вид является отличительной чертой синдрома Барта (BTHS), редкого и часто неправильно диагностируемого генетического заболевания, которое вызывает тяжелую кардиомиопатию в младенчестве. Метод, описанный здесь, генерирует «кардиолипиновый отпечаток» и позволяет провести простой анализ относительных уровней видов CL и MLCL в клеточных липидных профилях. В случае лейкоцитов требуется только 1 мл крови для измерения соотношения MLCL / CL с помощью матричной лазерной десорбционной ионизации – время полета / масс-спектрометрия (MALDI-TOF / MS) всего в пределах 2 ч от забора крови. Анализ прост и может быть легко интегрирован в рутинную работу клинической биохимической лаборатории для скрининга на BTHS. Тест показывает 100% чувствительность и специфичность для BTHS, что делает его подходящим диагностическим тестом.

Introduction

Синдром Барта (BTHS) является редким Х-сцепленным заболеванием, характеризующимся ранней кардиомиопатией, миопатией скелетных мышц, задержкой роста, нейтропенией, вариабельной дисфункцией митохондриальной дыхательной цепи и аномальнойструктурой митохондрий 1,2,3,4,5. BTHS имеет распространенность одного случая на миллион мужчин с в настоящее время менее 250 известными случаями во всем мире, хотя широко признано, что болезнь недодиагностирована 2,6. BTHS является результатом мутаций потери функции гена Tafazzin (TAFAZZIN), локализованного в хромосоме Xq28.12 7,8, вызывающих недостаточное ремоделирование митохондриального фосфолипида кардиолипина (CL), процесс, который обычно приводит к высокосимметричному и ненасыщенному ациловому составу 9,10. CL считается сигнатурным липидом митохондрий, где он является важным компонентом внутренней мембраны, жизненно важным для окислительного фосфорилирования (то есть митохондриального энергетического метаболизма), образования суперкомплексов, импорта белка и участвует в динамике митохондрий, митофагии и апоптозе 11,12,13,14,15,16 . При потере функции TAFAZZIN ремоделирование CL не удается и в митохондриях пациентов с BTHS возникают специфические аномалии фосфолипидов: зрелый уровень CL (CLm) снижается, в то время как повышаются уровни монолизокардиопина (MLCL) и изменяется состав CL ацила (т.е. незрелые виды CL, CLi). Это приводит к резкому увеличению соотношения MLCL/CL17.

Диагностика BTHS часто затруднена, так как расстройство представляет собой чрезвычайно изменчивые клинические и биохимические особенности и может отличаться между пострадавшими лицами из одной семьи и внутри пациента с течениемвремени 3,5. Многие мальчики BTHS показывают очень высокий уровень экскреции с мочой 3-метилглутаконовой кислоты (3-MGCA), но уровень мочи может быть нормальным или только слегка увеличиваться у пациентов с течением времени3. Тем не менее, увеличение 3-MGCA является особенностью различных других митохондриальных и немитохондриальных расстройств, таких как дефицит гидразы 3-метилглютаконил-КоА (дефект AUH), 3-метилглутаконовая ацидурия, дистония-глухота, энцефалопатия, синдром Ли (MEGDEL), синдром Костеффа и дилатационная кардиомиопатия с атаксией (DCMA)синдром 18,19 . Следовательно, плохая специфичность 3-MCGA как маркера BTHS и огромная вариабельность у пациентов делают биохимический диагноз неоднозначным.

Кроме того, было описано более 120 различных мутаций TAFAZZIN, вызывающих расстройство5 , и, следовательно, генетический диагноз может быть сложным, медленным и дорогостоящим. Более того, молекулярный анализ гена TAFAZZIN может привести к ложноотрицательным результатам при наличии мутаций в некодирующих или регулирующих последовательностях3. BTHS может быть однозначно проверен путем определения относительных количеств и распределения (монолизо-)видов CL и подтвержден секвенированием гена TAFAZZIN или наоборот.

Практическим тестом для диагностики является измерение соотношения MLCL/CL методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) и анализа электрораспыляемой ионизации/масс-спектрометрии (ESI/MS) в пятне крови20,21. Измерение уровня CL само по себе не является адекватным для диагностики, так как некоторые пациенты имеют почти нормальные уровни CL, но измененное соотношение MLCL / CL. Таким образом, измерение соотношения MLCL/CL имеет 100% чувствительность и специфичность для диагноза BTHS21. Другой проверенный метод, основанный на анализе ВЭЖХ и ESI / MS, был создан на лейкоцитах22, но сложные хроматографические методы разделения ранее извлеченных липидов и дороговизна инструментов ограничивают этот анализ несколькими клиническими лабораториями. Все эти факторы, вместе с отсутствием простого диагностического теста, способствовали недостаточной диагностике состояния.

MALDI-TOF/MS является еще одним валидным инструментом в анализе липидов23,24. Этот аналитический метод может быть использован для непосредственного получения липидных профилей различных биологических образцов, пропуская таким образом этапы экстракции и разделения 25,26,27,28,29, в том числе в тканевых срезах для приложений MS Imaging 30. Учитывая это преимущество, был разработан простой и быстрый метод диагностики BTHS путем профилирования митохондриального КЛ в интактных лейкоцитах с MALDI-TOF/MS28. Выделение лейкоцитов всего из 1 мл цельной крови путем оседания и лизиса эритроцитов является простым и не требует специального оборудования или реагентов. Кроме того, был описан протокол быстрой липидной «мини-экстракции», применимый к мельчайшим количествам лейкоцитов, чтобы гарантировать успешное получение спектров, имеющих более чистые сигналы РС с более высоким отношением сигнал/шум (S/N), чем в спектрах, полученных из интактных лейкоцитов28. Этот дальнейший шаг занимает мало времени и позволяет воспроизводить анализ даже при проведении на инструментах MS с низкой чувствительностью. Таким образом, аналитический метод, описанный здесь, требует минимальной пробоподготовки, поскольку трудоемкое и трудоемкое хроматографическое разделение липидов может быть пропущено, тем самым ускоряя тест.

Protocol

Образцы крови здоровых доноров и пациентов с сердечной недостаточностью были собраны в поликлинической больнице Бари (Италия), а образцы пациентов с BTHS были получены клиникой BTHS Национальной службы здравоохранения Великобритании в Бристольской королевской больнице для детей (Велико?…

Representative Results

В этом исследовании был описан простой и быстрый метод выделения лейкоцитов из 1 мл цельной крови и получения дактилоскопии CL методом MALDI-TOF/MS (см. Рисунок 2). На рисунке 3 показано сравнение репрезентативной дактилоскопии CL лейкоцитов, полученной от контро…

Discussion

Синдром Барта является врожденной ошибкой метаболизма и изменяющим жизнь состоянием, которое, вероятно, будет недодиагностировано 2,6. Как упоминалось ранее, способствующим фактором может быть отсутствие простого диагностического теста. Здесь был оп?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарны людям с BTHS и их семьям за участие в нашем исследовании. Мы благодарим Фонд синдрома Барта США и Фонд синдрома Барта Великобритании за их поддержку и помощь в сборе образцов крови на ежегодном собрании в Бристоле. Это исследование финансировалось Фондом синдрома Барта США, Barth Italia Onlus и Apulia Region.

Materials

1,1′,2,2′-tetratetradecanoyl cardiolipin Avanti Polar Lipids 750332 Lipid standard for MALDI-TOF calibration
1,1′2,2′-tetra- (9Z-octadecenoyl) cardiolipin Avanti Polar Lipids 710335 Lipid standard for MALDI-TOF calibration
1,2-di- (9Z-hexadecenoyl)-sn-glycero-3-phosphoethanolamine Avanti Polar Lipids 878130 Lipid standard for MALDI-TOF calibration
1,2-ditetradecanoyl-sn-glycero-3-phosphate Avanti Polar Lipids 830845 Lipid standard for MALDI-TOF calibration
1,2-ditetradecanoyl-snglycero-3-phospho-(1′-rac-glycerol) Avanti Polar Lipids 840445 Lipid standard for MALDI-TOF calibration
1,2-ditetradecanoyl-sn-glycero-3-phospho-L-serine Avanti Polar Lipids 840033 Lipid standard for MALDI-TOF calibration
2-Propanol, ACS reagent, ≥99.5% Merck Life Science S.r.l. 190764
9-Aminoacridine hemihydrate, 98% Acros Organics 134410010
Acetonitrile, ACS reagent, ≥99.5% Merck Life Science S.r.l. 360457
Chloroform, ACS reagent, ≥99.8% Merck Life Science S.r.l. 319988
Dextran from Leuconostoc spp. Mr 450,000-650,000 Merck Life Science S.r.l. 31392
Flex Analysis 3.3 Bruker Daltonics Software
MALDI-TOF mass spectrometer Microflex LRF Bruker Daltonics
Microsoft Excel Microsoft Office Software
OmniPur 10X PBS Liquid Concentrate Merck Life Science S.r.l. 6505-OP
Potassium chloride, ACS reagent, 99.0-100.5% Merck Life Science S.r.l. P3911
Sodium chloride, ACS reagent, ≥99.0% Merck Life Science S.r.l. S9888

References

  1. Barth, P. G., et al. X-linked cardioskeletal myopathy and neutropenia (Barth syndrome): respiratory-chain abnormalities in cultured fibroblasts. Journal of Inherited Metabolic Disease. 19 (2), 157-160 (1996).
  2. Steward, C. G., et al. syndrome (X linked cardiac and skeletal myopathy, neutropenia, and organic aciduria): rarely recognised, frequently fatal [abstract]. Archives of Disease in Childhood. 89, 48 (2004).
  3. Clarke, S. L. N., et al. Barth syndrome. Orphanet Journal of Rare Diseases. 8, 23 (2013).
  4. Zegallai, H. M., Hatch, G. M. Barth syndrome: cardiolipin, cellular pathophysiology, management, and novel therapeutic targets. Molecular and Cellular Biochemistry. 476 (3), 1605-1629 (2021).
  5. Taylor, C., et al. Clinical presentation and natural history of Barth Syndrome: An overview. Journal of Inherited Metabolic Disease. 45 (1), 7-16 (2022).
  6. Miller, P. C., Ren, M., Schlame, M., Toth, M. J., Phoon, C. A. Bayesian analysis to determine the prevalence of Barth syndrome in the pediatric population. The Journal of Pediatrics. 217, 139-144 (2020).
  7. Bione, S., et al. A novel X-linked gene, G4.5. is responsible for Barth syndrome. Nature Genetics. 12 (4), 385-389 (1996).
  8. Whited, K., Baile, M. G., Currier, P., Claypool, S. M. Seven functional classes of Barth Syndrome mutation. Human Molecular Genetics. 22 (3), 483-492 (2013).
  9. Schlame, M., Ren, M., Xu, Y., Greenberg, M. L., Haller, I. Molecular symmetry in mitochondrial cardiolipins. Chemistry and Physics of Lipids. 138 (1-2), 38-49 (2005).
  10. Schlame, M., Xu, Y. The function of Tafazzin, a mitochondrial phospholipid-lysophospholipid acyltransferase. Journal of Molecular Biology. 432 (18), 5043-5051 (2020).
  11. Schlame, M., Rua, D., Greenberg, M. L. The biosynthesis and functional role of cardiolipin. Progress in Lipid Research. 39 (3), 257-288 (2000).
  12. Mileykovskaya, E., Dowhan, W. Cardiolipin membrane domains in prokaryotes and eukaryotes. Biochimica et Biophysica Acta. 1788 (10), 2084-2091 (2009).
  13. Claypool, S. M., Koehler, C. M. The complexity of cardiolipin in health and disease. Trends in Biochemical Sciences. 37 (1), 32-41 (2011).
  14. Ren, M., Phoon, C. K., Schlame, M. Metabolism and function of mitochondrial cardiolipin. Progress in Lipid Research. 55, 1-16 (2014).
  15. Paradies, G., Paradies, V., Ruggiero, F. M., Petrosillo, G. Role of cardiolipin in mitochondrial function and dynamics in health and disease: Molecular and pharmacological aspects. Cells. 8 (7), 728 (2019).
  16. Acoba, M. G., Senoo, N., Claypool, S. M. Phospholipid ebb and flow makes mitochondria go. The Journal of Cell Biology. 219 (8), 03131 (2020).
  17. Schlame, M., et al. Phospholipid abnormalities in children with Barth syndrome. Journal of the American College of Cardiology. 42 (11), 1994-1999 (2003).
  18. Wortmann, S. B., et al. Inborn errors of metabolism with 3-methylglutaconic aciduria as discriminative feature: proper classification and nomenclature. Journal of Inherited Metabolic Disease. 36 (6), 923-928 (2013).
  19. Ikon, N., Ryan, R. O. On the origin of 3-methylglutaconic acid in disorders of mitochondrial energy metabolism. Journal of Inherited Metabolic Disease. 39 (5), 749-756 (2016).
  20. Kulik, W., et al. Bloodspot assay using HPLC-tandem mass spectrometry for detection of Barth syndrome. Clinical Chemistry. 54 (2), 371-378 (2008).
  21. Vaz, F. M., et al. An improved functional assay in blood spot to diagnose Barth syndrome using the monolysocardiolipin/cardiolipin ratio. Journal of Inherited Metabolic Disease. 45 (1), 29-37 (2022).
  22. Bowron, A., et al. Diagnosis of Barth syndrome using a novel LC-MS/MS method for leukocyte cardiolipin analysis. Journal of Inherited Metabolic Disease. 36 (5), 741-746 (2013).
  23. Sun, G., et al. Matrix assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometric analysis of cellular glycerophospholipids enabled by multiplexed solvent dependent analyte-matrix interactions. Analytical Chemistry. 80 (19), 7576-7585 (2008).
  24. Leopold, J., Popkova, Y., Engel, K. M., Schiller, J. Recent developments of useful MALDI matrices for the mass spectrometric characterization of lipids. Biomolecules. 8 (4), 173 (2018).
  25. Angelini, R., Babudri, F., Lobasso, S., Corcelli, A. MALDI-TOF/MS analysis of archaebacterial lipids in lyophilized membranes dry-mixed with 9-aminoacridine. The Journal of Lipid Research. 51 (9), 2818-2825 (2010).
  26. Angelini, R., et al. Lipidomics of intact mitochondria by MALDI-TOF MS. The Journal of Lipid Research. 53 (7), 1417-1425 (2012).
  27. Angelini, R., Vormieter, G., Corcelli, A., Fuchs, B. A fast method for the determination of PC/LPC ratio in intact horse serum by MALDI-TOF-MS: an easy-to-follow lipid biomarker of inflammation. Chemistry and Physics of Lipids. 183, 169-175 (2014).
  28. Angelini, R., et al. Cardiolipin fingerprinting of leukocytes by MALDI-TOF/MS as a screening tool for Barth syndrome. The Journal of Lipid Research. 56 (9), 1787-1794 (2015).
  29. Lobasso, S., et al. A lipidomic approach to identify potential biomarkers in exosomes from melanoma cells with different metastatic potential. Frontiers in Physiology. 12, 748895 (2021).
  30. Angelini, R., et al. Visualizing cholesterol in the brain by on-tissue derivatization and quantitative mass spectrometry imaging. Analytical Chemistry. 93 (11), 4932-4949 (2021).
  31. Greco, V., et al. Applications of MALDI-TOF mass spectrometry in clinical proteomics. Expert Review of Proteomics. 15 (8), 683-696 (2018).
  32. Duncan, M., DeMarco, M. L. MALDI-MS: Emerging roles in pathology and laboratory medicine. Clinical Mass Spectrometry (Del Mar, Calif). 13, 1-4 (2019).

Play Video

Cite This Article
Angelini, R., Russo, S., Corcelli, A., Lobasso, S. Fingerprinting Cardiolipin in Leukocytes by Mass Spectrometry for a Rapid Diagnosis of Barth Syndrome. J. Vis. Exp. (181), e63552, doi:10.3791/63552 (2022).

View Video