Summary

Прижизненные микроскопия лейкоцитов и тромбоцитов эндотелиальных лейкоцитов-взаимодействия в мезентериальных вен у мышей

Published: August 13, 2015
doi:

Summary

This simplified application of intravital microscopy of mesentery veins in mice can be used in different models of inflammation to observe leukocyte-endothelial and platelet-leukocyte interactions.

Abstract

Прижизненные микроскопия является методом, который может быть использован для исследования различных процессов в различных регионах и сосуды в живых животных. В этом протоколе мы опишем прижизненный микроскопии брыжейки вен. Это может быть выполнено в течение короткого периода времени с воспроизводимыми результатами, показывающими, лейкоцитов-эндотелиальной взаимодействия в естественных условиях. Мы описываем воспалительный настройки после ЛПС эндотелия. Но в этой модели можно применить различные типы воспалительных состояний, как бактериальных, химических или биологических и исследовать введение препаратов и их прямое воздействие на живом и его влияние на лейкоцитов. Этот протокол был успешно применен к ряду различных обработок мышей и их воздействие на воспалительную реакцию в сосудах. Здесь, мы опишем визуализацию лейкоцитов и тромбоцитов флуоресцентно маркировка их с родамина 6G. Кроме того, любая конкретная изображений может быть реrformed помощью целенаправленных флуоресцентно меченных молекул.

Introduction

Целью данного протокола является описание упрощенную методику прижизненной микроскопии брыжейки вен в живых мышей для прямого наблюдения лейкоцитов-эндотелиальной и лейкоцитов тромбоцитов взаимодействий при воспалительных процессах.

Прижизненные микроскопии был разработан для изучения лейкоцитов-эндотелиальной взаимодействия в естественных условиях под воспалительных состояний 1,2, что не тривиальна, но важно для понимания воспалительной лейкоцитов и функции. Метод, который мы описали в этом протоколе был разработан на основе ранее опубликованных изданий. Подобно визуализации тромбоцитов включение в растущем тромба 3 и параллельно с тем, что было опубликовано ранее 4, выводили брыжейки вена рассмотрены передаваемой световой микроскопии. Есть различные другие модели внутри витал микроскопии, такие как кремастер мышцы крыс 5 или печени мыши и крысы 6.

Прижизненные микроскопия брыжейки вены была разработана и применяется в предыдущих исследованиях несколько групп. Мы использовали эту технику, чтобы наблюдать различия в лейкоцитов между мышами дикого типа и триптофана hydroxylase1 (Tph1) – / – мышей, которые дефицитный ненейронных серотонина и сравнили результаты мышам, чьи тромбоцитов серотонина фармакологически истощены долгосрочной перспективе ингибитор приложение избирательного обратного захвата серотонина флуоксетин 7. Мы также исследовали лейкоцитов-эндотелиальной взаимодействия после острого лечение флуоксетином 8.

В этом протоколе мы ориентируемся на прижизненной микроскопии брыжейки вен, потому что эта модель может быть выполнена быстро, и позволяет действительные измерения лейкоцитов-эндотелиальной и тромбоцитов лейкоцитов взаимодействий. Это гораздо более сложным и трудоемким в прижизненной микроскопии других органов, таких как кости, печени, кожи или мышц кремастер. Режимл описано здесь идеально подходит для воспроизводимого оценки воспалительного взаимодействия клетка-клетка после challengeing его с воспалительным стимулом, таким как внутрибрюшинной инъекции ЛПС.

Protocol

Все эксперименты на животных были проведены в соответствии с немецким законом о защите животных (TierSchG). Мыши были размещены и обрабатываются в соответствии с надлежащей практикой животных, как это определено FELASA (www.felasa.eu/guidelines.php) и тела национального благосостояния животных GV-СОЛАС (www….

Representative Results

Обзор экспериментальных условий, описанной в данном протоколе показано на рисунке 1. Это показывает, мышь с экстериоризированного подвздошной петли и его сосудов, которое можно наблюдать в прижизненной микроскопии. Рисунок 2 показывает определенную степень активаци…

Discussion

В этом мы расскажем подготовку и исполнение прижизненной микроскопии брыжейки вен мышей в естественных условиях. Этот метод дает нам возможность наблюдать лейкоцитов-эндотелиальной и тромбоцитов эндотелиальных взаимодействий 11 непосредственно в живом организме.

<p class="j…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Deutsche Forschungsgemeinschaft (DU 1190/3-1).

Materials

Rhodamine 6G Sigma-Aldrich  989-38-8
Lipopolysaccharides from Escherichia coli 055:B5 Sigma-Aldrich L2637 

References

  1. Lehr, H. A., Vollmar, B., Vajkoczy, P., Menger, M. D. Intravital fluorescence microscopy for the study of leukocyte interaction with platelets and endothelial cells. Methods in enzymology. 300, 462-481 (1999).
  2. Atherton, A., Born, G. V. Quantitative investigations of the adhesiveness of circulating polymorphonuclear leucocytes to blood vessel walls. The Journal of physiology. 222, 447-474 (1972).
  3. Duerschmied, D., et al. Serotonin stimulates platelet receptor shedding by tumor necrosis factor-alpha-converting enzyme (ADAM17). Journal of thrombosis and haemostasis : JTH. 7, 1163-1171 (2009).
  4. Chauhan, A. K., et al. ADAMTS13: a new link between thrombosis and inflammation. The Journal of experimental medicine. 205, 2065-2074 (1084).
  5. Baez, S. An open cremaster muscle preparation for the study of blood vessels by in vivo microscopy. Microvascular research. 5, 384-394 (1973).
  6. Leister, I., et al. A peritoneal cavity chamber for intravital microscopy of the liver under conditions of pneumoperitoneum. Surgical endoscopy. 17, 939-942 (2003).
  7. Duerschmied, D., et al. Platelet serotonin promotes the recruitment of neutrophils to sites of acute inflammation in mice. Blood. 121, 1008-1015 (2013).
  8. Herr, N., et al. Acute fluoxetine treatment induces slow rolling of leukocytes on endothelium in mice. PloS one. 9, e88316 (2014).
  9. Yardeni, T., Eckhaus, M., Morris, H. D., Huizing, M., Hoogstraten-Miller, S. Retro-orbital injections in mice. Lab animal. 40, 155-160 (2011).
  10. Steel, C. D., Stephens, A. L., Hahto, S. M., Singletary, S. J., Ciavarra, R. P. Comparison of the lateral tail vein and the retro-orbital venous sinus as routes of intravenous drug delivery in a transgenic mouse model. Lab animal. 37, 26-32 (2008).
  11. Duerschmied, D., Bode, C., Ahrens, I. Immune functions of platelets. Thrombosis and haemostasis. 112, 678-691 (2014).
  12. Wagner, D. D., Frenette, P. S. The vessel wall and its interactions. Blood. 111, 5271-5281 (2008).
  13. Gawaz, M., Fateh-Moghadam, S., Pilz, G., Gurland, H. J., Werdan, K. Platelet activation and interaction with leucocytes in patients with sepsis or multiple organ failure. European journal of clinical investigation. 25, 843-851 (1995).
  14. Sarma, J., et al. Increased platelet binding to circulating monocytes in acute coronary syndromes. Circulation. 105, 2166-2171 (2002).
  15. Sumagin, R., Sarelius, I. H. TNF-alpha activation of arterioles and venules alters distribution and levels of ICAM-1 and affects leukocyte-endothelial cell interactions. American journal of physiology. Heart and circulatory physiology. 291, H2116-H2125 (2006).

Play Video

Cite This Article
Herr, N., Mauler, M., Bode, C., Duerschmied, D. Intravital Microscopy of Leukocyte-endothelial and Platelet-leukocyte Interactions in Mesenterial Veins in Mice. J. Vis. Exp. (102), e53077, doi:10.3791/53077 (2015).

View Video