概要

تطبيق النهج القائمة على البحث المفتوح لتحديد الجليكوببتيدات المرتبطة ب Acinetobacter baumannii O

Published: November 02, 2021
doi:

概要

يتيح البحث المفتوح تحديد الببتيدات السكرية المزينة بتركيبات جليكان غير معروفة سابقا. ضمن هذه المقالة ، يتم تقديم نهج مبسط لإجراء البحث المفتوح وعمليات البحث اللاحقة عن الجليكوببتيد التي تركز على الجليكوبتيد للعينات البكتيرية باستخدام Acinetobacter baumannii كنموذج.

Abstract

يتم التعرف بشكل متزايد على غليكوزيل البروتين كتعديل شائع داخل الكائنات الحية البكتيرية ، مما يساهم في فسيولوجيا بدائية النواة والعدوى المثلى للأنواع المسببة للأمراض. ونتيجة لذلك ، هناك اهتمام متزايد بتوصيف الجليكوزيل البكتيري والحاجة إلى أدوات تحليلية عالية الإنتاجية لتحديد هذه الأحداث. على الرغم من أن البروتيوميات من أسفل إلى أعلى تمكن بسهولة من توليد بيانات غليكوببتيد غنية ، فإن اتساع وتنوع الجليكان الذي لوحظ في الأنواع بدائية النواة يجعل تحديد أحداث الجليكوزيل البكتيرية أمرا صعبا للغاية.

تقليديا ، جعل التحديد اليدوي لتركيبات الجليكان داخل مجموعات البيانات البروتينية البكتيرية هذا تحليلا مخصصا إلى حد كبير يقتصر على خبراء ميدانيين محددين. في الآونة الأخيرة ، ظهرت النهج القائمة على البحث المفتوح كبديل قوي لتحديد التعديلات غير المعروفة. من خلال تحليل تواتر التعديلات الفريدة التي لوحظت على تسلسل الببتيد ، تسمح تقنيات البحث المفتوحة بتحديد الجليكان الشائع المرتبط بالببتيدات داخل عينات معقدة. تقدم هذه المقالة سير عمل مبسط لتفسير وتحليل بيانات glycoproteomic ، مما يوضح كيف يمكن استخدام تقنيات البحث المفتوح لتحديد الببتيدات السكرية البكتيرية دون معرفة مسبقة بتركيبات الجليكان.

باستخدام هذا النهج ، يمكن تحديد الببتيدات السكرية داخل العينات بسرعة لفهم الاختلافات في الغليكوزيل. باستخدام Acinetobacter baumannii كنموذج ، تمكن هذه الأساليب من مقارنة تركيبات الجليكان بين السلالات وتحديد البروتينات السكرية الجديدة. يوضح هذا العمل مجتمعا تنوع تقنيات البحث في قواعد البيانات المفتوحة لتحديد الغليكوزيل البكتيري ، مما يجعل توصيف هذه الجليكوبروتينات شديدة التنوع أسهل من أي وقت مضى.

Introduction

غليكوزيل البروتين ، عملية ربط الكربوهيدرات بجزيئات البروتين ، هي واحدة من أكثر التعديلات ما بعد الانتقالية شيوعا (PTMs) في الطبيعة 1,2. في جميع مجالات الحياة ، تطورت مجموعة من الآلات المعقدة المخصصة لتوليد البروتينات السكرية التي تؤثر على عدد لا يحصى من الوظائف الخلوية1،3،4،5. في حين أن غليكوزيل البروتين يحدث على مجموعة من الأحماض الأمينية 6,7 ، فإن أحداث الجليكوزيل المرتبطة ب N و O هما شكلان مهيمنان لوحظا في الطبيعة. يتضمن الغليكوزيل المرتبط ب N ربط الجليكان بذرة نيتروجين من بقايا الأسباراجين (Asn) ، بينما في الغليكوزيل المرتبط ب O ، يتم ربط الجليكان بذرة أكسجين من بقايا سيرين (Ser) أو ثريونين (Thr) أو التيروزين (Tyr)7. على الرغم من أوجه التشابه في المخلفات التي تستهدفها أنظمة الجليكوزيل ، فإن الاختلافات داخل الجليكان المرتبطة بالبروتينات تؤدي إلى كون الجليكوزيل هو الفئة الأكثر تنوعا كيميائيا من PTMs الموجودة في الطبيعة.

في حين أن أنظمة الجليكوزيل حقيقية النواة تمتلك تنوع الجليكان ، فإن هذه الأنظمة عادة ما تكون مقيدة في عدد الكربوهيدرات الفريدة المستخدمة. ينبع التنوع الناتج من كيفية ترتيب هذه الكربوهيدرات في جليكان8،9،10،11،12. في المقابل ، تمتلك الأنواع البكتيرية والقديمة تنوعا غير محدود تقريبا من الجليكان بسبب المجموعة الهائلة من السكريات الفريدة المتولدة داخل هذه الأنظمة2،10،13،14،15،16،17. تمثل هذه الاختلافات في تنوع الجليكان الذي لوحظ عبر مجالات الحياة تحديا تحليليا كبيرا لتوصيف وتحديد أحداث الغليكوزيل. بالنسبة للغليكوزيل حقيقي النواة ، فإن القدرة على توقع تركيبات الجليكان قد سهلت الاهتمام المتزايد بعلم الأحياء السكرية. ومع ذلك ، فإن الشيء نفسه لا ينطبق على الجليكوزيل البكتيري ، الذي لا يزال مقتصرا إلى حد كبير على الدراسة من قبل المختبرات المتخصصة. مع زيادة إمكانية الوصول إلى أجهزة قياس الطيف الكتلي (MS) في العلوم البيولوجية ، أصبحت النهج القائمة على MS الآن الطريقة الأساسية لتحليل glycoproteomic.

برز مرض التصلب العصبي المتعدد كأداة مثالية لتوصيف الجليكوزيل، مع استخدام كل من النهج من أعلى إلى أسفل ومن أسفل إلى أعلى الآن بشكل شائع لتوصيف البروتينات السكرية6. في حين يتم استخدام البروتيوميات من أعلى إلى أسفل لتقييم أنماط الغليكوزيل العالمية لبروتينات محددة18,19 ، يتم استخدام النهج من أسفل إلى أعلى لتمكين التوصيف الخاص بالجليكان من glycopeptides ، حتى من المخاليط المعقدة6,20,21,22,23. لتحليل glycopeptides ، يعد توليد معلومات التجزئة الإعلامية ضروريا لتوصيف أحداث glycosylation24,25. ويمكن الآن الوصول إلى مجموعة من نهج التجزئة بشكل روتيني على الأدوات، بما في ذلك التفكك الناجم عن التصادم القائم على مصيدة أيون الرنين (IT-CID)، والتفكك الناجم عن التصادم من نوع الحزمة (CID)، وتفكك نقل الإلكترون (ETD). يمتلك كل نهج نقاط قوة وضعف مختلفة لتحليل الجليكوببتيد 25,26 ، مع تقدم كبير خلال العقد الماضي في تطبيق نهج التجزئة هذه لتحليل الغليكوزيل 6,20. ومع ذلك ، بالنسبة لتحليل الغليكوزيل البكتيري ، لم يكن القيد الحرج هو القدرة على تفتيت الجليكوببتيدات ولكن بالأحرى عدم القدرة على التنبؤ بتركيبات الجليكان المحتملة داخل العينات. داخل هذه الأنظمة ، تحد الطبيعة غير المعروفة للجليكان البكتيري المتنوع من تحديد الجليكوببتيدات ، حتى مع أدوات البحث التي تركز على الغليكوزيل الشائعة الآن لتحليل الجليكوببتيدات حقيقية النواة ، مثل O-Pair27 و GlycopeptideGraphMS28 و GlycReSoft29. للتغلب على هذه المشكلة ، هناك حاجة إلى طريقة بحث بديلة ، مع استخدام أدوات البحث المفتوحة الناشئة كنهج قوي لدراسة الغليكوزيل البكتيري30.

يسمح البحث المفتوح ، المعروف أيضا باسم البحث الأعمى أو بحرف البدل ، بتحديد الببتيدات ذات PTMs 21,30,31,32 غير المعروفة أو غير المتوقعة. تستخدم عمليات البحث المفتوحة مجموعة متنوعة من التقنيات الحسابية ، بما في ذلك عمليات البحث عن التعديل المنسق ، أو عمليات البحث في قاعدة البيانات متعددة الخطوات ، أو البحث المتسامح على نطاق واسع33،34،35،36،37. على الرغم من أن البحث المفتوح ينطوي على إمكانات كبيرة ، إلا أن استخدامه عادة ما يعوقه الزيادة الكبيرة في أوقات التحليل وفقدان حساسية الكشف عن الببتيدات غير المعدلة مقارنة بعمليات البحث المقيدة31,32. الانخفاض في الكشف عن التطابقات الطيفية الببتيد غير المعدلة (PSMs) هو نتيجة لزيادة معدلات PSM الإيجابية الكاذبة المرتبطة بهذه التقنيات ، الأمر الذي يتطلب زيادة التصفية الصارمة للحفاظ على معدلات الاكتشاف الخاطئ المطلوبة (FDRs) 33،34،35،36،37 . في الآونة الأخيرة ، أصبحت العديد من الأدوات المتاحة تعمل على تحسين إمكانية الوصول إلى البحث المفتوح بشكل كبير ، بما في ذلك Byonic 31,38 و Open-pFind 39 و ANN-SoLo 40 و MSFragger21,41. تمكن هذه الأدوات من التحديد القوي لأحداث الغليكوزيل من خلال تقليل أوقات التحليل بشكل كبير وتنفيذ نهج للتعامل مع تركيبات الجليكان غير المتجانسة.

تقدم هذه المقالة طريقة مبسطة لتحديد الببتيدات السكرية البكتيرية عن طريق البحث المفتوح ، باستخدام مسببات الأمراض في المستشفيات سالبة الجرام ، Acinetobacter baumannii ، كنموذج. يمتلك A. baumannii نظام جليكوزيل مرتبط ب O محفوظ مسؤول عن تعديل ركائز البروتين المتعددة ، والمعروف باسم نظام غليكوزيل البروتين PglL42,43,44. في حين يتم استهداف بروتينات مماثلة للغليكوزيل بين السلالات ، فإن نظام غليكوزيل PglL متغير للغاية بسبب التخليق الحيوي للجليكان المستخدم في غليكوزيل البروتين المشتق من موضع الكبسولة (المعروف باسم K-locus) 44،45،46. ينتج عن ذلك جليكان متنوع (يعرف أيضا باسم وحدة K) ، مشتقة من وحدات K المبلمرة المفردة أو المحدودة ، التي تضاف إلى ركائز البروتين 30,44,46. ضمن هذا العمل ، يتم استخدام أداة البحث المفتوحة ، MSfragger ، داخل برنامج FragPipe ، لتحديد الجليكان عبر سلالات A. baumannii. من خلال الجمع بين البحث المفتوح والتنظيم اليدوي ، يمكن إجراء “عمليات بحث تركز على الجليكان” لزيادة تحسين تحديد الببتيدات البكتيرية. معا ، يتيح نهج تحديد الهوية متعدد الخطوات هذا تحديد الجليكوببتيدات دون خبرة واسعة في توصيف أحداث الجليكوزيل الجديدة.

Protocol

ملاحظة: يمكن تقسيم إعداد وتحليل عينات الجليكوببتيد البكتيرية إلى أربعة أقسام (الشكل 1). بالنسبة لهذه الدراسة ، تم تقييم غليكوزيل ثلاث سلالات A. baumannii متسلسلة (الجدول 1). يمكن الوصول إلى قواعد بيانات Proteome FASTA لكل من هذه السلالات عبر Uniprot. ارجع إلى الجدول 2 …

Representative Results

لتوضيح فائدة البحث المفتوح عن تحليل الجليكوببتيد البكتيري ، تم تقييم التنوع الكيميائي للجليكان المرتبط ب O داخل ثلاث سلالات من A. baumannii-AB307-0294 و ACICU و D1279779-. الجليكوبروتيومات المرتبطة ب O متغيرة للغاية بين سلالات A. baumannii حيث يتم اشتقاق الجليكان المستخدم في الغليكوزيل من مواقع ا?…

Discussion

البحث المفتوح هو طريقة فعالة ومنهجية لتحديد التعديلات غير المعروفة. في حين أن تحديد الجليكان غير المعروف داخل عينات البروتيوم البكتيرية كان تقليديا مهمة مستهلكة للوقت ومتخصصة تقنيا ، فإن التطورات الأخيرة لأدوات مثل MSfragger 21,41 و Byonic31,38

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

يتم دعم N.E.S من خلال زمالة المستقبل لمجلس البحوث الأسترالي (FT200100270) ومنحة مشروع اكتشاف ARC (DP210100362). نشكر مرفق ملبورن لقياس الطيف الكتلي والبروتينات التابع لمعهد Bio21 للعلوم الجزيئية والتكنولوجيا الحيوية على الوصول إلى أجهزة التصلب المتعدد.

Materials

14 G Kel-F Hub point style 3 Hamilton company hanc90514
2-Chloroacetamide Sigma Aldrich Pty Ltd C0267-100G
Acetonitrile Sigma Aldrich Pty Ltd 34851-4L
Ammonium hydroxide (28%) Sigma Aldrich Pty Ltd 338818-100ML
BCA Protein Assay Reagent A Pierce 23228
BCA Protein Assay Reagent B Pierce 23224
C8 Empore SPE Sigma Aldrich Pty Ltd 66882-U An alterative vendor for C8 material is Affinisep (https://www.affinisep.com/about-us/)
Formic acid Sigma Aldrich Pty Ltd 5.33002
Isopropanol Sigma Aldrich Pty Ltd 650447-2.5L
Methanol Fisher Chemical M/4058/17
SDB-RPS Empore SPE (Reversed-Phase Sulfonate) Sigma Aldrich Pty Ltd 66886-U An alterative vendor for SDB-RPS is Affinisep (https://www.affinisep.com/about-us/)
Sodium Deoxycholate Sigma Aldrich Pty Ltd D6750-100G
ThermoMixer C Eppendorf 2232000083
trifluoroacetic acid Sigma Aldrich Pty Ltd 302031-10X1ML
Tris 2-carboxyethyl phosphine hydrochloride Sigma Aldrich Pty Ltd C4706-2G
Tris(hydroxymethyl)aminomethane Sigma Aldrich Pty Ltd 252859-500G
Trypsin/Lys-C protease mixture Promega V5073
Vacuum concentrator Labconco 7810040
ZIC-HILIC material Merck 1504580001 Resin for use in single use SPE columns can be obtain by emptying a larger form column and using the free resin

参考文献

  1. Varki, A., et al. . Essentials of glycobiology. , (2015).
  2. Schaffer, C., Messner, P. Emerging facets of prokaryotic glycosylation. FEMS Microbiology Reviews. 41 (1), 49-91 (2017).
  3. Abu-Qarn, M., Eichler, J., Sharon, N. Not just for Eukarya anymore: Protein glycosylation in bacteria and archaea. Current Opinion in Structural Biology. 18 (5), 544-550 (2008).
  4. Szymanski, C. M., Yao, R., Ewing, C. P., Trust, T. J., Guerry, P. Evidence for a system of general protein glycosylation in Campylobacter jejuni. Molecular Microbiology. 32 (5), 1022-1030 (1999).
  5. Koomey, M. O-linked protein glycosylation in bacteria: snapshots and current perspectives. Current Opinion in Structural Biology. 56, 198-203 (2019).
  6. Riley, N. M., Bertozzi, C. R., Pitteri, S. J. A pragmatic guide to enrichment strategies for mass spectrometry-based glycoproteomics. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 20, 100029 (2020).
  7. Spiro, R. G. Protein glycosylation: nature, distribution, enzymatic formation, and disease implications of glycopeptide bonds. Glycobiology. 12 (4), 43-56 (2002).
  8. Hu, H., Khatri, K., Klein, J., Leymarie, N., Zaia, J. A review of methods for interpretation of glycopeptide tandem mass spectral data. Glycoconjugate Journal. 33 (3), 285-296 (2016).
  9. Moremen, K. W., Tiemeyer, M., Nairn, A. V. Vertebrate protein glycosylation: Diversity, synthesis and function. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 13 (7), 448-462 (2012).
  10. Bohm, M., et al. Glycosciences.DB: An annotated data collection linking glycomics and proteomics data (2018 update). Nucleic Acids Research. 47, 1195-1201 (2019).
  11. Kawano, S., Hashimoto, K., Miyama, T., Goto, S., Kanehisa, M. Prediction of glycan structures from gene expression data based on glycosyltransferase reactions. バイオインフォマティクス. 21 (21), 3976-3982 (2005).
  12. McDonald, A. G., Tipton, K. F., Davey, G. P. A knowledge-based system for display and prediction of O-glycosylation network behaviour in response to enzyme knockouts. PLOS Computational Biology. 12 (4), 1004844 (2016).
  13. Eichler, J., Koomey, M. Sweet new roles for protein glycosylation in prokaryotes. Trends in Microbiology. 25 (8), 662-672 (2017).
  14. Scott, N. E., et al. Simultaneous glycan-peptide characterization using hydrophilic interaction chromatography and parallel fragmentation by CID, higher energy collisional dissociation, and electron transfer dissociation MS applied to the N-linked glycoproteome of Campylobacter jejuni. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 10 (2), (2011).
  15. Russo, T. A., et al. The K1 capsular polysaccharide of Acinetobacter baumannii strain 307-0294 is a major virulence factor. Infection and Immunity. 78 (9), 3993-4000 (2010).
  16. Szymanski, C. M., Wren, B. W. Protein glycosylation in bacterial mucosal pathogens. Nature Reviews Microbiology. 3 (3), 225-237 (2005).
  17. Imperiali, B. Bacterial carbohydrate diversity – a brave new world. Current Opinion in Chemical Biology. 53, 1-8 (2019).
  18. Caval, T., Buettner, A., Haberger, M., Reusch, D., Heck, A. J. R. Discrepancies between high-resolution native and glycopeptide-centric mass spectrometric approaches: A case study into the glycosylation of erythropoietin variants. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 32 (8), 2099-2104 (2021).
  19. Caval, T., Heck, A. J. R., Reiding, K. R. Meta-heterogeneity: Evaluating and describing the diversity in glycosylation between sites on the same glycoprotein. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 20, 100010 (2020).
  20. Thomas, D. R., Scott, N. E. Glycoproteomics: growing up fast. Current Opinion in Structural Biology. 68, 18-25 (2020).
  21. Kong, A. T., Leprevost, F. V., Avtonomov, D. M., Mellacheruvu, D., Nesvizhskii, A. I. MSFragger: Ultrafast and comprehensive peptide identification in mass spectrometry-based proteomics. Nature Methods. 14 (5), 513-520 (2017).
  22. Cao, W., et al. Recent advances in software tools for more generic and precise intact glycopeptide analysis. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. , (2021).
  23. Yu, A., et al. Advances in mass spectrometry-based glycoproteomics. Electrophoresis. 39 (24), 3104-3122 (2018).
  24. Reiding, K. R., Bondt, A., Franc, V., Heck, A. J. R. The benefits of hybrid fragmentation methods for glycoproteomics. Trends in Analytical Chemistry. 108, 260-268 (2018).
  25. Riley, N. M., Malaker, S. A., Driessen, M., Bertozzi, C. R. Optimal dissociation methods differ for N- and O-glycopeptides. Journal of Proteome Research. 19 (8), 3286-3301 (2020).
  26. Mao, Y., et al. Systematic evaluation of fragmentation methods for unlabeled and isobaric mass tag-labeled O-glycopeptides. Analytical Chemistry. 93 (32), 11167-11175 (2021).
  27. Lu, L., Riley, N. M., Shortreed, M. R., Bertozzi, C. R., Smith, L. M. O-Pair Search with MetaMorpheus for O-glycopeptide characterization. Nature Methods. 17 (11), 1133-1138 (2020).
  28. Choo, M. S., Wan, C., Rudd, P. M., Nguyen-Khuong, T. GlycopeptideGraphMS: Improved glycopeptide detection and identification by exploiting graph theoretical patterns in mass and retention time. Analytical Chemistry. 91 (11), 7236-7244 (2019).
  29. Maxwell, E., et al. GlycReSoft: a software package for automated recognition of glycans from LC/MS data. PLoS One. 7 (9), 45474 (2012).
  30. Ahmad Izaham, A. R., Scott, N. E. Open database searching enables the identification and comparison of bacterial glycoproteomes without defining glycan compositions prior to searching. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 19 (9), 1561-1574 (2020).
  31. Bern, M., Kil, Y. J., Becker, C. Byonic: Advanced peptide and protein identification software. Current Protocols in Bioinformatics. , (2012).
  32. Na, S., Bandeira, N., Paek, E. Fast multi-blind modification search through tandem mass spectrometry. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 11 (4), 010199 (2012).
  33. Creasy, D. M., Cottrell, J. S. Error tolerant searching of uninterpreted tandem mass spectrometry data. Proteomics. 2 (10), 1426-1434 (2002).
  34. Craig, R., Beavis, R. C. TANDEM: Matching proteins with tandem mass spectra. バイオインフォマティクス. 20 (9), 1466-1467 (2004).
  35. Ahrné, E., Nikitin, F., Lisacek, F., Müller, M. QuickMod: A tool for open modification spectrum library searches. Journal of Proteome Research. 10 (7), 2913-2921 (2011).
  36. Shortreed, M. R., et al. Global identification of protein post-translational modifications in a single-pass database search. Journal of Proteome Research. 14 (11), 4714-4720 (2015).
  37. Chick, J. M., et al. A mass-tolerant database search identifies a large proportion of unassigned spectra in shotgun proteomics as modified peptides. Nature Biotechnology. 33 (7), 743-749 (2015).
  38. Roushan, A., et al. Peak filtering, peak annotation, and wildcard search for glycoproteomics. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 20, 100011 (2020).
  39. Chi, H., et al. Comprehensive identification of peptides in tandem mass spectra using an efficient open search engine. Nature Biotechnology. , (2018).
  40. Bittremieux, W., Laukens, K., Noble, W. S. Extremely fast and accurate open modification spectral library searching of high-resolution mass spectra using feature hashing and graphics processing units. Journal of Proteome Research. 18 (10), 3792-3799 (2019).
  41. Polasky, D. A., Yu, F., Teo, G. C., Nesvizhskii, A. I. Fast and comprehensive N- and O-glycoproteomics analysis with MSFragger-Glyco. Nature Methods. 17 (11), 1125-1132 (2020).
  42. Harding, C. M., et al. Acinetobacter strains carry two functional oligosaccharyltransferases, one devoted exclusively to type IV pilin, and the other one dedicated to O-glycosylation of multiple proteins. Molecular Microbiology. 96 (5), 1023-1041 (2015).
  43. Iwashkiw, J. A., et al. Identification of a general O-linked protein glycosylation system in Acinetobacter baumannii and its role in virulence and biofilm formation. PLoS Pathogens. 8 (6), 1002758 (2012).
  44. Scott, N. E., et al. Diversity within the O-linked protein glycosylation systems of Acinetobacter species. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 13 (9), 2354-2370 (2014).
  45. Kenyon, J. J., Hall, R. M. Variation in the complex carbohydrate biosynthesis loci of Acinetobacter baumannii genomes. PLoS One. 8 (4), 62160 (2013).
  46. Lees-Miller, R. G., et al. A common pathway for O-linked protein-glycosylation and synthesis of capsule in Acinetobacter baumannii. Molecular Microbiology. 89 (5), 816-830 (2013).
  47. Iacono, M., et al. Whole-genome pyrosequencing of an epidemic multidrug-resistant Acinetobacter baumannii strain belonging to the European clone II group. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 52 (7), 2616-2625 (2008).
  48. Hamidian, M., et al. Insights from the revised complete genome sequences of Acinetobacter baumannii strains AB307-0294 and ACICU belonging to global clones 1 and 2. Microbial Genomics. 5 (10), 000298 (2019).
  49. Farrugia, D. N., et al. The complete genome and phenome of a community-acquired Acinetobacter baumannii. PLoS One. 8 (3), 58628 (2013).
  50. Keller, B. O., Sui, J., Young, A. B., Whittal, R. M. Interferences and contaminants encountered in modern mass spectrometry. Analytica Chimica Acta. 627 (1), 71-81 (2008).
  51. Batth, T. S., et al. Protein aggregation capture on microparticles enables multipurpose proteomics sample preparation. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 18 (5), 1027-1035 (2019).
  52. HaileMariam, M., et al. S-Trap, an ultrafast sample-preparation approach for shotgun proteomics. Journal of Proteome Research. 17 (9), 2917-2924 (2018).
  53. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Analytical Biochemistry. 150 (1), 76-85 (1985).
  54. Rappsilber, J., Mann, M., Ishihama, Y. Protocol for micro-purification, enrichment, pre-fractionation and storage of peptides for proteomics using StageTips. Nature Protocols. 2 (8), 1896-1906 (2007).
  55. Harney, D. J., et al. Proteomic analysis of human plasma during intermittent fasting. Journal of Proteome Research. 18 (5), 2228-2240 (2019).
  56. Scott, N. E. Characterizing glycoproteins by mass spectrometry in Campylobacter jejuni. Methods in Molecular Biology. 1512, 211-232 (2017).
  57. Bian, Y., et al. Robust microflow LC-MS/MS for proteome analysis: 38000 runs and counting. Analytical Chemistry. 93 (8), 3686-3690 (2021).
  58. Diedrich, J. K., Pinto, A. F., Yates, J. R. Energy dependence of HCD on peptide fragmentation: stepped collisional energy finds the sweet spot. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 24 (11), 1690-1699 (2013).
  59. Liu, M. Q., et al. pGlyco 2.0 enables precision N-glycoproteomics with comprehensive quality control and one-step mass spectrometry for intact glycopeptide identification. Nature Communications. 8 (1), 438 (2017).
  60. Hinneburg, H., et al. The art of destruction: Optimizing collision energies in quadrupole-time of flight (Q-TOF) instruments for glycopeptide-based glycoproteomics. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 27 (3), 507-519 (2016).
  61. Chambers, M. C., et al. A cross-platform toolkit for mass spectrometry and proteomics. Nature Biotechnology. 30 (10), 918-920 (2012).
  62. R Core Team. R: A Language and Environment for Statistical Computing. R Foundation for Statistical Computing. , (2020).
  63. Brademan, D. R., Riley, N. M., Kwiecien, N. W., Coon, J. J. Interactive peptide spectral annotator: A versatile web-based tool for proteomic applications. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 18, 193-201 (2019).
  64. Russo, T. A., et al. The K1 capsular polysaccharide from Acinetobacter baumannii is a potential therapeutic target via passive immunization. Infection and Immunity. 81 (3), 915-922 (2013).
  65. Senchenkova, S. N., et al. Structure of the capsular polysaccharide of Acinetobacter baumannii ACICU containing di-N-acetylpseudaminic acid. Carbohydrate Research. 391, 89-92 (2014).
  66. Domon, B., Costello, C. E. A systematic nomenclature for carbohydrate fragmentations in FAB-MS/MS spectra of glycoconjugates. Glycoconjugate Journal. 5 (4), 397-409 (1988).
  67. Harvey, D. J., Dwek, R. A., Rudd, P. M. Determining the structure of glycan moieties by mass spectrometry. Current Protocols in Protein Science. , (2006).
  68. Medzihradszky, K. F., Kaasik, K., Chalkley, R. J. Characterizing sialic acid variants at the glycopeptide level. Analytical Chemistry. 87 (5), 3064-3071 (2015).
  69. Kelstrup, C. D., Frese, C., Heck, A. J., Olsen, J. V., Nielsen, M. L. Analytical utility of mass spectral binning in proteomic experiments by SPectral Immonium Ion Detection (SPIID). Molecular & Cellular Proteomics:MCP. 13 (8), 1914-1924 (2014).
  70. Ahmad Izaham, A. R., et al. What are we missing by using hydrophilic enrichment? Improving bacterial glycoproteome coverage using total proteome and FAIMS analyses. Journal of Proteome Research. 20 (1), 599-612 (2021).
  71. Neue, K., Mormann, M., Peter-Katalinic, J., Pohlentz, G. Elucidation of glycoprotein structures by unspecific proteolysis and direct nanoESI mass spectrometric analysis of ZIC-HILIC-enriched glycopeptides. Journal of Proteome Research. 10 (5), 2248-2260 (2011).
  72. Mysling, S., Palmisano, G., Hojrup, P., Thaysen-Andersen, M. Utilizing ion-pairing hydrophilic interaction chromatography solid phase extraction for efficient glycopeptide enrichment in glycoproteomics. Analytical Chemistry. 82 (13), 5598-5609 (2010).
  73. Escobar, E. E., et al. Precision mapping of O-Linked N-acetylglucosamine sites in proteins using ultraviolet photodissociation mass spectrometry. Journal of the American Chemical Society. 142 (26), 11569-11577 (2020).
  74. Madsen, J. A., et al. Concurrent automated sequencing of the glycan and peptide portions of O-linked glycopeptide anions by ultraviolet photodissociation mass spectrometry. Analytical Chemistry. 85 (19), 9253-9261 (2013).
  75. Lysiak, A., Fertin, G., Jean, G., Tessier, D. Evaluation of open search methods based on theoretical mass spectra comparison. BMC Bioinformatics. 22, 65 (2021).
  76. Pabst, M., et al. A general approach to explore prokaryotic protein glycosylation reveals the unique surface layer modulation of an anammox bacterium. ISME Journal. , (2021).

Play Video

記事を引用
Lewis, J. M., Coulon, P. M. L., McDaniels, T. A., Scott, N. E. The Application of Open Searching-based Approaches for the Identification of Acinetobacter baumannii O-linked Glycopeptides. J. Vis. Exp. (177), e63242, doi:10.3791/63242 (2021).

View Video