Открытый поиск позволяет идентифицировать гликопептиды, украшенные ранее неизвестными гликанными композициями. В этой статье представлен упрощенный подход к проведению открытого поиска и последующего поиска гликопептидов, ориентированных на гликикан, для бактериальных образцов с использованием Acinetobacter baumannii в качестве модели.
Белковое гликозилирование все чаще признается в качестве общей модификации в бактериальных организмах, способствуя прокариотической физиологии и оптимальной инфекционности патогенных видов. В связи с этим растет интерес к характеристике бактериального гликозилирования и потребность в высокопроизводительных аналитических инструментах для выявления этих событий. Хотя протеомика снизу вверх легко позволяет генерировать богатые данные о гликопептидах, широта и разнообразие гликанов, наблюдаемых у видов прокариот, делают идентификацию событий бактериального гликозилирования чрезвычайно сложной.
Традиционно ручное определение составов гликанов в наборах бактериальных протеомных данных делало этот анализ в значительной степени индивидуальным, ограниченным отраслевыми экспертами. В последнее время открытые поисковые подходы стали мощной альтернативой для выявления неизвестных модификаций. Анализируя частоту уникальных модификаций, наблюдаемых на пептидных последовательностях, открытые методы поиска позволяют идентифицировать общие гликаны, прикрепленные к пептидам в сложных образцах. В этой статье представлен оптимизированный рабочий процесс для интерпретации и анализа гликопротеомных данных, демонстрирующий, как открытые методы поиска могут быть использованы для идентификации бактериальных гликопептидов без предварительного знания составов гликанов.
Используя этот подход, гликопептиды в образцах могут быть быстро идентифицированы для понимания различий гликозилирования. Используя Acinetobacter baumannii в качестве модели, эти подходы позволяют сравнивать гликановые композиции между штаммами и идентифицировать новые гликопротеины. Взятые вместе, эта работа демонстрирует универсальность открытых методов поиска в базе данных для идентификации бактериального гликозилирования, что делает характеристику этих очень разнообразных гликопротеомов проще, чем когда-либо прежде.
Белковое гликозилирование, процесс присоединения углеводов к белковым молекулам, является одной из наиболее распространенных посттрансляционных модификаций (ПТМ) в природе 1,2. Во всех областях жизни развился ряд сложных механизмов, предназначенных для генерации гликопротеинов, которые влияют на множество клеточных функций 1,3,4,5. В то время как гликозилирование белка происходит на диапазоне аминокислот 6,7, N-связанные и O-связанные события гликозилирования являются двумя доминирующими формами, наблюдаемыми в природе. N-связанное гликозилирование включает присоединение гликанов к атому азота остатков аспарагина (Asn), в то время как при O-связанном гликозилировании гликокислоты присоединяются к атому кислорода остатков серина (Ser), треонина (Thr) или тирозина (Tyr)7. Несмотря на сходство в остатках, на которые нацелены системы гликозилирования, различия в гликанах, прикрепленных к белкам, приводят к тому, что гликозилирование является наиболее химически разнообразным классом ПТМ, обнаруженных в природе.
В то время как системы эукариотического гликозилирования обладают гликанцевым разнообразием, эти системы, как правило, ограничены в количестве используемых уникальных углеводов. Полученное разнообразие связано с тем, как эти углеводы распределены вгликаны 8,9,10,11,12. Напротив, бактериальные и архейные виды обладают практически неограниченным разнообразием гликанов из-за огромного количества уникальных сахаров, образующихся в этих системах 2,10,13,14,15,16,17. Эти различия в разнообразии гликанов, наблюдаемые в разных областях жизни, представляют собой значительную аналитическую проблему для характеристики и идентификации событий гликозилирования. Для эукариотического гликозилирования способность предвидеть гликовые композиции способствовала росту интереса к гликобиологии; тем не менее, то же самое не относится к бактериальному гликозилированию, которое по-прежнему в значительной степени ограничено изучением специализированными лабораториями. Поскольку доступность приборов масс-спектрометрии (МС) возросла в биологических науках, подходы, основанные на МС, в настоящее время являются основным методом гликопротеомного анализа.
РС стал квинтэссенцией инструмента для характеристики гликозилирования, причем как нисходящий, так и восходящий подходы в настоящее время широко используются для характеристики гликопротеинов6. В то время как нисходящая протеомика используется для оценки глобальных паттернов гликозилирования специфических белков 18,19, подходы «снизу вверх» используются для обеспечения гликан-специфической характеристики гликопептидов даже из сложных смесей 6,20,21,22,23. Для анализа гликопептидов генерация информативной информации о фрагментации имеет важное значение для характеристики событий гликозилирования24,25. В настоящее время на приборах обычно доступен ряд подходов к фрагментации, включая диссоциацию, вызванную столкновением на основе резонансной ионной ловушки (IT-CID), диссоциацию, вызванную столкновением пучка (CID), и диссоциацию переноса электронов (ETD). Каждый подход обладает различными сильными и слабыми сторонами для анализа гликопептидов25,26, со значительным прогрессом за последнее десятилетие в применении этих подходов к фрагментации для анализа гликозилирования 6,20. Однако для анализа бактериального гликозилирования критическим ограничением была не способность фрагментировать гликопептиды, а скорее неспособность предсказать потенциальные составы гликанов в образцах. В этих системах неизвестная природа разнообразных бактериальных гликанов ограничивает идентификацию гликопептидов, даже с помощью инструментов поиска, ориентированных на гликозилирование, которые в настоящее время являются обычным явлением для анализа эукариотических гликопептидов, таких как O-Pair27, GlycopeptideGraphMS28 и GlycReSoft29. Чтобы преодолеть эту проблему, требуется альтернативный метод поиска с использованием открытых поисковых инструментов, возникающих в качестве мощного подхода к изучению бактериального гликозилирования30.
Открытый поиск, также известный как слепой или подстановочный поиск, позволяет идентифицировать пептиды с неизвестными или неожиданными PTM 21,30,31,32. Открытый поиск использует различные вычислительные методы, включая кураторский поиск модификаций, многошаговый поиск по базе данных или широкомасштабный толерантный поиск 33,34,35,36,37. Хотя открытый поиск имеет большой потенциал, его использование, как правило, затрудняется значительным увеличением времени анализа и потерей чувствительности обнаружения немодифицированных пептидов по сравнению с ограниченными поисками31,32. Снижение обнаружения немодифицированных пептидно-спектральных совпадений (PSM) является результатом увеличения частоты ложноположительных PSM, связанных с этими методами, что требует усиленной строгой фильтрации для поддержания желаемых показателей ложного обнаружения (FDR)33,34,35,36,37 . В последнее время стало доступно несколько инструментов, которые значительно улучшают доступность открытого поиска, в том числе Byonic31,38, Open-pFind39, ANN-SoLo40 и MSFragger21,41. Эти инструменты позволяют надежно идентифицировать события гликозилирования за счет значительного сокращения времени анализа и реализации подходов к обработке гетерогенных гликановых композиций.
В данной статье представлен упрощенный метод идентификации бактериальных гликопептидов путем открытого поиска с использованием в качестве модели грамотрицательного внутрибольничного патогена Acinetobacter baumannii. A. baumannii обладает сохраненной O-связанной системой гликозилирования, ответственной за модификацию нескольких белковых субстратов, известной как система гликозилирования белка PglL 42,43,44. В то время как подобные белки нацелены на гликозилирование между штаммами, система гликозилирования PglL сильно варьируется из-за биосинтеза гликана, используемого для гликозилирования белка, полученного из локуса капсулы (известного как K-локус)44,45,46. Это приводит к тому, что различные гликаны (также известные как K-единица), полученные из одиночных или ограниченных полимеризованных K-единиц, добавляются к белковым субстратам 30,44,46. В рамках этой работы использование инструмента открытого поиска MSfragger в программном обеспечении FragPipe используется для идентификации гликанов в штаммах A. baumannii. Сочетая открытый поиск и ручное курирование, можно предпринять «гликано-ориентированные поиски» для дальнейшего улучшения идентификации бактериальных гликопептидов. В совокупности этот многоступенчатый подход к идентификации позволяет идентифицировать гликопептиды без обширного опыта в характеристике новых событий гликозилирования.
Открытый поиск является эффективным и систематическим методом выявления неизвестных модификаций. В то время как идентификация неизвестных гликанов в образцах бактериального протеома традиционно была трудоемким и технически специализированным мероприятием, последние разработки та…
The authors have nothing to disclose.
N.E.S поддерживается Стипендией будущего Австралийского исследовательского совета (FT200100270) и грантом проекта ARC Discovery (DP210100362). Мы благодарим Мельбурнский центр масс-спектрометрии и протеомики Института молекулярной науки и биотехнологии Bio21 за доступ к приборам ms.
14 G Kel-F Hub point style 3 | Hamilton company | hanc90514 | |
2-Chloroacetamide | Sigma Aldrich Pty Ltd | C0267-100G | |
Acetonitrile | Sigma Aldrich Pty Ltd | 34851-4L | |
Ammonium hydroxide (28%) | Sigma Aldrich Pty Ltd | 338818-100ML | |
BCA Protein Assay Reagent A | Pierce | 23228 | |
BCA Protein Assay Reagent B | Pierce | 23224 | |
C8 Empore SPE | Sigma Aldrich Pty Ltd | 66882-U | An alterative vendor for C8 material is Affinisep (https://www.affinisep.com/about-us/) |
Formic acid | Sigma Aldrich Pty Ltd | 5.33002 | |
Isopropanol | Sigma Aldrich Pty Ltd | 650447-2.5L | |
Methanol | Fisher Chemical | M/4058/17 | |
SDB-RPS Empore SPE (Reversed-Phase Sulfonate) | Sigma Aldrich Pty Ltd | 66886-U | An alterative vendor for SDB-RPS is Affinisep (https://www.affinisep.com/about-us/) |
Sodium Deoxycholate | Sigma Aldrich Pty Ltd | D6750-100G | |
ThermoMixer C | Eppendorf | 2232000083 | |
trifluoroacetic acid | Sigma Aldrich Pty Ltd | 302031-10X1ML | |
Tris 2-carboxyethyl phosphine hydrochloride | Sigma Aldrich Pty Ltd | C4706-2G | |
Tris(hydroxymethyl)aminomethane | Sigma Aldrich Pty Ltd | 252859-500G | |
Trypsin/Lys-C protease mixture | Promega | V5073 | |
Vacuum concentrator | Labconco | 7810040 | |
ZIC-HILIC material | Merck | 1504580001 | Resin for use in single use SPE columns can be obtain by emptying a larger form column and using the free resin |