Summary

Analisi temporale della traslocazione nucleare--citoplasmico di Herpes Simplex Virus 1 proteina mediante microscopia confocale immunofluorescente

Published: November 04, 2018
doi:

Summary

ICP0 subisce la traslocazione nucleare–citoplasmico durante l’infezione HSV-1. Non è noto il meccanismo molecolare di questo evento. Qui descriviamo l’uso del microscopio confocale come uno strumento per quantificare ICP0 movimento nell’infezione di HSV-1, che getta le basi per analizzare quantitativamente ICP0 traslocazione in futuri studi meccanicistici.

Abstract

Cellula infettata proteine 0 (ICP0) del virus herpes simplex 1 (HSV-1) sono una proteina di inizio immediata contenente un’anello-tipo E3 ubiquitina ligasi. È responsabile della degradazione proteasomica di fattori restrittivi ospite e l’attivazione successiva gene virale. ICP0 contiene una sequenza canonica localizzazione nucleare (NLS). Entra nel nucleo immediatamente dopo la sintesi de novo ed esegue le sue funzioni di difesa anti-ospite principalmente nel nucleo. Tuttavia, più tardi nell’infezione, ICP0 si trova esclusivamente nel citoplasma, suggerendo la presenza di una traslocazione nucleare–citoplasmico durante l’infezione HSV-1. Presumibilmente ICP0 traslocazione consente ICP0 di modulare le sue funzioni secondo sue sedi subcellulari alle fasi di infezione diversa. Al fine di delineare la funzione biologica e il meccanismo di regolazione della traslocazione nucleare–citoplasmico ICP0, abbiamo modificato un metodo di microscopia immunofluorescente per monitorare il traffico di ICP0 durante l’infezione HSV-1. Questo protocollo coinvolge macchiatura immunofluorescente, microscopio confocale imaging e nucleare vs citoplasmico analisi di distribuzione. L’obiettivo del presente protocollo è quello di adattare le immagini confocal di stato stazionario prese a un corso di tempo in una documentazione quantitativa del movimento ICP0 in tutta l’infezione litica. Proponiamo che questo metodo può essere generalizzato per analizzare quantitativamente nucleare vs localizzazione citoplasmatica di altre proteine virali o cellulare senza coinvolgere la tecnologia di imaging dal vivo.

Introduction

Herpes simplex virus 1 (HSV-1) provoca una vasta gamma di lievi a gravi malattie erpetiche compreso herpes labiale, herpes genitale, cheratite stromal ed encefalite. Una volta infettato, il virus stabilisce un’infezione latente permanente in neuroni dei gangli. In alcuni casi, il virus può essere riattivato da vari motivi quali febbre, stress e soppressione immune1, conducente all’infezione di herpes ricorrente. Proteina della cellula infettata 0 (ICP0) è un regolatore chiave di virale cruciale per l’infezione HSV-1 sia litica e latente. Esso transattiva a valle virus geni tramite contrastando l’host difese antivirale intrinseca/innate2,3. ICP0 è un’attività della ligasi di ubiquitin E3, che si rivolge ai diversi fattori di cella per degradazione proteasoma-dipendente3. Esso interagisce anche con varie vie di cella per regolare le loro attività e successivamente per compensare host antivirale restrizioni3. ICP0 è noto per individuare in diversi compartimenti subcellulari come procede l’infezione3,4,5. La proteina ha un segnale di arginina/lisina-ricco di localizzazione nucleare (NLS) situato a residui 500 a 5066. Al momento di sintesi de novo a inizio infezione da HSV-1, ICP0 viene immediatamente importato nel nucleo. In primo luogo viene rilevato in una dinamica nucleare struttura definito dominio nucleare 10 (ND10)7. L’attività di ligasi di ubiquitin E3 di ICP0 innesca la degradazione delle proteine organizzatore ND10, proteina promyelocytic di leucemia (PML) e proteina maculato 100 kDa (Sp100)8,9,10. Dopo la perdita di proteine organizzatore, ND10 corpi nucleari sono dispersi e ICP0 è diffusa per riempire l’intero nucleo4,11.

È interessante notare che, dopo l’inizio della replicazione del DNA virale, ICP0 scompare dal nucleo. Si trova esclusivamente nel citoplasma, suggerendo la presenza di una traslocazione nucleare–citoplasmico tardi in HSV-1 infezione4,12. Il requisito della replica del DNA implica la partecipazione potenziale di una proteina virale tardivo nel facilitare la traslocazione citoplasmica di HSV-1 ICP04,12. Apparentemente ICP0 traffico tra diversi comparti durante infezione autorizza ICP0 per modulare le interazioni di varie vie cellulari in modo spaziale e temporale, e quindi coordinare le sue multiple funzioni alla fine tune l’equilibrio tra litiche e latente HSV-1 infezione13. Per capire meglio ICP0 multifunzionalità e il coordinamento di ICP0 domini funzionali durante l’infezione litica, abbiamo dissecato accuratamente la base molecolare della dinamica ICP0 traslocazione12. Per condurre gli studi meccanicistici precedentemente segnalati12, abbiamo applicato un metodo di macchiatura immunofluorescente per visualizzare la localizzazione sottocellulare ICP0 presso lo stato di infezione diversa sotto il microscopio confocale. Abbiamo anche sviluppato un protocollo quantitativo per analizzare il nucleare vs citoplasmico distribuzione di ICP0 utilizzando il software confocale. La popolazione delle cellule di infezione da HSV-1 è stata tabulata in tutte le fasi di infezione e sono state analizzate le tendenze del movimento ICP0, sotto diversi trattamenti biochimici12. Qui descriviamo il protocollo dettagliato quello spostamento di documenti ICP0 nell’infezione di HSV-1. Proponiamo che questo metodo può essere adottato come metodo generale per studiare la traslocazione nucleare vs citoplasmatica per altre proteine virali o cellulare, che può servire come alternativa al live imaging quando la tecnica di imaging dal vivo è inapplicabile a causa problemi quali etichettatura metodo, intensità del segnale o abbondanza di proteine.

Protocol

1. cellula semina e infezione da Virus A 20 – 24 h prima dell’infezione del virus, seme 5 x 104 di fibroblasti di polmone embrionale umano (HEL) o altre cellule per essere esaminato in una diapositiva di 4 pozzetti 11 mm sfalsati in crescita medio (di Dulbecco per volta Eagle Medium (DMEM) completati con 10% fetale bovino siero (FBS)). Incubare le cellule a 37 ° C con 5% di anidride carbonica (CO2).Nota: Ogni bene dovrebbe avere confluency di 70-80% delle cellule al momento dell’inf…

Representative Results

Per comprendere le basi molecolari e le funzioni biologiche della ICP0 tratta durante l’infezione HSV-1, utilizziamo un metodo di microscopia immunofluorescente per analizzare la distribuzione subcellulare ICP0 alle fasi di infezione diversa. La figura 1 Mostra le cellule rappresentante con distintivo ICP0 localizzazione come il progredire dell’infezione. Per quantificare la traslocazione nucleare–citoplasmico di ICP0, analizziamo ICP0 distribuzione rispetto…

Discussion

Questo protocollo è stato usato per studiare la traslocazione nucleare–citoplasmico di HSV-1 ICP0. ICP0 subisce subcellulare traffico durante l’infezione di HSV-1 (Figura 1). Probabilmente, ICP0 interagisce con varie vie di cellule per svolgere funzioni diverse in luoghi diversi. In questo modo ICP0 a mettere a punto le sue multiple funzioni nel braccio di ferro con ospite umano13. Tuttavia, come ICP0 coordina le funzioni multiple in modo spaziale e temporale non è…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ringraziamo il sostegno finanziario da una sovvenzione di NIH (RO1AI118992) assegnata a Haidong Gu. Ringraziamo la struttura microscopia, Imaging & Core Cytometry risorse (MICR) presso la Wayne State University per il supporto tecnico.

Materials

Cells and viruses
Human Embryonic Lung fibroblasts (HEL Cells) Dr. Thomas E. Shenk (Princeton University) HEL cells were grown in DMEM supplemented with 10% FBS
HSV-1 viral Stock (Strain F) Dr. Bernard Roizman Lab
Medium
Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) Invitrogen  11965-092
Fetal Bovine Serum (FBS) Sigma F0926-500ml
Medium-199 (10X) Gibco 11825-015
Reagents
4- well 11 mm staggered slide Cel-Line/Thermofisher Scientific  30-149H-BLACK
16% Paraformaldehyde solution(w/v) Methanol free Thermo Scientific 28908
Triton X-100 Fisher reagents BP151-1C0
Bovine Serum Abumin (BSA) Calbiochem CAS 9048-46-8
Horse Serum Sigma H1270
Phosphate Buffered Saline (PBS) (137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na2HPO4, pH7.4) Dr. Haidong Gu lab
NaCl       Fisher Bioreagent BP358-212
KH2PO4             Fisher Bioreagent BP362-500
KCl              Fisher Scientific  BP366-500
Na2HPO4              Fisher Bioreagent BP332-500
Blocking buffer (PBS with 1% BSA and 5% Horse serum ) Dr. Haidong Gu lab
Rabiit Anti-ICP0 antibody Dr. Haidong Gu lab
PML (PG-M3)-Mouse monoclonal IgG santa Cruz Biotechnology SC-966
Alexa Fluor 594-goat anti-rabbit IgG invitrogen A11012
Alexa Fluor 488-goat anti-mouse IgG invitrogen A11001
Vectashield Mouting medium with DAPI Vector laboratories H-1200
Pasteur pipette Fisher Brand 13-678-20D
Nail Polish Sally Hansen
Equipment
Confocal Microscope Leica SP8
Confocal Software Leica LAS X Application suite
Excel software Microsoft Excel
HERAcell 150i CO2 incubator Thermo Scientific Order code 51026282

Riferimenti

  1. Whitley, R., Kimberlin, D. W., Prober, C. G., Arvin, A. Pathogenesis and disease. Human Herpesviruses: Biology, Therapy, and Immunoprophylaxis. , (2007).
  2. Roizman, B., Knipe, D. M., Whitley, R. J., Knipe, D. M., et al. Herpes simplex viruses. Fields’ Virology. , 1823-1897 (2013).
  3. Gu, H. Infected cell protein 0 functional domains and their coordination in herpes simplex virus replication. World Journal of Virology. 5 (1), 1-13 (2016).
  4. Lopez, P., Van Sant, C., Roizman, B. Requirements for the nuclear-cytoplasmic translocation of infected-cell protein 0 of herpes simplex virus 1. Journal of Virology. 75 (8), 3832-3840 (2001).
  5. Kawaguchi, Y., Van Sant, C., Roizman, B. Herpes simplex virus 1 alpha regulatory protein ICP0 interacts with and stabilizes the cell cycle regulator cyclin D3. Journal of Virology. 71 (10), 7328-7336 (1997).
  6. Mullen, M. A., Ciufo, D. M., Hayward, G. S. Mapping of intracellular localization domains and evidence for colocalization interactions between the IE110 and IE175 nuclear transactivator proteins of herpes simplex virus. Journal of Virology. 68 (5), 3250-3266 (1994).
  7. Maul, G. G., Everett, R. D. The nuclear location of PML, a cellular member of the C3HC4 zinc-binding domain protein family, is rearranged during herpes simplex virus infection by the C3HC4 viral protein ICP0. Journal of General Virology. 75 (6), 1223-1233 (1994).
  8. Chelbi-Alix, M. K., de The, H. Herpes virus induced proteasome-dependent degradation of the nuclear bodies-associated PML and Sp100 proteins. Oncogene. 18 (4), 935-941 (1999).
  9. Zheng, Y., Samrat, S. K., Gu, H. A Tale of Two PMLs: Elements Regulating a Differential Substrate Recognition by the ICP0 E3 Ubiquitin Ligase of Herpes Simplex Virus 1. Journal of Virology. 90 (23), 10875-10885 (2016).
  10. Lanfranca, M. P., Mostafa, H. H., Davido, D. J. HSV-1 ICP0: An E3 Ubiquitin Ligase That Counteracts Host Intrinsic and Innate Immunity. Cells. 3 (2), 438-454 (2014).
  11. Zheng, Y., Gu, H. Identification of three redundant segments responsible for herpes simplex virus 1 ICP0 to fuse with ND10 nuclear bodies. Journal of Virology. 89 (8), 4214-4226 (2015).
  12. Samrat, S. K., Ha, B. L., Zheng, Y., Gu, H. Characterization of Elements Regulating the Nuclear-to-Cytoplasmic Translocation of ICP0 in Late Herpes Simplex Virus 1 Infection. Journal of Virology. 92 (2), e01673-e01617 (2018).
  13. Gu, H. What role does cytoplasmic ICP0 play in HSV-1 infection?. Future Virology. 13 (6), (2018).
  14. Ettinger, A., Wittmann, T. Fluorescence live cell imaging. Methods Cell Biology. 123, 77-94 (2014).
  15. Frigault, M. M., Lacoste, J., Swift, J. L., Brown, C. M. Live-cell microscopy – tips and tools. Journal of Cell Science. 122 (6), 753-767 (2009).
  16. Chudakov, D. M., Lukyanov, S., Lukyanov, K. A. Fluorescent proteins as a toolkit for in vivo imaging. Trends in Biotechnology. 23 (12), 605-613 (2005).
  17. Teng, K. W., et al. Labeling proteins inside living cells using external fluorophores for microscopy. Elife. 5, e20378 (2016).
  18. Stephens, D. J., Allan, V. J. Light microscopy techniques for live cell imaging. Science. 300 (5616), 82-86 (2003).

Play Video

Citazione di questo articolo
Samrat, S. K., Gu, H. Temporal Analysis of the Nuclear-to-cytoplasmic Translocation of a Herpes Simplex Virus 1 Protein by Immunofluorescent Confocal Microscopy. J. Vis. Exp. (141), e58504, doi:10.3791/58504 (2018).

View Video