Summary

Los gobernantes de ADN dual estudiarán el mecanismo de la translocación ribosoma con resolución de un solo nucleótido

Published: July 08, 2019
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Summary

El ensayo de la regla de ADN dual se desarrolla para determinar la posición del ARNm durante la translocación ribosoma, que se basa en las fuerzas de disociación de los dúplex de ARN-ADN formados. Con la resolución de un solo nucleótido y la capacidad de llegar a ambos extremos del ARNm, puede proporcionar información mecanicista para la translocación ribosoma y sondear otros desplazamientos de ácido nucleico.

Abstract

La translocación ribosoma se refiere al movimiento ribosomal en el ARNm por exactamente tres nucleótidos (nt), que es el paso central en la síntesis de proteínas. Para investigar su mecanismo, existen dos requisitos técnicos esenciales. En primer lugar es la resolución de un solo nt que puede resolver la translocación normal del cambio de cuadro, durante el cual el ribosoma se mueve por otros 3 nt. El segundo es la capacidad de sondear los lados de entrada y salida del ARNm con el fin de dilucidar toda la imagen de la translocación. Informamos del ensayo de la regla de ADN dual que se basa en las fuerzas de disociación críticas de los dúplex de ARN-ADN, obtenidos por espectroscopia de magnetización remanente inducida por la fuerza (FIRMS).  Con una resolución de fuerza de 2-4 pN, el ensayo de regla dual es suficiente para distinguir diferentes pasos de translocación. Mediante la implementación de un vinculador largo en los DN de sondeo, pueden alcanzar el ARNm en el lado opuesto del ribosoma, de modo que la posición del ARNm se puede determinar para ambos lados. Por lo tanto, el ensayo de doble regla es especialmente adecuado para investigar la translocación ribosoma, y el movimiento del ácido nucleico en general. Mostramos resultados representativos que indicaban una conformación de ARNm en bucle y resolvieron la translocación normal del cambio de trama.

Introduction

El desplazamiento biomolecular es un parámetro fundamental en el estudio del mecanismo de las funciones biológicas relacionadas. Un ejemplo particular es la translocación ribosoma1,2, durante la cual el ribosoma se mueve exactamente por tres nucleótidos (nt) en el ARN mensajero (arNM) normalmente, y por uno, dos u otros números de nt excepto tres en el caso de cambio de marco. Por lo tanto, se requiere una resolución de un solo nt del sistema de reglas moleculares para distinguir los diferentes tamaños de paso. Un desafío mayor es sondear el movimiento ribosoma tanto en el lado de entrada como en el de salida. En otras palabras, sólo con un sistema de doble regla podremos revelar si el ARNm se enhebra suavemente a través del ribosoma, o hay pasos intermedios en los que los dos lados tienen diferentes tamaños de paso que conducen a una conformación de ARNm torcido o en bucle dentro de la Ribosoma.

Se han desarrollado varios métodos para abordar el primer reto de resolver diferentes pasos en el lado de salida del ribosoma (el extremo de 3′ del ARNm). El ensayo de doble luciferasa resuelve los diferentes marcos de lectura midiendo las proporciones de las diferentes proteínas resultantes3,4. Sólo es aplicable para el extremo de 3′ del ARNm y, por lo tanto, insuficiente para proporcionar una imagen completa de la translocación. La espectrometría de masas puede analizar los diferentes fragmentos de péptidos como consecuencia de los correspondientes reordenamientos de código5. Pero no puede identificar cuántos movimientos ribosomas en el ARNm. El ensayo de impresión de dedos de los dedos es otro método común que utiliza una transcriptasa inversa cebada en el extremo distal de 3’para transcribir el ARNm hacia el ribosoma6. Sin embargo, no es aplicable para el extremo de 5′ de ARNm que está entrando en el ribosoma. Otras técnicas, incluyendo enfoques de molécula única y métodos de fluorescencia7, son difíciles de lograr una resolución de un solo nt.

Hemos desarrollado el ensayo de la regla de ADN dual que puede determinar de manera única las posiciones de entrada y salida del ARNm descubierto en los complejos ribosoma-mRNA.  Los DN a la regla son oligómeros de ADN que forman dúplex de ciertos números de pares de bases (bp) con el ARNm descubierto por el ribosoma, independientemente de qué extremo del ARNm. Los números bp revelan con precisión la posición ribosoma en el ARNm durante la translocación. Los números bp de los dúplex están determinados por sus fuerzas de disociación crítica obtenidas a partir de la espectroscopia de magnetización remanente inducida por la fuerza (FIRMS)8. Con una incertidumbre de fuerza de 2-3 pN, las fuerzas críticas son suficientes para ofrecer una resolución de un solo nt. Mediante la implementación de una molécula de vinculador en las reglas de ADN, el lado esterrámico obstaculizado del ARNm por el ribosoma puede ser sondeado. Por lo tanto, se pueden resolver con precisión los diferentes desplazamientos ribosomales. Hemos revelado con éxito una conformación única en bucle de ARNm atrapado por antibióticos durante la translocación9,y resuelto diferentes marcos de lectura que coexistían en una secuencia de ARNm resbaladizo10. Este artículo describe los detalles del ensayo de doble regla, que incluyen la preparación de los complejos ribosomas, la funcionalización superficial de los portaobjetos de vidrio, la inmovilización de los complejos ribosomas y su hibridación con la regla de ADN etiquetada magnéticamente moléculas, detección magnética y análisis del espectro de fuerza por PARTE de FIRMS.

Protocol

1. Preparación de los complejos ribosomas Hacer 1.000 mL de tam10 buffer, que consiste en 20 mM tris-HCl (pH 7.5), 10 mM Mg (OAc)2, 30 mM NH4Cl, 70 mM KCl, 5 mM EDTA, 7 mM BME (2-mercaptoetanol), y 0.05% Tween20. Preparar las cinco mezclas enumeradas en la Tabla1.NOTA: El ribosoma era de la cepa MRE60011. EF-Tu: factor de alargamiento termo inestable. EF-Ts: factor de alargamiento termo estable. GTP: trifosfato de guanosina. PEP: fosf…

Representative Results

La Figura 1 muestra el esquema de detección y las fotografías de los componentes principales. La detección magnética se logra mediante un magnetómetro atómico utilizando el esquema de escaneo (Figura1A)13. La muestra se coloca en una varilla montada en un motor lineal. El motor transporta la muestra al sensor atómico dentro de un escudo magnético, y luego de vuelta al sitio original para su descarga. El magnetóme…

Discussion

En nuestro ensayo de doble regla, las cuentas magnéticas desempeñan dos papeles esenciales. En primer lugar, sirven como transductores de fuerza porque la fuerza centrífuga es proporcional a su masa boyante. En segundo lugar, las perlas son portadoras de señal detectadas por un magnetómetro atómico, que actualmente es el sensor magnético más preciso. Combinando la manipulación mecánica y la detección magnética, la técnica FIRMS es capaz de resolver un gran número de interacciones moleculares basadas en sus …

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo es apoyado por los Institutos Nacionales de Salud de los Estados Unidos (R01GM111452, Y.W., S.X.). Y. W. reconoce el apoyo de la Fundación Welch (E-1721).

Materials

Styrene Strip City of Industry MS-861
Glass slides Evaporated Coatings 60.0 × 4.0 × 0.3 mm3
Acetic acid Millipore Sigma A6283-500ML
3-Aminopropyltriethoxysilane UCT specialties 21400088
mPEG-SVA Laysan Bio 154-82
Biotin-PEG-SVA Laysan Bio 152-84
Sodium bicarbonate Millipore Sigma S5761-500G
Epoxy glue Devcon 31345
Streptavidin ThermoFisher 434301
Fusidic Acid Millipore Sigma F0756-1G
Neomycin Sulfate Millipore Sigma 1458009
Viomycin Sulfate Millipore Sigma 1715000
Hygromycin invitrogen 10687-010
Tris-HCl Millipore Sigma T5941-100G
Magnesium acetate Millipore Sigma M5661-50G
Ammonium chloride Millipore Sigma A9434-500G
Potassium chloride Millipore Sigma P9333-500G
EDTA GIBCO 774750
2-mercaptoethanol Millipore Sigma M6250-500ML
Tween20 Millipore Sigma P1379-250ML
GTP Millipore Sigma G8877-100MG
PEP Millipore Sigma P7127-100MG
Pyruvate Kinase Millipore Sigma P1506-5KU
Sucrose  Millipore Sigma S7903-5KG
Dynabeads M-280 Streptavidin ThermoFisher 11205D
mRNA Oligo Integrated DNA Technologies 133899727 5′-Bio- CAA CUG UUA AUU AAA UUA AAU UAA AAA GGA AAU AAAA AUG UUU AAU UUU UUA GGG CGC AAU CUA CUG CUG AAC UC-3′ 
DNA Oligo Integrated DNA Technologies 157468630 3ʹ- TAA TTT AAT TTA ATT TTT CGA AAU AT50/TEGBio/-5ʹ 
DNA Oligo Integrated DNA Technologies 164845370 3ʹ-AAT TTA ATT TTT CCT TTA AAA AT50/TEGBio/-5’ 
DNA Oligo Integrated DNA Technologies 157468628 3ʹ-AAA ATC CCG CGT TAG AAC UGG GG/TEGBio/-5’ 
DNA Oligo Integrated DNA Technologies 163472705 3ʹ-CCG CGT TAG ATG ACG AGA ACG GG/TEGBio/-5’ 
DNA Oligo Integrated DNA Technologies 138678130 3ʹ-AGA TGA CGA CTT CTC GGG/TEGBio/-5’
DNA Oligo Integrated DNA Technologies 138678131 3ʹ-T AGA TGA CGA CTT CTC GGG/TEGBio/-5’ 
DNA Oligo Integrated DNA Technologies 138678132 3ʹ-TT AGA TGA CGA CTT CTC GGG/TEGBio/-5ʹ 
DNA Oligo Integrated DNA Technologies 138678133 3ʹ-GTT AGA TGA CGA CTT CTC GGG/TEGBio/-5’ 
Centrifuge Eppendorf 5427R
Micro Ultracentrifuge Hitachi CS150FNX
Vortex mixer VWR VM-3000
Lock-in Amplifier Stanford Research Systems SR530
Lock-in Amplifier Stanford Research Systems SR830
Laser Newport TLB-6918-D
Function generator Stanford Research Systems DS345
Photo detectors Thorlabs DET36A

Referenzen

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Diesen Artikel zitieren
Yin, H., Xu, S., Wang, Y. Dual DNA Rulers to Study the Mechanism of Ribosome Translocation with Single-Nucleotide Resolution. J. Vis. Exp. (149), e59918, doi:10.3791/59918 (2019).

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