Summary

Regulering van Schwann-celgroei door nanoseconde gepulseerd elektrisch veld voor perifere zenuwregeneratie in vitro

Published: May 03, 2024
doi:

Summary

Hier presenteren we een protocol voor het toepassen van nanoseconde pulse electric field (nsPEF) om Schwann-cellen in vitro te stimuleren. De synthese en secretiecapaciteit van relevante factoren en veranderingen in celgedrag valideerden de succesvolle stimulatie met behulp van nsPEF. De studie geeft een positief beeld van de perifere zenuwregeneratiemethode.

Abstract

Schwann-cellen (SC’s) zijn myeliniserende cellen van het perifere zenuwstelsel en spelen een cruciale rol bij de regeneratie van perifere zenuwen. Nanosecond Pulse Electric Field (nsPEF) is een opkomende methode die kan worden toegepast bij elektrische stimulatie van zenuwen en waarvan is aangetoond dat deze effectief is bij het stimuleren van celproliferatie en andere biologische processen. Om te beoordelen of SC’s significante veranderingen ondergaan onder nsPEF en om het potentieel voor nieuwe methoden voor perifere zenuwregeneratie te onderzoeken, werden gekweekte RSC96-cellen onderworpen aan nsPEF-stimulatie bij 5 kV en 10 kV, gevolgd door voortgezette teelt gedurende 3-4 dagen. Vervolgens werden enkele relevante factoren die door SC’s tot expressie werden gebracht, beoordeeld om de succesvolle stimulatie aan te tonen, waaronder het specifieke markereiwit, de neurotrofe factor, de transcriptiefactor en de myelinisatieregulator. De representatieve resultaten toonden aan dat nsPEF de proliferatie en migratie van SC’s aanzienlijk verbeterde en het vermogen om relevante factoren te synthetiseren die positief bijdragen aan de regeneratie van perifere zenuwen. Tegelijkertijd duidde een lagere expressie van GFAP op de goedaardige prognose van perifere zenuwletsels. Al deze resultaten tonen aan dat nsPEF een groot potentieel heeft als een efficiënte behandelmethode voor perifere zenuwletsels door SC’s te stimuleren.

Introduction

Elk jaar worden miljoenen mensen getroffen door zenuwletsel waarbij zowel het perifere zenuwstelsel (PNS) als het centrale zenuwstelsel (CZS) betrokken zijn1. Studies hebben aangetoond dat de axonale herstelcapaciteit van het CZS vrij beperkt is na zenuwletsel, terwijl het PNS een verhoogde capaciteit vertoont vanwege de aanzienlijke plasticiteit van SC’s2. Desalniettemin blijft het bereiken van volledige regeneratie na perifere zenuwbeschadigingen moeilijk en blijft het een aanzienlijke uitdaging vormen voor de menselijke gezondheid 3,4. Tegenwoordig zijn autotransplantaten een veel voorkomende behandeling gebleven, ondanks de nadelen van morbiditeit op de donorplaats en de beperkte beschikbaarheid5. Deze situatie heeft onderzoekers ertoe aangezet om alternatieve therapieën te onderzoeken, waaronder materialen6, moleculaire factoren7 en elektrische stimulatie (ES). Als een factor die axonale groei en zenuwregeneratiebevordert 8, wordt het kiezen van een geschikte ES-methode en het onderzoeken van de relatie tussen ES en SC’s essentieel.

SC’s zijn de belangrijkste gliacellen van het PNS en spelen een cruciale rol bij de regeneratie van het PNS 9,10. Na perifere zenuwbeschadigingen ondergaan SC’s een snelle activering, uitgebreide herprogrammering2 en overgang van een myelinevormende toestand naar een groeiondersteunende morfologie om de regeneratie van de zenuw uit te voeren2. Een substantiële proliferatie van SC’s vindt plaats aan het distale uiteinde van de gewonde zenuw, terwijl SC’s van de distale stomp proliferatie en rek ondergaan om de band van Bungner te vormen, die nodig zijn om axonen te begeleiden om naar het doelorgaante groeien 11. Bovendien migreren SC’s van de proximale en distale zenuwstompen naar de zenuwbrug om SC-koorden te vormen die de regeneratie van axonen bevorderen12. Bovendien hebben eerdere studies aangetoond dat de synthese en secretie van relevante factoren die verband houden met SC’s veranderen in gevallen van perifere zenuwregeneratie, waaronder transcriptiefactoren13, neurotrofe factoren14 en myelinisatieregulatoren13. Dit levert ook indicatoren op voor het beoordelen van de activiteit van SC’s. Op basis hiervan is de bevordering van SC-proliferatie, migratie, synthese en secretie van relevante factoren uitgebreid onderzocht voor het verbeteren van de regeneratie van perifere zenuwen15.

Eerdere studies hebben de mogelijkheid aangetoond om ES te gebruiken voor zenuwregeneratie1. Een algemeen aanvaarde verklaring is dat ES depolarisatie van celmembranen kan induceren, membraanpotentiaal kan veranderen en membraaneiwitfuncties kan beïnvloeden door de ladingsverdelingen op deze biomoleculen te veranderen. Het op grote schaal toegepaste Intense PEF kan echter ernstige pijn, onwillekeurige spiersamentrekkingen en hartfibrillatieveroorzaken8. Het verhoogt ook de activiteit van creatinekinase (CK), vermindert de spierkracht en induceert de ontwikkeling van vertraagde spierpijn (DOMS)16. nsPEF is een opkomende techniek die proefpersonen stimuleert met elektrische velden met een hoge spanning binnen een pulsduur van een nanoseconde, en het wordt geleidelijk gebruikt in onderzoek op cellulair niveau17,18. Eerdere studies hebben gemeld dat de mogelijke reden van nsPEF die celproliferatie en organelactiviteit bevordert, de vorming van membraannanoporiën en de activering van ionische kanalen is, wat leidt tot een toename van de cytoplasmatische Ca2+-concentratie19. nsPEF maakt gebruik van pulskrachttechnologie om het celmembraan op te laden en pulsen te produceren die worden gekenmerkt door een korte duur, snelle stijgtimum, hoog vermogen en lage energiedichtheid20. Deze kenmerken suggereren dat nsPEF een voorkeursmodus kan zijn met minimale stimulatiebijwerkingen8. Bovendien biedt nsPEF voordelen zoals minimaal invasieve procedures, omkeerbaarheid, aanpasbaarheid en niet-destructiviteit van neurale weefsels in vergelijking met chirurgische ingrepen. Een van de belangrijkste onderzoeksrichtingen van nsPEF op biomedisch gebied is de toepassing ervan voor ablatie van tumorweefsel met behulp van hoogenergetische elektrische veldstimulatie 21,22,23. Sommige onderzoeksresultaten geven aan dat 12-nsPEF perifere zenuwen kan stimuleren zonder schade aan te richten24. Op dit moment is er echter beperkt bewijs met betrekking tot de toepassing van nsPEF op het gebied van zenuwregeneratie. Bovendien is het stimuleren van SC’s met behulp van nsPEF een baanbrekende poging, die bijdraagt aan verder in vivo en klinisch onderzoek. Deze studie onderzoekt of nsPEF-stimulatie van SC’s zenuwregeneratie kan bevorderen en een betrouwbare basis kan bieden voor daaropvolgend diepgaand en systematisch onderzoek.

Protocol

1. Ontdooien van gecryopreserveerde RSC96-cellen Ontdooi de cryovial met 1 ml celsuspensie door deze snel te schudden in een waterbad van 37 °C, voeg het vervolgens toe aan een centrifugebuis met 4-6 ml compleet kweekmedium en meng goed. Centrifugeer bij 1000 x g gedurende 3-5 minuten, gooi het supernatans weg en resuspendeer de cellen in 3 ml volledig kweekmedium. Voeg de celsuspensie toe aan een kweekkolf (of schaal) met 6-8 ml volledig kweekmedium en incubeer ee…

Representative Results

Gepulseerde elektrische velden met lage intensiteit stimuleren de celproliferatieVolgens de CCK-8-test was de proliferatiesnelheid van RSC96 in de 5 kV/cm-groep significant sneller dan die van de cellen in de controlegroep. Naarmate de parameters echter toenamen (20 kV/cm en 40 kV/cm), was de proliferatiesnelheid onstabiel, zelfs lager dan die van de controlegroep. De celproliferatiesnelheid van RSC96-cellen in de 40 kV/cm-groep was significant lager dan die van de controlegroep en de 5 kV/cm-groep, …

Discussion

In de afgelopen jaren heeft de toepassing van nsPEF een stimulerende groei doorgemaakt, zoals gemeld. nsPEF heeft een zeer gericht effect op alleen het gewenste gebied en levert voldoende energie om te behandelen zonder extra thermische schade te veroorzaken, waardoor het veiliger is voor het menselijk lichaam28. Deze kenmerken geven het veelbelovende translationele vooruitzichten in tumorbehandeling en zenuwregeneratie. Sommige studies hebben echter enkele beperkingen van nsPEF voorgesteld. In ve…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gefinancierd door het National Key Scientific Instrument and Equipment Development Project (NO.82027803).

Materials

Antifade mounting medium Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G1401
Anti-GFAP Mouse mAb Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB12100-100
Anti-Neurofilament heavy polypeptide Mouse mAb Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB12144-100
Anti-S100 beta Mouse mAb Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB14146-100
BSA Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GC305010
Coverslip Jiangsu Shitai experimental equipment Co., LTD 10212432C
CY3-labeled goat anti-mouse IgG Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB21302
DAPI Staining Reagent Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G1012
Decolorizing shaker Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD DS-2S100
High Voltage Power Supply for nsPEF Matsusada Precision Inc. AU-60P1.6-L
Histochemical pen Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G6100
Membrane breaking liquid Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G1204
Microscope slide Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G6012
Palm centrifuge Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD MS6000
PBS powdered Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G0002
Pipette Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD
Positive fluorescence microscope Nikon, Japan NIKON ECLIPSE C1
Rabbit Anti-SOX10/AF488 Conjugated antibody Beijing Bioss Biotechnology Co., LTD BS-20563R-AF488
RSC96 Schwann cells Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD STCC30007G-1
scanister 3DHISTECH Pannoramic MIDI
Special cable for nsPEF Times Microwave Systems M17/78-RG217
Turbine mixer Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD MV-100

References

  1. Jing, W., et al. Study of electrical stimulation with different electric-field intensities in the regulation of the differentiation of PC12 cells. ACS Chem Neurosci. 10 (1), 348-357 (2018).
  2. Nocera, G., Jacob, C. Mechanisms of Schwann cell plasticity involved in peripheral nerve repair after injury. Cell Mol Life Sci. 77, 3977-3989 (2020).
  3. Aguilar, Z. . Nanomaterials for Medical Applications. , (2012).
  4. Xie, S., et al. Efficient generation of functional Schwann cells from adipose-derived stem cells in defined conditions. Cell Cycle. 16 (9), 841-851 (2017).
  5. Rosenbalm, T. N., Levi, N. H., Morykwas, M. J., Wagner, W. D. Electrical stimulation via repeated biphasic conducting materials for peripheral nerve regeneration. J Mater Sci Mater Med. 34 (11), 1-18 (2023).
  6. Daly, W. T., et al. Comparison and characterization of multiple biomaterial conduits for peripheral nerve repair. Biomaterials. 34 (34), 8630-8639 (2013).
  7. Lee, B. -. K., et al. End-to-side neurorrhaphy using an electrospun PCL/collagen nerve conduit for complex peripheral motor nerve regeneration. Biomaterials. 33 (35), 9027-9036 (2012).
  8. Kim, V., Gudvangen, E., Kondratiev, O., Redondo, L., Xiao, S., Pakhomov, A. G. Peculiarities of neurostimulation by intense nanosecond pulsed electric fields: how to avoid firing in peripheral nerve fibers. Int J Mol Sci. 22 (13), 7051 (2021).
  9. Assinck, P., Duncan, G. J., Hilton, B. J., Plemel, J. R., Tetzlaff, W. Cell transplantation therapy for spinal cord injury. Nat Neurosci. 20 (5), 637-647 (2017).
  10. Chen, Y. Y., McDonald, D., Cheng, C., Magnowski, B., Durand, J., Zochodne, D. W. Axon and Schwann cell partnership during nerve regrowth. J Neuropathol Exp Neurol. 64 (7), 613-622 (2005).
  11. Yi, S., et al. Tau modulates Schwann cell proliferation, migration and differentiation following peripheral nerve injury. J Cell Sci. 132 (6), (2019).
  12. Min, Q., Parkinson, D. B., Dun, X. Migrating Schwann cells direct axon regeneration within the peripheral nerve bridge. Glia. 69 (2), 235-254 (2021).
  13. Zhang, Y., Zhao, Q., Chen, Q., Xu, L., Yi, S. Transcriptional control of peripheral nerve regeneration. Mol Neurobiol. 60 (1), 329-341 (2023).
  14. Nishi, M., Kawata, M., Azmitia, E. C. Trophic interactions between brain-derived neurotrophic factor and S100β on cultured serotonergic neurons. Brain Res. 868 (1), 113-118 (2000).
  15. Gu, Y., et al. miR-sc8 inhibits Schwann cell proliferation and migration by targeting EGFR. PLoS One. 10 (12), e0145185 (2015).
  16. Dong, H. -. L., et al. AMPK regulates mitochondrial oxidative stress in C2C12 myotubes induced by electrical stimulations of different intensities. Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao. 38 (6), 742-747 (2018).
  17. Beebe, S. J., Blackmore, P. F., White, J., Joshi, R. P., Schoenbach, K. H. Nanosecond pulsed electric fields modulate cell function through intracellular signal transduction mechanisms. Physiol Meas. 25 (4), 1077 (2004).
  18. Haberkorn, I., Siegenthaler, L., Buchmann, L., Neutsch, L., Mathys, A. Enhancing single-cell bioconversion efficiency by harnessing nanosecond pulsed electric field processing. Biotechnol Adv. 53, 107780 (2021).
  19. Ruiz-Fernández, A. R., Campos, L., Gutierrez-Maldonado, S. E., Núñez, G., Villanelo, F., Perez-Acle, T. Nanosecond pulsed electric field (nsPEF): Opening the biotechnological Pandora’s box. Int J Mol Sci. 23 (11), 6158 (2022).
  20. Nuccitelli, R., et al. First-in-human trial of nanoelectroablation therapy for basal cell carcinoma: proof of method. Exp Dermatol. 23 (2), 135-137 (2014).
  21. Nuccitelli, R., et al. Non-thermal nanoelectroablation of UV-induced murine melanomas stimulates an immune response. Pigment Cell Melanoma Res. 25 (5), 618-629 (2012).
  22. Carr, L., et al. A nanosecond pulsed electric field (nsPEF) can affect membrane permeabilization and cellular viability in a 3D spheroids tumor model. Bioelectrochemistry. 141, 107839 (2021).
  23. Hornef, J., Edelblute, C. M., Schoenbach, K. H., Heller, R., Guo, S., Jiang, C. Thermal analysis of infrared irradiation-assisted nanosecond-pulsed tumor ablation. Sci Rep. 10 (1), 5122 (2020).
  24. Zuo, K. J., Gordon, T., Chan, K. M., Borschel, G. H. Electrical stimulation to enhance peripheral nerve regeneration: Update in molecular investigations and clinical translation. Exp Neurol. 332, 113397 (2020).
  25. Juckett, L., Saffari, T. M., Ormseth, B., Senger, J. -. L., Moore, A. M. The effect of electrical stimulation on nerve regeneration following peripheral nerve injury. Biomolecules. 12 (12), 1856 (2022).
  26. Jessen, K. R., Mirsky, R. Negative regulation of myelination: relevance for development, injury, and demyelinating disease. Glia. 56 (14), 1552-1565 (2008).
  27. Chen, Z. -. L., Yu, W. -. M., Strickland, S. Peripheral regeneration. Annu Rev Neurosci. 30, 209-233 (2007).
  28. Yin, D., et al. Cutaneous papilloma and squamous cell carcinoma therapy utilizing nanosecond pulsed electric fields (nsPEF). PloS One. 7 (8), e43891 (2012).
  29. Qi, F., et al. Photoexcited wireless electrical stimulation elevates nerve cell growth. Colloids Surf B Biointerfaces. 220, 112890 (2022).
  30. Mi, Y., Liu, Q., Li, P., Xu, J., Yang, Q., Tang, J. Targeted gold nanorods combined with low-intensity nsPEFs enhance antimelanoma efficacy in vitro. Nanotechnology. 31 (35), 355102 (2020).
  31. Ho, T. -. C., et al. Hydrogels: Properties and applications in biomedicine. Molecules. 27 (9), 2902 (2022).

Play Video

Cite This Article
Han, J., Wang, Z., Dong, Y., Zou, X., Wang, H., Chen, Y., Abdalbary, S. A., Tu, T., Lu, H. Regulating Schwann Cell Growth by Nanosecond Pulsed Electric Field for Peripheral Nerve Regeneration In Vitro. J. Vis. Exp. (207), e66097, doi:10.3791/66097 (2024).

View Video