Summary

Regulando o crescimento de células de Schwann por campo elétrico pulsado de nanossegundos para regeneração de nervos periféricos in vitro

Published: May 03, 2024
doi:

Summary

Aqui, apresentamos um protocolo para aplicação de campo elétrico de pulso de nanossegundos (nsPEF) para estimular células de Schwann in vitro. A capacidade de síntese e secreção de fatores relevantes e alterações no comportamento celular validaram o sucesso da estimulação usando nsPEF. O estudo dá uma visão positiva do método de regeneração de nervos periféricos.

Abstract

As células de Schwann (SCs) são células mielinizantes do sistema nervoso periférico, desempenhando um papel crucial na regeneração dos nervos periféricos. O Campo Elétrico de Pulso de Nanossegundos (nsPEF) é um método emergente aplicável na estimulação elétrica nervosa que demonstrou ser eficaz na estimulação da proliferação celular e outros processos biológicos. Com o objetivo de avaliar se os SCs sofrem mudanças significativas sob nsPEF e ajudar a explorar o potencial de novos métodos de regeneração de nervos periféricos, as células RSC96 cultivadas foram submetidas à estimulação nsPEF a 5 kV e 10 kV, seguida de cultivo contínuo por 3-4 dias. Posteriormente, alguns fatores relevantes expressos por SCs foram avaliados para demonstrar a estimulação bem-sucedida, incluindo a proteína marcadora específica, o fator neurotrófico, o fator de transcrição e o regulador da mielinização. Os resultados representativos mostraram que o nsPEF aumentou significativamente a proliferação e migração de SCs e a capacidade de sintetizar fatores relevantes que contribuem positivamente para a regeneração dos nervos periféricos. Simultaneamente, a menor expressão de GFAP indicou o prognóstico benigno de lesões de nervos periféricos. Todos esses resultados mostram que o nsPEF tem grande potencial como método de tratamento eficiente para lesões de nervos periféricos, estimulando as SCs.

Introduction

A cada ano, milhões de pessoas são afetadas por lesões nervosas envolvendo tanto o sistema nervoso periférico (SNP) quanto o sistema nervoso central (SNC)1. Estudos demonstraram que a capacidade de reparo axonal do SNC é bastante limitada após lesões nervosas, enquanto o SNP mostra capacidade aumentada devido à plasticidade significativa das SCs2. No entanto, alcançar a regeneração completa após lesões de nervos periféricos permanece árduo e continua a representar um desafio significativo para a saúde humana 3,4. Atualmente, os autoenxertos continuam sendo um tratamento comum, apesar das desvantagens da morbidade do local doador e da disponibilidade limitada5. Essa situação levou os pesquisadores a explorar terapias alternativas, incluindo materiais6, fatores moleculares7 e estimulação elétrica (ES). Como fator promotor do crescimento axonal e da regeneração nervosa8, a escolha de um método apropriado de ES e a exploração da relação entre ES e SCs tornam-se essenciais.

As SCs são as principais células gliais do SNP, desempenhando um papel crucial na regeneração do SNP 9,10. Após lesões de nervos periféricos, os SCs passam por ativação rápida, reprogramação extensa2 e transição de um estado formador de mielina para uma morfologia de suporte ao crescimento para conduzir a regeneração do nervo2. Uma proliferação substancial de SCs ocorre na extremidade distal do nervo lesado, enquanto as SCs do coto distal sofrem proliferação e alongamento para formar a banda de Bungner, que são necessárias para guiar os axônios a crescerem em direção ao órgão-alvo11. Além disso, os SCs dos cotos nervosos proximal e distal migram para a ponte nervosa para formar cordões SC promovendo a regeneração do axônio12. Além disso, estudos anteriores demonstraram que a síntese e a secreção de fatores relevantes relacionados às SCs mudam nos casos de regeneração nervosa periférica, incluindo fatores transcricionais13, fatores neurotróficos14 e reguladores da mielinização13. Isso também fornece indicadores para avaliar a atividade das CTs. Com base nisso, a promoção da proliferação, migração, síntese e secreção de SC de fatores relevantes têm sido extensivamente investigadas para melhorar a regeneração nervosa periférica15.

Estudos anteriores demonstraram a possibilidade do uso do ES para regeneração nervosa1. Uma explicação amplamente aceita é que o ES pode induzir a despolarização das membranas celulares, alterar o potencial da membrana e afetar as funções das proteínas da membrana, alterando as distribuições de carga nessas biomoléculas1. No entanto, o PFE intenso amplamente aplicado pode causar dor intensa, contrações musculares involuntárias e fibrilação cardíaca8. Também aumenta a atividade da creatina quinase (CK), diminui a força muscular e induz o desenvolvimento de dor muscular de início tardio (DOMS)16. O nsPEF é uma técnica emergente que estimula cobaias com campos elétricos de alta voltagem dentro de uma duração de pulso de nanossegundos, e está gradualmente sendo usada em pesquisas em nível celular17,18. Estudos anteriores relataram que a possível justificativa do nsPEF promover a proliferação celular e a atividade das organelas é a formação de nanoporos de membrana e a ativação de canais iônicos, o que leva a um aumento na concentração citoplasmática de Ca2+ 19. O nsPEF utiliza a tecnologia de energia de pulso para carregar a membrana celular, produzindo pulsos caracterizados por curta duração, tempo de subida rápido, alta potência e baixa densidade de energia20. Essas características sugerem que o nsPEF pode ser um modo preferido com efeitos colaterais mínimos de estimulação8. Além disso, o nsPEF oferece vantagens como procedimentos minimamente invasivos, reversibilidade, ajuste e não destrutividade aos tecidos neurais em comparação com intervenções cirúrgicas. Uma das principais direções de pesquisa do nsPEF no campo biomédico é sua aplicação para ablação de tecido tumoral usando estimulação de campo elétrico de alta energia 21,22,23. Alguns resultados de pesquisas indicam que o 12-nsPEF pode estimular os nervos periféricos sem causar danos24. No entanto, atualmente, há evidências limitadas sobre a aplicação do nsPEF no campo da regeneração nervosa. Além disso, estimular SCs usando nsPEF é uma tentativa pioneira, contribuindo para mais pesquisas in vivo e clínicas. Este estudo explora se a estimulação nsPEF de SCs pode promover a regeneração nervosa e fornecer uma base confiável para pesquisas subsequentes aprofundadas e sistemáticas.

Protocol

1. Descongelamento de células RSC96 criopreservadas Descongele o criogênico contendo 1 mL de suspensão celular agitando-o rapidamente em banho-maria a 37 ° C e, em seguida, adicione-o a um tubo de centrífuga contendo 4-6 mL de meio de cultura completo e misture bem. Centrifugue a 1000 x g durante 3-5 min, elimine o sobrenadante e ressuspenda as células em 3 ml de meio de cultura completo. Adicionar a suspensão celular a um balão de cultura (ou cápsula) cont…

Representative Results

Campos elétricos pulsados de baixa intensidade estimulam a proliferação celularDe acordo com o ensaio CCK-8, a taxa de proliferação de RSC96 no grupo de 5 kV/cm foi significativamente mais rápida do que a das células do grupo controle. No entanto, à medida que os parâmetros aumentaram (20 kV/cm e 40 kV/cm), a taxa de proliferação foi instável, ainda menor do que a do grupo controle. A taxa de proliferação celular de células RSC96 no grupo 40 kV/cm foi significativamente menor do que no…

Discussion

Nos últimos anos, a aplicação do nsPEF tem experimentado um crescimento impulsionado, conforme relatado. O nsPEF tem um efeito altamente direcionado apenas na área desejada, fornecendo energia suficiente para tratar sem causar danos térmicos adicionais, tornando-o mais seguro para o corpo humano28. Essas características lhe conferem perspectivas translacionais promissoras no tratamento de tumores e regeneração nervosa. No entanto, alguns estudos propuseram algumas limitações do nsPEF. Co…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado pelo Projeto Nacional de Desenvolvimento de Instrumentos e Equipamentos Científicos Chave (NO.82027803).

Materials

Antifade mounting medium Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G1401
Anti-GFAP Mouse mAb Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB12100-100
Anti-Neurofilament heavy polypeptide Mouse mAb Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB12144-100
Anti-S100 beta Mouse mAb Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB14146-100
BSA Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GC305010
Coverslip Jiangsu Shitai experimental equipment Co., LTD 10212432C
CY3-labeled goat anti-mouse IgG Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD GB21302
DAPI Staining Reagent Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G1012
Decolorizing shaker Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD DS-2S100
High Voltage Power Supply for nsPEF Matsusada Precision Inc. AU-60P1.6-L
Histochemical pen Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G6100
Membrane breaking liquid Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G1204
Microscope slide Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G6012
Palm centrifuge Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD MS6000
PBS powdered Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD G0002
Pipette Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD
Positive fluorescence microscope Nikon, Japan NIKON ECLIPSE C1
Rabbit Anti-SOX10/AF488 Conjugated antibody Beijing Bioss Biotechnology Co., LTD BS-20563R-AF488
RSC96 Schwann cells Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD STCC30007G-1
scanister 3DHISTECH Pannoramic MIDI
Special cable for nsPEF Times Microwave Systems M17/78-RG217
Turbine mixer Wuhan Xavier Biotechnology Co., LTD MV-100

References

  1. Jing, W., et al. Study of electrical stimulation with different electric-field intensities in the regulation of the differentiation of PC12 cells. ACS Chem Neurosci. 10 (1), 348-357 (2018).
  2. Nocera, G., Jacob, C. Mechanisms of Schwann cell plasticity involved in peripheral nerve repair after injury. Cell Mol Life Sci. 77, 3977-3989 (2020).
  3. Aguilar, Z. . Nanomaterials for Medical Applications. , (2012).
  4. Xie, S., et al. Efficient generation of functional Schwann cells from adipose-derived stem cells in defined conditions. Cell Cycle. 16 (9), 841-851 (2017).
  5. Rosenbalm, T. N., Levi, N. H., Morykwas, M. J., Wagner, W. D. Electrical stimulation via repeated biphasic conducting materials for peripheral nerve regeneration. J Mater Sci Mater Med. 34 (11), 1-18 (2023).
  6. Daly, W. T., et al. Comparison and characterization of multiple biomaterial conduits for peripheral nerve repair. Biomaterials. 34 (34), 8630-8639 (2013).
  7. Lee, B. -. K., et al. End-to-side neurorrhaphy using an electrospun PCL/collagen nerve conduit for complex peripheral motor nerve regeneration. Biomaterials. 33 (35), 9027-9036 (2012).
  8. Kim, V., Gudvangen, E., Kondratiev, O., Redondo, L., Xiao, S., Pakhomov, A. G. Peculiarities of neurostimulation by intense nanosecond pulsed electric fields: how to avoid firing in peripheral nerve fibers. Int J Mol Sci. 22 (13), 7051 (2021).
  9. Assinck, P., Duncan, G. J., Hilton, B. J., Plemel, J. R., Tetzlaff, W. Cell transplantation therapy for spinal cord injury. Nat Neurosci. 20 (5), 637-647 (2017).
  10. Chen, Y. Y., McDonald, D., Cheng, C., Magnowski, B., Durand, J., Zochodne, D. W. Axon and Schwann cell partnership during nerve regrowth. J Neuropathol Exp Neurol. 64 (7), 613-622 (2005).
  11. Yi, S., et al. Tau modulates Schwann cell proliferation, migration and differentiation following peripheral nerve injury. J Cell Sci. 132 (6), (2019).
  12. Min, Q., Parkinson, D. B., Dun, X. Migrating Schwann cells direct axon regeneration within the peripheral nerve bridge. Glia. 69 (2), 235-254 (2021).
  13. Zhang, Y., Zhao, Q., Chen, Q., Xu, L., Yi, S. Transcriptional control of peripheral nerve regeneration. Mol Neurobiol. 60 (1), 329-341 (2023).
  14. Nishi, M., Kawata, M., Azmitia, E. C. Trophic interactions between brain-derived neurotrophic factor and S100β on cultured serotonergic neurons. Brain Res. 868 (1), 113-118 (2000).
  15. Gu, Y., et al. miR-sc8 inhibits Schwann cell proliferation and migration by targeting EGFR. PLoS One. 10 (12), e0145185 (2015).
  16. Dong, H. -. L., et al. AMPK regulates mitochondrial oxidative stress in C2C12 myotubes induced by electrical stimulations of different intensities. Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao. 38 (6), 742-747 (2018).
  17. Beebe, S. J., Blackmore, P. F., White, J., Joshi, R. P., Schoenbach, K. H. Nanosecond pulsed electric fields modulate cell function through intracellular signal transduction mechanisms. Physiol Meas. 25 (4), 1077 (2004).
  18. Haberkorn, I., Siegenthaler, L., Buchmann, L., Neutsch, L., Mathys, A. Enhancing single-cell bioconversion efficiency by harnessing nanosecond pulsed electric field processing. Biotechnol Adv. 53, 107780 (2021).
  19. Ruiz-Fernández, A. R., Campos, L., Gutierrez-Maldonado, S. E., Núñez, G., Villanelo, F., Perez-Acle, T. Nanosecond pulsed electric field (nsPEF): Opening the biotechnological Pandora’s box. Int J Mol Sci. 23 (11), 6158 (2022).
  20. Nuccitelli, R., et al. First-in-human trial of nanoelectroablation therapy for basal cell carcinoma: proof of method. Exp Dermatol. 23 (2), 135-137 (2014).
  21. Nuccitelli, R., et al. Non-thermal nanoelectroablation of UV-induced murine melanomas stimulates an immune response. Pigment Cell Melanoma Res. 25 (5), 618-629 (2012).
  22. Carr, L., et al. A nanosecond pulsed electric field (nsPEF) can affect membrane permeabilization and cellular viability in a 3D spheroids tumor model. Bioelectrochemistry. 141, 107839 (2021).
  23. Hornef, J., Edelblute, C. M., Schoenbach, K. H., Heller, R., Guo, S., Jiang, C. Thermal analysis of infrared irradiation-assisted nanosecond-pulsed tumor ablation. Sci Rep. 10 (1), 5122 (2020).
  24. Zuo, K. J., Gordon, T., Chan, K. M., Borschel, G. H. Electrical stimulation to enhance peripheral nerve regeneration: Update in molecular investigations and clinical translation. Exp Neurol. 332, 113397 (2020).
  25. Juckett, L., Saffari, T. M., Ormseth, B., Senger, J. -. L., Moore, A. M. The effect of electrical stimulation on nerve regeneration following peripheral nerve injury. Biomolecules. 12 (12), 1856 (2022).
  26. Jessen, K. R., Mirsky, R. Negative regulation of myelination: relevance for development, injury, and demyelinating disease. Glia. 56 (14), 1552-1565 (2008).
  27. Chen, Z. -. L., Yu, W. -. M., Strickland, S. Peripheral regeneration. Annu Rev Neurosci. 30, 209-233 (2007).
  28. Yin, D., et al. Cutaneous papilloma and squamous cell carcinoma therapy utilizing nanosecond pulsed electric fields (nsPEF). PloS One. 7 (8), e43891 (2012).
  29. Qi, F., et al. Photoexcited wireless electrical stimulation elevates nerve cell growth. Colloids Surf B Biointerfaces. 220, 112890 (2022).
  30. Mi, Y., Liu, Q., Li, P., Xu, J., Yang, Q., Tang, J. Targeted gold nanorods combined with low-intensity nsPEFs enhance antimelanoma efficacy in vitro. Nanotechnology. 31 (35), 355102 (2020).
  31. Ho, T. -. C., et al. Hydrogels: Properties and applications in biomedicine. Molecules. 27 (9), 2902 (2022).

Play Video

Cite This Article
Han, J., Wang, Z., Dong, Y., Zou, X., Wang, H., Chen, Y., Abdalbary, S. A., Tu, T., Lu, H. Regulating Schwann Cell Growth by Nanosecond Pulsed Electric Field for Peripheral Nerve Regeneration In Vitro. J. Vis. Exp. (207), e66097, doi:10.3791/66097 (2024).

View Video