Summary

Ein automatisiertes Kultursystem zur Erhaltung und Differenzierung von humanen induzierten pluripotenten Stammzellen

Published: January 26, 2024
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Summary

Hier stellen wir ein Protokoll für ein automatisiertes Zellkultursystem vor. Dieses automatisierte Kultursystem reduziert den Arbeitsaufwand und kommt den Anwendern zugute, einschließlich Forschern, die mit dem Umgang mit induzierten pluripotenten Stammzellen (iPS-Zellen) nicht vertraut sind, von der Wartung von iPS-Zellen bis hin zur Differenzierung in verschiedene Zelltypen.

Abstract

Es wird erwartet, dass humane induzierte pluripotente Stammzellen (hiPSCs) mit unendlicher Selbstproliferationsfähigkeit in zahlreichen Bereichen Anwendung finden, darunter die Aufklärung seltener Krankheiten, die Entwicklung neuer Medikamente und die regenerative Medizin zur Wiederherstellung geschädigter Organe. Trotzdem ist die gesellschaftliche Umsetzung von hiPSCs noch begrenzt. Dies liegt zum Teil daran, dass es schwierig ist, die Differenzierung in der Kultur zu reproduzieren, selbst mit fortgeschrittenem Wissen und ausgefeilten technischen Fähigkeiten, was auf die hohe Empfindlichkeit von iPS-Zellen gegenüber winzigen Umweltveränderungen zurückzuführen ist. Die Anwendung eines automatisierten Kultursystems kann dieses Problem lösen. Experimente mit hoher Reproduzierbarkeit, unabhängig von den Fähigkeiten eines Forschers, können nach einem gemeinsamen Verfahren über verschiedene Institute hinweg erwartet werden. Obwohl bereits mehrere automatisierte Kultursysteme entwickelt wurden, die iPSC-Kulturen aufrechterhalten und eine Differenzierung induzieren können, sind diese Systeme schwer, groß und kostspielig, da sie humanisierte, mehrgliedrige Roboterarme verwenden. Um die oben genannten Probleme zu verbessern, haben wir ein neues System entwickelt, das ein einfaches G-Y-Z-Achsen-Gleitschienensystem verwendet, das es kompakter, leichter und kostengünstiger macht. Darüber hinaus kann der Benutzer Parameter im neuen System einfach ändern, um neue Handhabungsaufgaben zu entwickeln. Sobald eine Aufgabe eingerichtet ist, muss der Benutzer nur noch den iPSC vorbereiten, die für die gewünschte Aufgabe benötigten Reagenzien und Verbrauchsmaterialien im Voraus bereitstellen, die Aufgabennummer auswählen und die Uhrzeit angeben. Wir bestätigten, dass das System iPS-Zellen über mehrere Passagen ohne Feederzellen in einem undifferenzierten Zustand halten und sich in verschiedene Zelltypen differenzieren kann, darunter Kardiomyozyten, Hepatozyten, neurale Vorläuferzellen und Keratinozyten. Das System wird hochgradig reproduzierbare Experimente zwischen Institutionen ermöglichen, ohne dass qualifizierte Forscher erforderlich sind, und es wird die soziale Implementierung von hiPSCs in einem breiteren Spektrum von Forschungsfeldern erleichtern, indem es die Hindernisse für neue Markteintritte verringert.

Introduction

Dieser Artikel zielt darauf ab, aktuelle und detaillierte Handhabungsverfahren für ein automatisiertes Kultursystem für humane induzierte pluripotente Stammzellen (iPSC), das wir in Zusammenarbeit mit einem Unternehmen hergestellt haben, vorzustellen und repräsentative Ergebnisse zu zeigen.

Seit der Veröffentlichung des Artikels im Jahr 2007 erregt iPSC weltweit Aufmerksamkeit1. Aufgrund seiner größten Eigenschaft, sich in jede Art von Körperzellen differenzieren zu können, wird erwartet, dass es in verschiedenen Bereichen wie der regenerativen Medizin, der Aufklärung der Ursachen hartnäckiger Krankheiten und der Entwicklung neuer therapeutischer Medikamente eingesetzt wird 2,3. Darüber hinaus könnte die Verwendung von humanen iPSC-abgeleiteten somatischen Zellen Tierversuche reduzieren, die erheblichen ethischen Einschränkungen unterliegen. Obwohl ständig zahlreiche homogene iPS-Zellen benötigt werden, um neue Methoden mit iPS-Zellen zu erforschen, ist es zu aufwendig, diese zu verwalten. Darüber hinaus ist die Handhabung von iPSC aufgrund seiner hohen Empfindlichkeit, selbst gegenüber subtilen kulturellen und umweltbedingten Veränderungen, schwierig.

Um dieses Problem zu lösen, wird erwartet, dass automatisierte Kultursysteme anstelle von Menschen Aufgaben übernehmen. Einige Gruppen haben einige automatisierte humane pluripotente Stammzellkultursysteme für die Zellerhaltung und -differenzierung entwickelt und ihre Ergebnisse veröffentlicht 4,5,6. Diese Systeme sind mit mehrgelenkigen Roboterarmen ausgestattet. Roboterarme haben nicht nur den Vorteil, dass sie die Bewegungen des menschlichen Arms in hohem Maße nachahmen, sondern auch den Vorteil, dass sie höhere Kosten für die Arme, eine größere und schwerere Systemverpackung und zeitaufwändige Schulungsanstrengungen durch die Ingenieure erfordern, um die gezielten Bewegungen zu erhalten 7,8. Um die Einführung des Apparats in mehr Forschungseinrichtungen an den Punkten des wirtschaftlichen, räumlichen und personellen Verbrauchs zu erleichtern, haben wir ein neuartiges automatisiertes Kultursystem für die Aufrechterhaltung und Differenzierung von iPSC in verschiedene Zelltypen entwickelt9.

Unsere Begründung für das neue System war die Verwendung eines X-Y-Z-Achsen-Schienensystems anstelle von Roboterarmen mit mehreren Gelenken9. Um die komplexen handähnlichen Funktionen von Roboterarmen zu ersetzen, haben wir eine neue Idee auf dieses System angewendet, das automatisch drei Arten von spezifischen funktionalen Armspitzen wechseln kann. Hier zeigen wir auch, wie Benutzer Aufgabenpläne mit einfachen Aufträgen in der Software erstellen können, da während des gesamten Prozesses keine Anforderungen an die Beiträge der Ingenieure gestellt werden müssen.

Eines der Roboterkultursysteme hat die Herstellung von Embryoidkörpern unter Verwendung von 96-Well-Platten als 3D-Zellaggregate zur Differenzierung demonstriert4. Das hier beschriebene System kann keine 96-Well-Platten verarbeiten. Eine davon erreichte die derzeitige Qualität der guten Herstellungspraxis (cGMP) unter Verwendung einer Zelllinie, obwohl es sich nicht um eine humane pluripotente Stammzelle handelte5. Das hier beschriebene automatisierte Kultursystem wurde nun speziell mit dem Ziel entwickelt, Laborexperimente zu unterstützen (Abbildung 1). Es verfügt jedoch über genügend Systeme, um saubere Werte zu halten, die einer Sicherheitswerkbank der Stufe IV entsprechen.

Protocol

Die Ethikkommission der Kansai Medical University genehmigte die Generierung und Verwendung der gesunden iPS-Zellen aus Freiwilligen mit dem Namen KMUR001 (Zulassung Nr. 2020197). Der Spender, der offen rekrutiert wurde, gab eine formelle Einverständniserklärung ab und stimmte der wissenschaftlichen Verwendung der Zellen zu. HINWEIS: Die aktuelle Benutzeroberfläche (die spezielle Software mit dem Namen “ccssHMI”, die unter dem Betriebssystem Windows XP läuft) ist der grundlegende Bedienbil…

Representative Results

Erhaltung humaner induzierter pluripotenter StammzellenWir haben drei hPSC-Linien (RIKEN-2F, 253G1 und KMUR001) verwendet. Wir haben das Wartungsprotokoll durch täglich manuell durchgeführte Experimente optimiert und die detaillierten Programme durch die sieben Vorversuche, die das System durchführt, weiter optimiert. Zum Beispiel sind die Scherspannungen, die durch die Flüssigkeitsgeschwindigkeiten des Spießflusses von verschiedenen Pipetten verursacht werden, die von Menschen und dem System ge…

Discussion

Ein wichtiger Schritt im Protokoll besteht darin, dass ein Benutzer, wenn er Fehler findet, jederzeit auf die Schaltfläche “Abbrechen”, “Beenden” oder “Zurücksetzen” klicken und mit dem ersten Schritt beginnen kann. Die Software kann menschliche Fehler vermeiden, wie z. B. Doppelbuchungen, das Öffnen von Türen, während die Systemaufgaben aktiv sind, und mangelnden Nachschub. Ein weiterer kritischer Punkt für eine erfolgreiche und effiziente Differenzierung zur gewünschten somatischen Zelle ist die richtige Auswahl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Studie wurde durch einen Zuschuss des New Business Promotion Center, Panasonic Production Engineering Co., Ltd., Osaka, Japan, unterstützt.

Materials

0.15% bovine serum albumin fraction V Fuji Film Wako Chemical Inc., Miyazaki, Japan 9048-46-8
1% GlutaMAX Thermo Fisher Scientific 35050061
10 cm plastic plates  Corning Inc., NY, United States 430167
253G1 RKEN Bioresource Research Center HPS0002
2-mercaptoethanol Thermo Fisher Scientific 21985023
Actinin  mouse Abcam ab9465
Activin A  Nacali Tesque 18585-81
Adenine Thermo Fisher Scientific A14906.30
Albumin  rabbit Dako A0001
All-trans retinoic acid Fuji Film Wako Chemical Inc.  186-01114
Automated culture system Panasonic
B-27 supplement Thermo Fisher Scientific 17504044
bFGF Fuji Film Wako Chemical Inc.  062-06661
BMP4  Thermo Fisher Scientific PHC9531
Bovine serum albumin Merck 810037
CHIR-99021  MCE, NJ, United States #HY-10182 252917-06-9
Defined Keratinocyte-SFM Thermo Fisher Scientific 10744019 Human keratinocyte medium
Dexamethasone Merck 266785
Dihexa  TRC, Ontario, Canada 13071-60-8 rac-1,2-Dihexadecylglycerol
Disposable hemocytometer CountessTM Cell Counting Chamber Slides, Thermo Fisher Scientific C10228
Dorsomorphin Thermo Fisher Scientific 1219168-18-9
Dulbecco’s modified Eagle medium/F12  Fuji Film Wako Chemical Inc. 12634010
EGF Fuji Film Wako Chemical Inc.  053-07751
Essential 8  Thermo Fisher Scientific A1517001 Human pluripotent stem cell medium
Fetal bovine serum  Biowest, FL, United States S140T
FGF-basic  Nacalai Tesque Inc. 19155-07
Forskolin Thermo Fisher Scientific J63292.MF
Glutamine Thermo Fisher Scientific 25030081 Glutamine supplement
Goat IgG(H+L) AlexaFluo546 Thermo Scientific A11056
HNF-4A  goat Santacruz 6556
Hydrocortisone Thermo Fisher Scientific A16292.06
Hydrocortisone 21-hemisuccinate Merck H2882
iMatrix511 Silk  Nippi Inc., Tokyo, Japan 892 021 Cell culture matrix
Insulin-transferrin-selenium Thermo Fisher Scientific 41400045
Keratin 1  mouse Santacruz 376224
Keratin 10  rabbit BioLegend 19054
KMUR001 Kansai Medical University  Patient-derived iPSCs 
Knockout serum replacement Thermo Fisher Scientific 10828010
L-ascorbic acid 2-phosphate  A8960, Merck A8960
Leibovitz’s L-15 medium  Fuji Film Wako Chemical Inc. 128-06075
Matrigel Corning Inc. 354277
Mouse IgG(H+L) AlexaFluo488 Thermo Scientific A21202
N-2 supplement Thermo Fisher Scientific 17502048
Nestin mouse Santacruz 23927
Neurobasal medium Thermo Fisher Scientific 21103049
Neurofilament  rabbit Chemicon AB1987
Neutristem Sartrius AG, Göttingen, Germany 05-100-1A cell culture medium 
Oct 3/4  mouse BD 611202
PBS(-) Nacalai Tesque Inc., Kyoto, Japan 14249-24
Rabbit IgG(H+L) AlexaFluo488 Thermo Scientific A21206
Rabbit IgG(H+L) AlexaFluo546 Thermo Scientific A10040
Recombinant human albumin  A0237, Merck, Darmstadt, Germany A9731
Rho kinase inhibitor, Y-27632  Sellec Inc., Tokyo, Japan 129830-38-2
RIKEN 2F RKEN Bioresource Research Center HPS0014 undifferentiated hiPSCs 
RPMI 1640  Thermo Fisher Scientific #11875 12633020
SB431542 Thermo Fisher Scientific 301836-41-9
Sodium L-ascorbate Merck A4034-100G
SSEA-4  mouse Millipore MAB4304
StemFit AK02N  Ajinomoto, Tokyo, Japan AK02 cell culture medium 
TnT rabbit Abcam ab92546
TRA 1-81 mouse Millipore MAB4381
Triiodothyronine Thermo Fisher Scientific H34068.06
TripLETM express enzyme  Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, United States 12604013
Trypan blue solution  Nacalai Tesque, Kyoto, Japan 20577-34
Tryptose phosphate broth Merck T8782-500G
Wnt-C59  Bio-techne, NB, United Kingdom 5148
β Equation 1 Tublin  mouse Promega G712A

References

  1. Okita, K., et al. A more efficient method to generate integration-free human iPS cells. Nature Methods. 8 (5), 409-412 (2011).
  2. Tanaka, T., et al. In vitro pharmacologic testing using human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Biochemical and Biophysical Research Communications. 385 (4), 497-502 (2009).
  3. Egashira, T., et al. Disease characterization using LQTS-specific induced pluripotent stem cells. Cardiovascular Research. 95 (4), 419-429 (2012).
  4. Sasamata, M., et al. Establishment of a robust platform for induced pluripotent stem cell research using Maholo LabDroid. SLAS technology. 26 (5), 441-453 (2021).
  5. Tristan, C. A., et al. Robotic high-throughput biomanufacturing and functional differentiation of human pluripotent stem cells. Stem Cell Reports. 16 (12), 3076-3092 (2021).
  6. Konagaya, S., Ando, T., Yamauchi, T., Suemori, H., Iwata, H. Long-term maintenance of human induced pluripotent stem cells by automated cell culture system. Scientific Reports. 5, 16647 (2015).
  7. McClymont, D. W., Freemont, P. S. With all due respect to Maholo, lab automation isn’t anthropomorphic. Nature Biotechnology. 35 (4), 312-314 (2017).
  8. Gonzalez, F., Zalewski, J. Teaching joint-level robot programming with a new robotics software tool. Robotics. 6 (4), 41 (2017).
  9. Bando, K., Yamashita, H., Tsumori, M., Minoura, H., Okumura, K., Hattori, F. Compact automated culture system for human induced pluripotent stem cell maintenance and differentiation. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 10, 1074990 (2022).
  10. Tohyama, S., et al. Glutamine oxidation is indispensable for survival of human pluripotent stem cells. Cell Metabolism. 23 (4), 663-674 (2016).
  11. Yamashita, H., Fukuda, K., Hattori, F. Hepatocyte-like cells derived from human pluripotent stem cells can be enriched by a combination of mitochondrial content and activated leukocyte cell adhesion molecule. JMA journal. 2 (2), 174-183 (2019).
  12. Shimojo, D., et al. Rapid, efficient and simple motor neuron differentiation from human pluripotent stem cells. Molecular Brain. 8 (1), 79 (2015).
  13. Nishimoto, R., Kodama, C., Yamashita, H., Hattori, F. Human induced pluripotent stem cell-derived keratinocyte-like cells for research on Protease-Activated Receptor 2 in nonhistaminergic cascades of atopic dermatitis. The Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 384 (2), 248-253 (2023).
  14. International Stem Cell Initiative. Screening ethnically diverse human embryonic stem cells identifies a chromosome 20 minimal amplicon conferring growth advantage. Nature Biotechnology. 29 (12), 1132-1144 (2011).
  15. Keller, A., et al. Genetic and epigenetic factors which modulate differentiation propensity in human pluripotent stem cells. Human Reproduction Update. 24 (2), 162-175 (2018).

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Cite This Article
Bando, K., Yamashita, H., Hattori, F. An Automated Culture System for Maintaining and Differentiating Human-Induced Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (203), e65672, doi:10.3791/65672 (2024).

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