Aquí, describimos una configuración de pinza magnética de alta velocidad que realiza mediciones nanomecánicas en biomoléculas sensibles a la fuerza a la velocidad máxima de 1.2 kHz. Introducimos su aplicación a horquillas de ADN y complejos SNARE como sistemas modelo, pero también será aplicable a otras moléculas involucradas en eventos mecanobiológicos.
Las pinzas magnéticas (MT) de una sola molécula han servido como herramientas poderosas para interrogar con fuerza a las biomoléculas, como los ácidos nucleicos y las proteínas, y por lo tanto están preparadas para ser útiles en el campo de la mecanobiología. Dado que el método comúnmente se basa en el seguimiento basado en imágenes de perlas magnéticas, el límite de velocidad en la grabación y análisis de imágenes, así como las fluctuaciones térmicas de las perlas, ha obstaculizado durante mucho tiempo su aplicación en la observación de cambios estructurales pequeños y rápidos en las moléculas objetivo. Este artículo describe métodos detallados para la construcción y operación de una configuración de MT de alta resolución que puede resolver la dinámica de milisegundos a nanoescala de biomoléculas y sus complejos. Como ejemplos de aplicación, se demuestran experimentos con horquillas de ADN y complejos SNARE (maquinaria de fusión de membranas), centrándose en cómo se pueden detectar sus estados transitorios y transiciones en presencia de fuerzas a escala de piconewton. Esperamos que las MT de alta velocidad continúen permitiendo mediciones nanomecánicas de alta precisión en moléculas que detectan, transmiten y generan fuerzas en las células y, por lo tanto, profundicen nuestra comprensión a nivel molecular de la mecanobiología.
Las células detectan y responden activamente a estímulos mecánicos. Al hacerlo, muchas biomoléculas muestran propiedades dependientes de la fuerza que permiten cambios estructurales dinámicos. Ejemplos bien apreciados incluyen canales iónicos mecanosensibles y elementos citoesqueléticos que proporcionan a las células información mecánica clave de su entorno.
Además, las moléculas que muestran una naturaleza única de soporte de fuerza también pueden considerarse mecanosensibles en un sentido más amplio. Por ejemplo, la formación local y la fusión de dúplex de ácidos nucleicos, así como estructuras de orden superior como los cuádruples G, desempeñan un papel crucial en la replicación, transcripción, recombinación y, más recientemente, en la edición del genoma. Además, algunas proteínas neuronales implicadas en las comunicaciones sinápticas realizan sus funciones generando fuerzas físicas que superan los niveles de interacciones intermoleculares típicas. No importa qué ejemplo se estudie, la investigación de la nanomecánica de las biomoléculas involucradas con alta precisión espaciotemporal resultará muy útil para revelar los mecanismos moleculares de los procesos mecanobiológicos asociados 1,2,3.
Los métodos de espectroscopia de fuerza de molécula única han servido como herramientas poderosas para examinar las propiedades mecánicas de las biomoléculas 2,4,5,6. Pueden monitorear los cambios estructurales en ácidos nucleicos y proteínas simultáneamente con la aplicación de fuerza, examinando así las propiedades dependientes de la fuerza. Dos configuraciones bien conocidas son las pinzas ópticas y las pinzas magnéticas (MT), que emplean perlas de tamaño micrométrico para manipular moléculas 5,6,7,8. En estas plataformas, el poliestireno (para pinzas ópticas) o las perlas magnéticas (para MT) están atados a moléculas objetivo (por ejemplo, ácidos nucleicos y proteínas) a través de “mangos” moleculares, típicamente hechos de fragmentos cortos de ADN bicatenario (dsDNA). Luego, las perlas se mueven para ejercer fuerza y se obtienen imágenes para rastrear sus ubicaciones que informan sobre cambios estructurales en las moléculas objetivo. Las pinzas ópticas y magnéticas son en gran medida intercambiables en sus aplicaciones, pero existen diferencias importantes en sus enfoques para controlar la fuerza. Las pinzas ópticas son instrumentos intrínsecamente de abrazadera de posición que atrapan cuentas en posición, debido a lo cual la fuerza aplicada fluctúa cuando una construcción objetivo sufre cambios de forma; El aumento de extensión, como el despliegue, afloja la correa y reduce la tensión, y viceversa. Aunque se puede implementar retroalimentación activa para controlar la fuerza en las pinzas ópticas, las MT, en contraste, operan naturalmente como un dispositivo de abrazadera de fuerza, aprovechando las fuerzas magnéticas estables y de campo lejano mediante imanes permanentes, que también pueden soportar perturbaciones ambientales.
A pesar de su larga historia y diseño simple, los MT se han quedado atrás de las pinzas ópticas en sus aplicaciones a mediciones de alta precisión, en gran parte debido a los desafíos técnicos en el seguimiento rápido de cuentas. Recientemente, sin embargo, varios grupos han liderado conjuntamente una mejora multifacética de hardware y software para instrumentos de MT 2,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18,19 . En este trabajo, presentamos un ejemplo de tal configuración que se ejecuta a 1.2 kHz y describimos cómo usarla para realizar mediciones nanomecánicas en biomoléculas sensibles a la fuerza. Como sistemas modelo, empleamos horquillas de ADN y complejos SNARE neuronales y examinamos sus rápidos cambios estructurales en el régimen de piconewton. Las horquillas de ADN exhiben transiciones simples de dos estados en un rango de fuerza bien definido20,21 y, por lo tanto, sirven como modelos de juguete para verificar el rendimiento de una configuración de pinzas. A medida que las proteínas SNARE se ensamblan en un complejo sensible a la fuerza que impulsa la fusión de membrana22, también han sido ampliamente estudiadas por espectroscopia de fuerza de molécula única 14,23,24,25. Se presentan enfoques estándar para analizar datos y extraer información útil sobre termodinámica y cinética. Esperamos que este artículo pueda facilitar la adopción de MT de alta precisión en estudios mecanobiológicos y motivar a los lectores a explorar sus propios sistemas de interés sensibles a la fuerza.
En este trabajo, introdujimos una configuración de espectroscopia de fuerza de molécula única que puede observar cambios estructurales de biomoléculas con alta precisión espaciotemporal. La cámara CMOS de alta velocidad utilizada adquiere 1.200 fotogramas s−1 a una resolución de 1.280 x 1.024, lo que permite el seguimiento de cuentas de 1,2 kHz. Sin embargo, la velocidad de las mediciones está actualmente limitada por el software de seguimiento de cuentas, por lo que el ROI generalmente se reduce a ?…
The authors have nothing to disclose.
Este trabajo fue apoyado por la subvención de la Fundación Nacional de Investigación de Corea (NRF) financiada por el gobierno coreano (MSIT) (NRF-2022R1C1C1012176, NRF-2021R1A4A1031754 y NRF- 2021R1A6A1A10042944). S.-H.R. fue apoyado por la subvención NRF (2021R1C1C2009717).
Materials for construct synthesis | |||
Agarose gel electrophoresis system | Advance | Mupid-2plus | |
DNA ladder | Bioneer | D-1037 | |
nTaq polymerase | Enzynomics | P050A | |
PCR purification kit | LaboPass | CMR0112 | |
PEGylated SMCC crosslinker / SM(PEG)2 | ThermoFisher Scientific | 22102 | For SNARE–DNA coupling |
Primer B | Bioneer | 5'-Biotin/TCGCCACCATCATTTCCA-3' | For 5-kbp force calibration construct and DNA handles |
Primer B_hp | IDT | 5'-Biotin/TTTTTTTTTTGTTCTCTATTT TTTTAGAGAAC /AP site/ /AP site/ TCGCCACCATCATTTCCA-3' |
For hairpin construct |
Primer N | Bioneer | 5'-C6Amine/CATGTGGGTGACGCGAAA-3' | For DNA handles |
Primer Z | Bioneer | 5'-Azide/TCGCCACCATCATTTCCA-3' | For DNA handles |
Primer Z_5k | Bioneer | 5'-Azide/TTAGAGAGTATGGGTATATGACA TCG-3' |
For 5-kbp force calibration construct |
Primer Z_hp | Bioneer | 5'-Azide/GTGGCAGCATGACACC-3' | For hairpin construct |
SYBR Safe DNA Gel Stain | ThermoFisher Scientific | S33102 | |
λ-DNA | Bioneer | D-2510 | Template strand for PCR |
DNA sequences for SNARE proteins | |||
6×His-tagged SNAP-25b (2-206; capitalized) in pET28a | homemade | tggcgaatgggacgcgccctgtagcggcgca ttaagcgcggcgggtgtggtggttacgcgca gcgtgaccgctacacttgccagcgccctagc gcccgctcctttcgctttcttcccttccttt ctcgccacgttcgccggctttccccgtcaag ctctaaatcgggggctccctttagggttccg atttagtgctttacggcacctcgaccccaaa aaacttgattagggtgatggttcacgtagtg ggccatcgccctgatagacggtttttcgccc tttgacgttggagtccacgttctttaatagt ggactcttgttccaaactggaacaacactca accctatctcggtctattcttttgatttata agggattttgccgatttcggcctattggtta aaaaatgagctgatttaacaaaaatttaacg cgaattttaacaaaatattaacgtttacaat ttcaggtggcacttttcggggaaatgtgcgc ggaacccctatttgtttatttttctaaatac attcaaatatgtatccgctcatgaattaatt cttagaaaaactcatcgagcatcaaatgaaa ctgcaatttattcatatcaggattatcaata ccatatttttgaaaaagccgtttctgtaatg aaggagaaaactcaccgaggcagttccatag gatggcaagatcctggtatcggtctgcgatt ccgactcgtccaacatcaatacaacctatta atttcccctcgtcaaaaataaggttatcaag tgagaaatcaccatgagtgacgactgaatcc ggtgagaatggcaaaagtttatgcatttctt tccagacttgttcaacaggccagccattacg ctcgtcatcaaaatcactcgcatcaaccaaa 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|
6×His-tagged VAMP2 (2-97, L32C/I97C; capitalized) in pET28a | homemade | tggcgaatgggacgcgccctgtagcggcgca ttaagcgcggcgggtgtggtggttacgcgca gcgtgaccgctacacttgccagcgccctagc gcccgctcctttcgctttcttcccttccttt ctcgccacgttcgccggctttccccgtcaag ctctaaatcgggggctccctttagggttccg atttagtgctttacggcacctcgaccccaaa aaacttgattagggtgatggttcacgtagtg ggccatcgccctgatagacggtttttcgccc tttgacgttggagtccacgttctttaatagt ggactcttgttccaaactggaacaacactca accctatctcggtctattcttttgatttata agggattttgccgatttcggcctattggtta aaaaatgagctgatttaacaaaaatttaacg cgaattttaacaaaatattaacgtttacaat ttcaggtggcacttttcggggaaatgtgcgc ggaacccctatttgtttatttttctaaatac attcaaatatgtatccgctcatgaattaatt cttagaaaaactcatcgagcatcaaatgaaa ctgcaatttattcatatcaggattatcaata ccatatttttgaaaaagccgtttctgtaatg aaggagaaaactcaccgaggcagttccatag gatggcaagatcctggtatcggtctgcgatt ccgactcgtccaacatcaatacaacctatta atttcccctcgtcaaaaataaggttatcaag tgagaaatcaccatgagtgacgactgaatcc ggtgagaatggcaaaagtttatgcatttctt tccagacttgttcaacaggccagccattacg ctcgtcatcaaaatcactcgcatcaaccaaa 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|
6×His-tagged ΔN-VAMP2 (49–96; capitalized) and Syntaxin-1A (191–267, I202C/I266C; capitalized) in pETDuet-1 | homemade | ggggaattgtgagcggataacaattcccctc tagaaataattttgtttaactttaagaagga gatataccATGGGCAGCAGCCATCA TCATCATCATCACAGCAGCGG CCTGGAAGTTCTGTTCCAGGG GCCCGGTAATGTGGACAAGGT CCTGGAGCGAGACCAGAAGCT ATCGGAACTGGATGATCGCGC AGATGCCCTCCAGGCAGGGGC CTCCCAGTTTGAAACAAGTGC AGCCAAGCTCAAGCGCAAATAC TGGTGGAAAAACCTCAAGATGAT GTAAgcggccgcataatgcttaagtcgaaca gaaagtaatcgtattgtacacggccgcataa tcgaaattaatacgactcactataggggaat tgtgagcggataacaattccccatcttagta tattagttaagtataagaaggagatatacat ATGGCCCTCAGTGAGATCGAGA CCAGGCACAGTGAGTGCATC AAGTTGGAGAACAGCATCCG GGAGCTACACGATATGTTCAT GGACATGGCCATGCTGGTGG AGAGCCAGGGGGAGATGATT GACAGGATCGAGTACAATGTG GAACACGCTGTGGACTACGTG GAGAGGGCCGTGTCTGACACC AAGAAGGCCGTCAAGTACCAG AGCAAGGCACGCAGGAAGAA GTGCATGATCTAActcgagtc tggtaaagaaaccgctgctgcgaaatttgaa cgccagcacatggactcgtctactagcgcag cttaattaacctaggctgctgccaccgctga gcaataactagcataaccccttggggcctct aaacgggtcttgaggggttttttgctgaaag 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SNAP-25b (1–206, all C to A; capitalized) in pET28a | homemade | tggcgaatgggacgcgccctgtagcggcgca ttaagcgcggcgggtgtggtggttacgcgca gcgtgaccgctacacttgccagcgccctagc gcccgctcctttcgctttcttcccttccttt ctcgccacgttcgccggctttccccgtcaag ctctaaatcgggggctccctttagggttccg atttagtgctttacggcacctcgaccccaaa aaacttgattagggtgatggttcacgtagtg ggccatcgccctgatagacggtttttcgccc tttgacgttggagtccacgttctttaatagt ggactcttgttccaaactggaacaacactca accctatctcggtctattcttttgatttata agggattttgccgatttcggcctattggtta aaaaatgagctgatttaacaaaaatttaacg cgaattttaacaaaatattaacgtttacaat ttcaggtggcacttttcggggaaatgtgcgc ggaacccctatttgtttatttttctaaatac attcaaatatgtatccgctcatgaattaatt cttagaaaaactcatcgagcatcaaatgaaa ctgcaatttattcatatcaggattatcaata ccatatttttgaaaaagccgtttctgtaatg aaggagaaaactcaccgaggcagttccatag gatggcaagatcctggtatcggtctgcgatt ccgactcgtccaacatcaatacaacctatta atttcccctcgtcaaaaataaggttatcaag tgagaaatcaccatgagtgacgactgaatcc ggtgagaatggcaaaagtttatgcatttctt tccagacttgttcaacaggccagccattacg ctcgtcatcaaaatcactcgcatcaaccaaa 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Materials for protein purificaiton | |||
2-Mercaptoethanol | SIGMA | M3148-25ML | |
Agar | LPS Solution | AGA500 | |
Ampicillin, Sodium salt | PLS | AC1043-005-00 | |
Chloramphenicol | PLS | CR1023-050-00 | |
Competent cells (E. coli) | Novagen | 70956 | Rosetta(DE3)pLysS |
Glycerol | SIGMA | G5516-500ML | |
HEPES | SIGMA | H4034-100G | |
Hydrochloric acid / HCl | SIGMA | 320331-500ML | |
Imidazole | SIGMA | I2399-100G | |
Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside / IPTG | SIGMA | 10724815001 | |
Kanamycin Sulfate | PLS | KC1001-005-02 | |
Luria-Bertani (LB) Broth | LPS Solution | LB-05 | |
Ni-NTA resin | Qiagen | 30210 | |
PD MiniTrap G-25 (desalting column) | Cytiva | GE28-9180-07 | For instructions, see: https://www.cytivalifesciences.com/en/us/shop/chromatography/prepacked-columns/desalting-and-buffer-exchange/pd-minitrap-desalting-columns-with-sephadex-g-25-resin-p-06174 |
Phenylmethylsulfonyl fluoride / PMSF | ThermoFisher Scientific | 36978 | |
Plasmids for SNARE proteins | cloned in house | N/A | Available upon request |
Protease inhibitor cocktail | genDEPOT | P3100 | |
Sodium chloride | SIGMA | S5886-500G | |
Sodium phosphate dibasic / Na2HPO4 | SIGMA | S7907-100G | |
Sodium phosphate monobasic / NaH2PO4 | SIGMA | S3139-250G | |
Tris(2-carboxyethyl)phosphine / TCEP | SIGMA | C4706-2G | |
Trizma base | SIGMA | T1503-250G | |
Materials for sample assembly | |||
Biotin-PEG-SVA | LAYSAN BIO | BIO-PEG-SVA-5K-100MG & MPEG-SVA-5K-1g | For PEGylation |
Dibenzocyclooctyne-amine / DBCO-NH2 | SIGMA | 761540-10MG | For bead coating |
Double-sided tape | 3M | 136 | For flow cell assembly |
Epoxy glue | DEVCON | S-208 | For flow cell assembly |
Glass coverslip for bottom surface | VWR | 48393-251 | Rectangular, 60×24 mm, #1.5 |
Glass coverslip for top surface | VWR | 48393-241 | Rectangular, 50×24 mm, #1.5 |
Magnetic bead | ThermoFisher Scientific | 14301 | Dynabeads M-270 Epoxy, 2.8 μm |
mPEG-SVA | LAYSAN BIO | mPEG-SVA 1g | For PEGylation |
N,N-Dimethylformamide / DMF | SIGMA | D4551-250ML | For bead coating |
N-[3-(trimethoxysilyl)propyl]ethylenediamine | SIGMA | 104884-100ML | For PEGylation |
Neutravidin | ThermoFisher Scientific | 31000 | For sample tethering |
Phosphate buffered saline / PBS, pH 7.2 | PLS | PR2007-100-00 | |
Plastic syringe | Norm-ject | A5 | 5 ml, luer tip |
Polyethylene Tubing | SCI | BB31695-PE/4 | PE-60 |
Reference bead | SPHEROTECH | SVP-30-5 | Streptavidin-coated Polystyrene Particles; 3.0-3.4 µm |
Syringe needle | Kovax | 21G-1 1/4'' | 21 G |
Syringe pump | KD SCIENTIFIC | 788210 | |
Equipment for magnetic tweezer instrument | |||
1-axis motorized microtranslation stage | PI | M-126.PD1 | For vertical positioning of magnets |
2-axis manual translation stage | ST1 | LEE400 | For alignment of magnets to the optical axis |
Acrylic holder for magnets | DaiKwang Precision | custum order | Drawing available upon request |
Frame grabber | Active Silicon | AS-FBD-4XCXP6-2PE8 | |
High-speed CMOS camera | Mikrotron | EoSens 3CXP | |
Inverted microscope | Olympus | IX73P2F-1-2 | |
Neodymium magnets | LG magnet | ND 10x10x12t | Dimension: 10 mm × 10 mm × 12 mm; two needed |
Objective lens | Olympus | UPLXAPO100XO | Oil-immersion, NA 1.45 |
Objective lens nanopositioner | Mad City Labs | Nano-F100S | |
Rotation stepper motor | AUTONICS | A3K-S545W | For rotating magnets |
Superluminescent diode | QPHOTONICS | QSDM-680-2 | 680 nm |
Software | |||
LabVIEW | National Instruments | v20.0f1 | |
MATLAB | MathWorks | v2021a |