Summary

Pinzas magnéticas de alta velocidad para mediciones nanomecánicas en elementos sensibles a la fuerza

Published: May 12, 2023
doi:

Summary

Aquí, describimos una configuración de pinza magnética de alta velocidad que realiza mediciones nanomecánicas en biomoléculas sensibles a la fuerza a la velocidad máxima de 1.2 kHz. Introducimos su aplicación a horquillas de ADN y complejos SNARE como sistemas modelo, pero también será aplicable a otras moléculas involucradas en eventos mecanobiológicos.

Abstract

Las pinzas magnéticas (MT) de una sola molécula han servido como herramientas poderosas para interrogar con fuerza a las biomoléculas, como los ácidos nucleicos y las proteínas, y por lo tanto están preparadas para ser útiles en el campo de la mecanobiología. Dado que el método comúnmente se basa en el seguimiento basado en imágenes de perlas magnéticas, el límite de velocidad en la grabación y análisis de imágenes, así como las fluctuaciones térmicas de las perlas, ha obstaculizado durante mucho tiempo su aplicación en la observación de cambios estructurales pequeños y rápidos en las moléculas objetivo. Este artículo describe métodos detallados para la construcción y operación de una configuración de MT de alta resolución que puede resolver la dinámica de milisegundos a nanoescala de biomoléculas y sus complejos. Como ejemplos de aplicación, se demuestran experimentos con horquillas de ADN y complejos SNARE (maquinaria de fusión de membranas), centrándose en cómo se pueden detectar sus estados transitorios y transiciones en presencia de fuerzas a escala de piconewton. Esperamos que las MT de alta velocidad continúen permitiendo mediciones nanomecánicas de alta precisión en moléculas que detectan, transmiten y generan fuerzas en las células y, por lo tanto, profundicen nuestra comprensión a nivel molecular de la mecanobiología.

Introduction

Las células detectan y responden activamente a estímulos mecánicos. Al hacerlo, muchas biomoléculas muestran propiedades dependientes de la fuerza que permiten cambios estructurales dinámicos. Ejemplos bien apreciados incluyen canales iónicos mecanosensibles y elementos citoesqueléticos que proporcionan a las células información mecánica clave de su entorno.

Además, las moléculas que muestran una naturaleza única de soporte de fuerza también pueden considerarse mecanosensibles en un sentido más amplio. Por ejemplo, la formación local y la fusión de dúplex de ácidos nucleicos, así como estructuras de orden superior como los cuádruples G, desempeñan un papel crucial en la replicación, transcripción, recombinación y, más recientemente, en la edición del genoma. Además, algunas proteínas neuronales implicadas en las comunicaciones sinápticas realizan sus funciones generando fuerzas físicas que superan los niveles de interacciones intermoleculares típicas. No importa qué ejemplo se estudie, la investigación de la nanomecánica de las biomoléculas involucradas con alta precisión espaciotemporal resultará muy útil para revelar los mecanismos moleculares de los procesos mecanobiológicos asociados 1,2,3.

Los métodos de espectroscopia de fuerza de molécula única han servido como herramientas poderosas para examinar las propiedades mecánicas de las biomoléculas 2,4,5,6. Pueden monitorear los cambios estructurales en ácidos nucleicos y proteínas simultáneamente con la aplicación de fuerza, examinando así las propiedades dependientes de la fuerza. Dos configuraciones bien conocidas son las pinzas ópticas y las pinzas magnéticas (MT), que emplean perlas de tamaño micrométrico para manipular moléculas 5,6,7,8. En estas plataformas, el poliestireno (para pinzas ópticas) o las perlas magnéticas (para MT) están atados a moléculas objetivo (por ejemplo, ácidos nucleicos y proteínas) a través de “mangos” moleculares, típicamente hechos de fragmentos cortos de ADN bicatenario (dsDNA). Luego, las perlas se mueven para ejercer fuerza y se obtienen imágenes para rastrear sus ubicaciones que informan sobre cambios estructurales en las moléculas objetivo. Las pinzas ópticas y magnéticas son en gran medida intercambiables en sus aplicaciones, pero existen diferencias importantes en sus enfoques para controlar la fuerza. Las pinzas ópticas son instrumentos intrínsecamente de abrazadera de posición que atrapan cuentas en posición, debido a lo cual la fuerza aplicada fluctúa cuando una construcción objetivo sufre cambios de forma; El aumento de extensión, como el despliegue, afloja la correa y reduce la tensión, y viceversa. Aunque se puede implementar retroalimentación activa para controlar la fuerza en las pinzas ópticas, las MT, en contraste, operan naturalmente como un dispositivo de abrazadera de fuerza, aprovechando las fuerzas magnéticas estables y de campo lejano mediante imanes permanentes, que también pueden soportar perturbaciones ambientales.

A pesar de su larga historia y diseño simple, los MT se han quedado atrás de las pinzas ópticas en sus aplicaciones a mediciones de alta precisión, en gran parte debido a los desafíos técnicos en el seguimiento rápido de cuentas. Recientemente, sin embargo, varios grupos han liderado conjuntamente una mejora multifacética de hardware y software para instrumentos de MT 2,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18,19 . En este trabajo, presentamos un ejemplo de tal configuración que se ejecuta a 1.2 kHz y describimos cómo usarla para realizar mediciones nanomecánicas en biomoléculas sensibles a la fuerza. Como sistemas modelo, empleamos horquillas de ADN y complejos SNARE neuronales y examinamos sus rápidos cambios estructurales en el régimen de piconewton. Las horquillas de ADN exhiben transiciones simples de dos estados en un rango de fuerza bien definido20,21 y, por lo tanto, sirven como modelos de juguete para verificar el rendimiento de una configuración de pinzas. A medida que las proteínas SNARE se ensamblan en un complejo sensible a la fuerza que impulsa la fusión de membrana22, también han sido ampliamente estudiadas por espectroscopia de fuerza de molécula única 14,23,24,25. Se presentan enfoques estándar para analizar datos y extraer información útil sobre termodinámica y cinética. Esperamos que este artículo pueda facilitar la adopción de MT de alta precisión en estudios mecanobiológicos y motivar a los lectores a explorar sus propios sistemas de interés sensibles a la fuerza.

Protocol

Todos los materiales y equipos descritos en este protocolo se enumeran en la Tabla de materiales. El software LabVIEW para operar la configuración de MT de alta velocidad que se describe a continuación, así como los scripts de MATLAB para analizar datos de muestra, se depositan en GitHub (https://github.com/ShonLab/Magnetic-Tweezers) y están disponibles públicamente. 1. Construcción de aparatos NOTA: El principio general de la c…

Representative Results

Calibración de fuerzaLos resultados de los dos métodos de medición de fuerza (varianza de desplazamiento lateral de las perlas y análisis del espectro de potencia) difirieron en 0-2 pN (Figura 2G). De acuerdo con los resultados de la Figura 2F, podemos alcanzar de manera confiable hasta 30 pN con imanes de neodimio regulares. Transiciones de dos estados de una horquilla de ADN de 8 pbPrime…

Discussion

En este trabajo, introdujimos una configuración de espectroscopia de fuerza de molécula única que puede observar cambios estructurales de biomoléculas con alta precisión espaciotemporal. La cámara CMOS de alta velocidad utilizada adquiere 1.200 fotogramas s−1 a una resolución de 1.280 x 1.024, lo que permite el seguimiento de cuentas de 1,2 kHz. Sin embargo, la velocidad de las mediciones está actualmente limitada por el software de seguimiento de cuentas, por lo que el ROI generalmente se reduce a ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por la subvención de la Fundación Nacional de Investigación de Corea (NRF) financiada por el gobierno coreano (MSIT) (NRF-2022R1C1C1012176, NRF-2021R1A4A1031754 y NRF- 2021R1A6A1A10042944). S.-H.R. fue apoyado por la subvención NRF (2021R1C1C2009717).

Materials

Materials for construct synthesis
Agarose gel electrophoresis system Advance Mupid-2plus
DNA ladder Bioneer D-1037
nTaq polymerase Enzynomics P050A
PCR purification kit LaboPass CMR0112
PEGylated SMCC crosslinker / SM(PEG)2 ThermoFisher Scientific 22102 For SNARE–DNA coupling
Primer B Bioneer 5'-Biotin/TCGCCACCATCATTTCCA-3' For 5-kbp force calibration construct and DNA handles
Primer B_hp IDT 5'-Biotin/TTTTTTTTTTGTTCTCTATTT
TTTTAGAGAAC /AP site/ /AP site/ TCGCCACCATCATTTCCA-3'
For hairpin construct
Primer N Bioneer 5'-C6Amine/CATGTGGGTGACGCGAAA-3' For DNA handles
Primer Z Bioneer 5'-Azide/TCGCCACCATCATTTCCA-3' For DNA handles
Primer Z_5k Bioneer 5'-Azide/TTAGAGAGTATGGGTATATGACA
TCG-3'
For 5-kbp force calibration construct
Primer Z_hp Bioneer 5'-Azide/GTGGCAGCATGACACC-3' For hairpin construct
SYBR Safe DNA Gel Stain ThermoFisher Scientific S33102
λ-DNA Bioneer D-2510 Template strand for PCR
DNA sequences for SNARE proteins
6×His-tagged SNAP-25b (2-206; capitalized) in pET28a homemade tggcgaatgggacgcgccctgtagcggcgca
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6×His-tagged ΔN-VAMP2 (49–96; capitalized) and Syntaxin-1A (191–267, I202C/I266C; capitalized) in pETDuet-1 homemade ggggaattgtgagcggataacaattcccctc
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AGCTGGAGGAGATGCAGAGG
AGGGCTGACCAGCTGGCTGA
TGAGTCCCTGGAAAGCACCC
GTCGCATGCTGCAGCTGGTT
GAAGAGAGTAAAGATGCTGG
CATCAGGACTTTGGTTATGTT
GGATGAGCAAGGCGAACAAC
TGGAACGCATTGAGGAAGGG
ATGGACCAAATCAATAAGGAC
ATGAAAGAAGCAGAAAAGAAT
TTGACGGACCTAGGAAAATTC
GCCGGCCTTGCCGTGGCCCC
CGCCAACAAGCTTAAATCCAG
TGATGCTTACAAAAAAGCCTG
GGGCAATAATCAGGATGGAGT
AGTGGCCAGCCAGCCTGCCC
GTGTGGTGGATGAACGGGAG
CAGATGGCCATCAGTGGTGGC
TTCATCCGCAGGGTAACAAAT
GATGCCCGGGAAAATGAGATG
GATGAGAACCTGGAGCAGGT
GAGCGGCATCATCGGAAACCT
CCGCCACATGGCTCTAGACAT
GGGCAATGAGATTGACACCCA
GAATCGCCAGATCGACAGGAT
CATGGAGAAGGCTGATTCCAA
CAAAACCAGAATTGATGAAGC
CAACCAACGTGCAACAAAGAT
GCTGGGAAGTGGTTAA
ctcgagcaccaccaccaccaccactgag
atccggctgctaacaaagcccgaaagga
agctgagttggctgctgccaccgctgagc
aataactagcataaccccttggggcctc
taaacgggtcttgaggggttttttgctgaa
aggaggaactatatccggat
Materials for protein purificaiton
2-Mercaptoethanol SIGMA M3148-25ML
Agar LPS Solution AGA500
Ampicillin, Sodium salt PLS AC1043-005-00
Chloramphenicol PLS CR1023-050-00
Competent cells (E. coli) Novagen 70956 Rosetta(DE3)pLysS
Glycerol SIGMA G5516-500ML
HEPES SIGMA H4034-100G
Hydrochloric acid / HCl SIGMA 320331-500ML
Imidazole SIGMA I2399-100G
Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside / IPTG SIGMA 10724815001
Kanamycin Sulfate PLS KC1001-005-02
Luria-Bertani (LB) Broth LPS Solution LB-05
Ni-NTA resin Qiagen 30210
PD MiniTrap G-25 (desalting column) Cytiva GE28-9180-07 For instructions, see: https://www.cytivalifesciences.com/en/us/shop/chromatography/prepacked-columns/desalting-and-buffer-exchange/pd-minitrap-desalting-columns-with-sephadex-g-25-resin-p-06174
Phenylmethylsulfonyl fluoride / PMSF ThermoFisher Scientific 36978
Plasmids for SNARE proteins cloned in house N/A Available upon request
Protease inhibitor cocktail genDEPOT P3100
Sodium chloride SIGMA S5886-500G
Sodium phosphate dibasic / Na2HPO4 SIGMA S7907-100G
Sodium phosphate monobasic / NaH2PO4 SIGMA S3139-250G
Tris(2-carboxyethyl)phosphine / TCEP SIGMA C4706-2G
Trizma base SIGMA T1503-250G
Materials for sample assembly
Biotin-PEG-SVA LAYSAN BIO BIO-PEG-SVA-5K-100MG & MPEG-SVA-5K-1g For PEGylation
Dibenzocyclooctyne-amine / DBCO-NH2 SIGMA 761540-10MG For bead coating
Double-sided tape 3M 136 For flow cell assembly
Epoxy glue DEVCON S-208 For flow cell assembly
Glass coverslip for bottom surface VWR 48393-251 Rectangular, 60×24 mm, #1.5
Glass coverslip for top surface VWR 48393-241 Rectangular, 50×24 mm, #1.5
Magnetic bead ThermoFisher Scientific 14301 Dynabeads M-270 Epoxy, 2.8 μm
mPEG-SVA LAYSAN BIO mPEG-SVA 1g For PEGylation
N,N-Dimethylformamide / DMF SIGMA D4551-250ML For bead coating
N-[3-(trimethoxysilyl)propyl]ethylenediamine SIGMA 104884-100ML For PEGylation
Neutravidin ThermoFisher Scientific 31000 For sample tethering
Phosphate buffered saline / PBS, pH 7.2 PLS PR2007-100-00
Plastic syringe Norm-ject A5 5 ml, luer tip
Polyethylene Tubing SCI BB31695-PE/4 PE-60
Reference bead SPHEROTECH SVP-30-5 Streptavidin-coated Polystyrene Particles; 3.0-3.4 µm
Syringe needle Kovax 21G-1 1/4'' 21 G
Syringe pump KD SCIENTIFIC 788210
Equipment for magnetic tweezer instrument
1-axis motorized microtranslation stage PI M-126.PD1 For vertical positioning of magnets
2-axis manual translation stage ST1 LEE400 For alignment of magnets to the optical axis
Acrylic holder for magnets DaiKwang Precision custum order Drawing available upon request
Frame grabber Active Silicon AS-FBD-4XCXP6-2PE8
High-speed CMOS camera Mikrotron EoSens 3CXP
Inverted microscope Olympus IX73P2F-1-2
Neodymium magnets LG magnet ND 10x10x12t Dimension: 10 mm × 10 mm × 12 mm; two needed
Objective lens Olympus UPLXAPO100XO Oil-immersion, NA 1.45
Objective lens nanopositioner Mad City Labs Nano-F100S
Rotation stepper motor AUTONICS A3K-S545W For rotating magnets
Superluminescent diode QPHOTONICS QSDM-680-2 680 nm
Software
LabVIEW National Instruments v20.0f1
MATLAB MathWorks v2021a

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Park, C., Yang, T., Rah, S., Kim, H. G., Yoon, T., Shon, M. J. High-Speed Magnetic Tweezers for Nanomechanical Measurements on Force-Sensitive Elements. J. Vis. Exp. (195), e65137, doi:10.3791/65137 (2023).

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