Denne protokollen tar sikte på å kvantifisere SARS-CoV-2 RNA i avløpsvann og luftprøver som skal brukes til avløpsvannbaserte epidemiologiske studier og å vurdere eksponeringsrisikoen for SARS-CoV-2 i innendørs og utendørs aerosoler. Denne protokollen beskriver også en flislagt amplikon langmalsekvenseringstilnærming for SARS-CoV-2 helgenomkarakterisering.
Avløpsvannbasert epidemiologi har dukket opp som et lovende og effektivt overvåkingssystem for SARS-CoV-2 og andre smittsomme sykdommer i mange nasjoner. Prosessen involverer vanligvis avløpsvannkonsentrasjon, nukleinsyreekstraksjon, amplifisering av utvalgte genomiske segmenter og deteksjon og kvantifisering av det amplifiserte genomiske segmentet. Denne metoden kan på samme måte utnyttes for å oppdage og kvantifisere smittsomme stoffer, som SARS-CoV-2, i luftprøver. I utgangspunktet ble SARS-CoV-2 antatt å spre seg primært gjennom nær personlig kontakt med dråper generert av en infisert person mens han snakket, nyset, hostet, sang eller pustet. Et økende antall studier har imidlertid rapportert tilstedeværelsen av SARS-CoV-2 RNA i luften av helseinstitusjoner, og etablert luftbåren overføring som en levedyktig rute for viruset. Denne studien presenterer en sammensetning av etablerte protokoller for å lette miljødeteksjon, kvantifisering og sekvensering av virus fra både avløpsvann og luftprøver.
I desember 2019 dukket det opp en ny sykdom kalt COVID-19, forårsaket av et tidligere ukjent koronavirus, SARS-CoV-21. Den resulterende globale pandemien har presentert en betydelig utfordring for kliniske og folkehelselaboratorier over hele verden, ettersom et stort antall individer krever testing for nøyaktig å vurdere virusoverføring og utbredelse i samfunnet. I mange regioner er det imidlertid økonomisk umulig å oppnå det nødvendige testnivået på en rettidig og romlig omfattende måte 2,3. Dagens overvåkingssystemer basert på individuell klinisk diagnostikk er avhengig av symptombelastning og individuell rapportering, samt i hvilken grad disse symptomene overlapper med eksisterende sykdommer som sirkulerer i befolkningen 4,5,6,7,8,9,10. Følgelig bidrar et høyt antall asymptomatiske tilfeller til en betydelig underestimering av sykdomsbyrde 7,11.
På grunn av disse utfordringene ble avløpsvannbasert epidemiologi (WBE) for COVID-19-overvåking foreslått som en komplementær overvåkingsstrategi. WBE ble første gang beskrevet i 200112, og ble opprinnelig brukt til å spore kokain og andre ulovlige rusmidler13. Denne tilnærmingen er avhengig av antagelsen om at det er mulig å beregne den opprinnelige konsentrasjonen av ethvert stoff som er stabilt i avløpsvann og utskilt av mennesker 8,12. WBE har blitt implementert med suksess i mange land som et komplementært og effektivt overvåkingssystem for SARS-CoV-2 3,8,14,15,16. De fleste metoder for å oppdage humane virus i vannmiljøer følger disse trinnene: konsentrasjon, nukleinsyreekstraksjon, amplifisering av det valgte genomiske segmentet (eller segmentene) og deteksjon / kvantifisering av det forsterkede genomiske segmentet3.
Et annet viktig miljø for påvisning og kvantifisering av SARS-CoV-2 er i luftprøver. I utgangspunktet ble SARS-CoV-2 antatt å overføres hovedsakelig gjennom nær personlig kontakt med luftveisdråper fra aerosoler generert av en infisert person mens du snakker, nyser, hoster, synger eller puster17. Imidlertid begynte flere studier å rapportere tilstedeværelsen av SARS-CoV-2 RNA i luften, spesielt i helseinstitusjoner og andre lukkede rom 18,19,20,21. Det er funnet bevis for SARS-CoV-2-levedyktighet i luftprøver tatt innendørs på sykehus og andre lukkede rom når viruskonsentrasjonen var tilstrekkelig høy22,23,2 4. Utendørsstudier har generelt ikke funnet holdepunkter for SARS-CoV-2, bortsett fra i overfylte uteområder 21,25,26,27,28,29. Per nå har luftbåren overføring av SARS-CoV-2 blitt anerkjent som en overføringsmåte30,31. En nylig gjennomgangsstudie viser forskjellene mellom utendørs, hvor risikoen for luftbåren overføring er minimal utenfor overfylte områder, og innendørs, hvor større risiko kan være tilstede i dårlig ventilerte miljøer der sterke kilder (dvs. antall smittede personer) kan være til stede. En nylig omfattende gjennomgangsstudie har fremhevet de betydelige forskjellene mellom risikoen for luftbåren overføring i utendørs versus innendørs miljøer, spesielt i overfylte områder med dårlig ventilasjon. Studien indikerer at risikoen for luftbåren overføring er minimal i utendørsmiljøer, hvor det er et større volum luft tilgjengelig for fortynning og spredning av viruspartikler32. Disse funnene har viktige implikasjoner for folkehelsepolitikk og retningslinjer knyttet til COVID-19. Ved å anerkjenne de betydelige forskjellene i overføringsrisiko mellom innendørs og utendørs miljøer, kan beslutningstakere utvikle mer effektive strategier for å redusere spredningen av viruset og beskytte folkehelsen.
Det finnes en rekke metoder og protokoller for påvisning, kvantifisering og sekvensering av SARS-CoV-2 fra forskjellige miljøprøver. Denne metodeartikkelen tar sikte på å presentere en kombinasjon av veletablerte protokoller som tillater laboratorier med ulike kapasitetsnivåer å utføre miljødeteksjon, kvantifisering og sekvensering av virus fra avløpsvann og luftprøver.
Mikrobiell og viral deteksjon og kvantifisering ved hjelp av (RT-) qPCR-metoder har fått utbredt aksept på grunn av deres bemerkelsesverdige følsomhet. Imidlertid står disse teknikkene overfor mange utfordringer når man analyserer miljøprøver. Avløpsvannprøver inneholder en overflod av hemmende stoffer som kan forskyve målinger og gi misvisende resultater. For å takle disse begrensningene og forbedre presisjonen, ble en kompleks protokoll unnfanget, designet og implementert. Denne protokollen ble skreddersydd …
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble utført med økonomisk støtte fra den regionale regjeringen i Castilla y Leon og FEDER-programmet (prosjektene CLU 2017-09, UIC315 og VA266P20).
Adapter+A25+A2:D19+A2:D20+A2+A2:D19 | Oxford Nanopore | EXP-AMII001 | Sequencing |
AllPrep PowerViral DNA/RNA Kit | Qiagen | 28000-50 | RNA extraction kit |
AMPure XP | Beckman Coulter | A63880 | PCR Purification, NGS Clean-up, PCR clean-up |
ARTIC SARS-CoV-2 Amplicon Panel | IDT | 10011442 | SARS-CoV-2 genome amplification |
Blunt/TA Ligase Master Mix | NEB | M0367S | Library preparation |
CENTRICON PLUS70 10KDA. | Fisher Scientific | 10296062 | Concentration filters |
CORIOLIS COMPACT AIR SAMPLER | Bertin Technologies | 083-DU001 | Air sampler |
Duran laboratory bottles | Merck | Z305200-10EA | Sampling Bottles |
Flow Cell (R9.4.1) | Oxford Nanopore | FLO-MIN106D | Sequencing |
General labarotory consumables (tubes, qPCR plates, etc) | |||
Ligation Sequencing Kit | Oxford Nanopore | SQK-LSK109 | Sequencing |
LunaScript RT SuperMix Kit | NEB | E3010 | cDNA synthesis |
Mengovirus extraction control Kit | Biomérieux | KMG | Concentration control |
Nalgene General Long-Term Storage Cryogenic Tubes | Thermofisher | 5011-0012 | Sample storage |
Native Barcoding Expansion 1-12 (PCR-free | Oxford Nanopore | EXP-NBD104 | Barcoding |
NEBNext Ultra II End Repair/dA-Tailing Module | NEB | E7595 | DNA repair |
NEBNext VarSkip Short SARS-CoV-2 Primer Mixes | NEB | E7658 | SARS-CoV-2 genome amplification |
NEBNext Quick Ligation Reaction Buffer | NEB | B6058S | Sequencing |
Phosphate buffered saline | Merck | P4474 | Collection buffer |
Phosphate-buffered saline (PBS, 1X), sterile-filtered | Thermofisher | J61196.AP | Elution of air samples |
Q5 Hot Start High-Fidelity 2X Master Mix | NEB | M0494S | hot start DNA polymerase |
Qubit RNA HS Assay Kit | Thermofisher | Q32852 | RNA quantitation |
SARS-CoV-2 RUO qPCR Primer & Probe Kit | IDT | 10006713 | Primer-Probe mix and qPCR positive control |
TaqPath 1-Step RT-qPCR Master Mix | Thermofisher | A15299 | RT-qPCR kit |