Summary

Quantifizierung und Charakterisierung des gesamten Genoms von SARS-CoV-2-RNA in Abwasser- und Luftproben

Published: June 30, 2023
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Summary

Dieses Protokoll zielt darauf ab, SARS-CoV-2-RNA in Abwasser- und Luftproben zu quantifizieren, um sie für abwasserbasierte epidemiologische Studien zu verwenden und das Expositionsrisiko gegenüber SARS-CoV-2 in Aerosolen in Innen- und Außenbereichen zu bewerten. Dieses Protokoll beschreibt auch einen gekachelten Amplikon-Long-Template-Sequenzierungsansatz für die Charakterisierung des gesamten SARS-CoV-2-Genoms.

Abstract

Die abwasserbasierte Epidemiologie hat sich in vielen Ländern zu einem vielversprechenden und wirksamen Überwachungssystem für SARS-CoV-2 und andere Infektionskrankheiten entwickelt. Der Prozess umfasst in der Regel die Abwasserkonzentration, die Nukleinsäureextraktion, die Amplifikation ausgewählter Genomsegmente sowie den Nachweis und die Quantifizierung des amplifizierten Genomsegments. Diese Methodik kann in ähnlicher Weise genutzt werden, um Infektionserreger wie SARS-CoV-2 in Luftproben nachzuweisen und zu quantifizieren. Ursprünglich ging man davon aus, dass sich SARS-CoV-2 vor allem durch engen persönlichen Kontakt mit Tröpfchen verbreitet, die von einer infizierten Person beim Sprechen, Niesen, Husten, Singen oder Atmen erzeugt werden. Eine wachsende Zahl von Studien berichtet jedoch über das Vorhandensein von SARS-CoV-2-RNA in der Luft von Gesundheitseinrichtungen, was die Übertragung über die Luft als gangbaren Weg für das Virus etabliert. Diese Studie stellt eine Kombination etablierter Protokolle vor, um die Erkennung, Quantifizierung und Sequenzierung von Viren aus Abwasser- und Luftproben in der Umgebung zu erleichtern.

Introduction

Im Dezember 2019 trat eine neuartige Krankheit namens COVID-19 auf, die durch ein bisher unbekanntes Coronavirus, SARS-CoV-21, verursacht wurde. Die daraus resultierende globale Pandemie stellt eine große Herausforderung für klinische und öffentliche Gesundheitslabore weltweit dar, da eine große Anzahl von Personen Tests benötigt, um die Virusübertragung und -prävalenz in der Gemeinschaft genau zu bewerten. In vielen Regionen ist es jedoch wirtschaftlich nicht machbar, das erforderliche Testniveau zeitnah und räumlich umfassend zu erreichen 2,3. Derzeitige Surveillance-Systeme, die auf individueller klinischer Diagnostik basieren, stützen sich stark auf die Schwere der Symptome und die individuelle Berichterstattung sowie auf das Ausmaß, in dem sich diese Symptome mit bestehenden Krankheiten überschneiden, die in der Bevölkerung zirkulieren 4,5,6,7,8,9,10. Folglich trägt eine hohe Zahl asymptomatischer Fälle zu einer deutlichen Unterschätzung der Krankheitslast bei 7,11.

Aufgrund dieser Herausforderungen wurde die abwasserbasierte Epidemiologie (WBE) für die COVID-19-Überwachung als ergänzende Überwachungsstrategie vorgeschlagen. WBE wurde erstmals im Jahr 2001 beschrieben12 und wurde ursprünglich zur Aufspüren von Kokain und anderen illegalen Drogen verwendet13. Dieser Ansatz beruht auf der Annahme, dass es möglich ist, die Anfangskonzentration jeder Substanz zu berechnen, die im Abwasser stabil ist und vom Menschen ausgeschieden wird 8,12. WBE wurde in vielen Ländern erfolgreich als ergänzendes und effizientes Überwachungssystem für SARS-CoV-2 3,8,14,15,16 eingesetzt. Die meisten Methoden zum Nachweis menschlicher Viren in aquatischen Umgebungen folgen diesen Schritten: Konzentration, Nukleinsäureextraktion, Amplifikation des ausgewählten genomischen Segments (oder der ausgewählten Segmente) und Nachweis/Quantifizierung des amplifizierten genomischen Segments3.

Eine weitere wichtige Umgebung für den Nachweis und die Quantifizierung von SARS-CoV-2 sind Luftproben. Ursprünglich ging man davon aus, dass SARS-CoV-2 hauptsächlich durch engen persönlichen Kontakt mit Atemtröpfchen aus Aerosolen übertragen wird, die von einer infizierten Person beim Sprechen, Niesen, Husten, Singen oder Atmen erzeugt werden17. Mehrere Studien berichteten jedoch über das Vorhandensein von SARS-CoV-2-RNA in der Luft, insbesondere in Gesundheitseinrichtungen und anderen geschlossenen Räumen 18,19,20,21. Hinweise auf die Lebensfähigkeit von SARS-CoV-2 wurden in Luftproben gefunden, die in Innenräumen von Krankenhäusern und anderen geschlossenen Räumen entnommen wurden, wenn die Viruskonzentration ausreichend hoch war22,23,2 4. Studien im Freien haben im Allgemeinen keine Hinweise auf SARS-CoV-2 gefunden, außer in überfüllten Außenbereichen 21,25,26,27,28,29. Bisher ist die Übertragung von SARS-CoV-2 über die Luft als Übertragungsweg anerkannt30,31. Eine kürzlich durchgeführte Übersichtsstudie zeigt die Unterschiede zwischen dem Freien, wo das Risiko einer Übertragung über die Luft außerhalb von überfüllten Bereichen minimal ist, und Innenräumen, wo größere Risiken in schlecht belüfteten Umgebungen bestehen könnten, in denen starke Quellen (d. h. die Anzahl der infizierten Personen) vorhanden sein könnten. Eine kürzlich durchgeführte umfassende Übersichtsstudie hat die erheblichen Unterschiede zwischen den Risiken einer Übertragung über die Luft im Freien und in Innenräumen hervorgehoben, insbesondere in überfüllten Bereichen mit schlechter Belüftung. Die Studie zeigt, dass das Risiko einer Übertragung über die Luft in Außenumgebungen minimal ist, in denen ein größeres Luftvolumen für die Verdünnung und Ausbreitung von Viruspartikeln zur Verfügung steht32. Diese Ergebnisse haben wichtige Auswirkungen auf die Gesundheitspolitik und die Richtlinien im Zusammenhang mit COVID-19. Durch die Anerkennung der erheblichen Unterschiede bei den Übertragungsrisiken zwischen Innen- und Außenbereichen können politische Entscheidungsträger wirksamere Strategien entwickeln, um die Ausbreitung des Virus einzudämmen und die öffentliche Gesundheit zu schützen.

Es gibt eine Vielzahl von Methoden und Protokollen für den Nachweis, die Quantifizierung und die Sequenzierung von SARS-CoV-2 aus verschiedenen Umweltproben. Dieser Methodenartikel zielt darauf ab, eine Kombination etablierter Protokolle vorzustellen, die es Laboren mit unterschiedlichen Kapazitäten ermöglichen, den Umweltnachweis, die Quantifizierung und die Sequenzierung von Viren aus Abwasser- und Luftproben durchzuführen.

Protocol

Alle hier beschriebenen Methoden wurden an anderer Stelle veröffentlicht und enthalten kleine Modifikationen gegenüber den ursprünglichen Methoden. 1. Abwassersammlung und Probenvorbehandlung HINWEIS: Aufgrund der geringen Konzentrationen von SARS-CoV-2-RNA in Umweltproben ist die Durchführung eines Konzentrationsschrittes entscheidend für einen erfolgreichen Nachweis33,34,35<s…

Representative Results

Die in Tabelle 3 zusammengefassten Ergebnisse zeigen Beispiele für den Nachweis und die Quantifizierung von SARS-CoV-2-RNA in Abwasser- und Luftproben mit der in diesem Artikel beschriebenen Methode. Abwasserproben wurden aus Kläranlagen in Spanien und Slowenien entnommen und wurden als positiv angesehen, wenn der Ct-Wert in mindestens zwei der drei Wiederholungen weniger als 40 betrug, wobei die Quantifizierung als gültig angesehen wurde, wenn der Ct-Wert eine Abweichung von weniger als 5 % aufwies. …

Discussion

Der mikrobielle und virale Nachweis und die Quantifizierung mit (RT-)qPCR-Methoden haben aufgrund ihrer bemerkenswerten Sensitivität eine breite Akzeptanz gefunden. Diese Techniken stehen jedoch vor zahlreichen Herausforderungen bei der Analyse von Umweltproben. Abwasserproben enthalten eine Fülle von hemmenden Substanzen, die Messungen verzerren und irreführende Ergebnisse liefern können. Um diese Einschränkungen zu überwinden und die Präzision zu erhöhen, wurde ein komplexes Protokoll konzipiert, entworfen und …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde mit finanzieller Unterstützung der Regionalregierung von Kastilien und León und des ELDER-Programms (Projekte CLU 2017-09, UIC315 und VA266P20) durchgeführt.

Materials

Adapter+A25+A2:D19+A2:D20+A2+A2:D19 Oxford Nanopore EXP-AMII001 Sequencing
AllPrep PowerViral DNA/RNA Kit Qiagen 28000-50 RNA extraction kit
AMPure XP Beckman Coulter A63880 PCR Purification, NGS Clean-up, PCR clean-up
ARTIC SARS-CoV-2 Amplicon Panel IDT 10011442 SARS-CoV-2 genome amplification
Blunt/TA Ligase Master Mix NEB M0367S Library preparation
CENTRICON PLUS­70 10KDA. Fisher Scientific 10296062 Concentration filters
CORIOLIS COMPACT AIR SAMPLER Bertin Technologies 083-DU001 Air sampler
Duran laboratory bottles Merck Z305200-10EA Sampling Bottles
Flow Cell (R9.4.1) Oxford Nanopore FLO-MIN106D Sequencing
General labarotory consumables (tubes, qPCR plates, etc)
Ligation Sequencing Kit Oxford Nanopore SQK-LSK109 Sequencing
LunaScript RT SuperMix Kit NEB E3010  cDNA synthesis
Mengovirus extraction control Kit Biomérieux KMG Concentration control
Nalgene General Long-Term Storage Cryogenic Tubes Thermofisher 5011-0012 Sample storage
Native Barcoding Expansion 1-12 (PCR-free Oxford Nanopore EXP-NBD104 Barcoding
NEBNext Ultra II End Repair/dA-Tailing Module NEB E7595 DNA repair
NEBNext VarSkip Short SARS-CoV-2 Primer Mixes NEB E7658 SARS-CoV-2 genome amplification
NEBNext Quick Ligation Reaction Buffer NEB B6058S Sequencing 
Phosphate buffered saline Merck P4474 Collection buffer
Phosphate-buffered saline (PBS, 1X), sterile-filtered Thermofisher J61196.AP Elution of air samples
Q5 Hot Start High-Fidelity 2X Master Mix NEB M0494S hot start DNA polymerase
Qubit RNA HS Assay Kit Thermofisher Q32852 RNA quantitation
SARS-CoV-2 RUO qPCR Primer & Probe Kit IDT 10006713 Primer-Probe mix and qPCR positive control
TaqPath 1-Step RT-qPCR Master Mix Thermofisher A15299 RT-qPCR kit

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Gonçalves, J., Gomes da Silva, P., Koritnik, T., Bosilj, M., Torres-Franco, A., Diaz, I., Rodriguéz, E., Marcos, E., Mesquita, J. R., García-Encina, P. Quantification and Whole Genome Characterization of SARS-CoV-2 RNA in Wastewater and Air Samples. J. Vis. Exp. (196), e65053, doi:10.3791/65053 (2023).

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