Summary

חקירת הפאגוציטוזה של לישמניה באמצעות מיקרוסקופיה קונפוקלית

Published: July 29, 2021
doi:

Summary

המנגנון הקשור לפאגוציטוזה בזיהום לישמניה נותר לא מובן. כאן אנו מתארים שיטות להערכת האירועים המוקדמים המתרחשים במהלך אינטראקציה של לישמניה עם התאים המארחים.

Abstract

פאגוציטוזה היא תהליך מתוזמר הכולל שלבים נפרדים: הכרה, כריכה והפנמה. פאגוציטים מקצועיים קולטים טפילי לישמניה על ידי פאגוציטוזה, המורכבת מזיהוי ליגנדים על משטחי טפילים על ידי קולטנים מרובים של תאי מארח. קשירת לישמניה לממברנות מקרופאגים מתרחשת באמצעות קולטן משלים מסוג 1 (CR1) וקולטן משלים מסוג 3 (CR3) וקולטני זיהוי תבניות. ליפופוספוגילן (LPG) וגליקופרוטאין 63 kDa (gp63) הם הליגנדות העיקריות המעורבות באינטראקציות מקרופאג’-לישמניה . לאחר הזיהוי הראשוני של ליגנדות טפילים על ידי קולטני התאים המארחים, הטפילים מופנמים, שורדים ומתרבים בתוך טפילים. תהליך ההבשלה של ואקואולים הנגרמים על ידי לישמניה כרוך ברכישת מולקולות משלפוחיות תוך-תאיות, כולל חלבון G מונומרי Rab 5 ו-Rab 7, חלבון ממברנה הקשור לליזוזומלי 1 (LAMP-1), חלבון ממברנה הקשור לליזוזומלי 2 (LAMP-2), וחלבון הקשור למיקרוטובול 1A/1B-light chain 3 (LC3).

במאמר זה נתאר שיטות להערכת האירועים המוקדמים המתרחשים במהלך אינטראקציה של לישמניה עם התאים המארחים באמצעות מיקרוסקופיה קונפוקלית, כולל (i) קישור (ii) הפנמה, ו-(iii) התבגרות פגוזום. על ידי הוספה לגוף הידע סביב גורמים אלה של תוצאות זיהום, אנו מקווים לשפר את ההבנה של הפתוגנזה של זיהום לישמניה ולתמוך בסופו של דבר בחיפוש אחר מטרות כימותרפיות חדשות.

Introduction

לישמניאזיס היא מחלה טרופית מוזנחת הנגרמת על ידי טפילים פרוטוזואניים מהסוג לישמניה, וכתוצאה מכך ספקטרום רחב של ביטויים קליניים בפונדקאי החולייתנים, כולל לישמניאזיס עורית, לישמניאזיס רירית ולישמניאזיס הקרביים1. ארגון הבריאות העולמי (WHO) מעריך כי יותר ממיליארד בני אדם נמצאים בסיכון, עם יותר ממיליון מקרים חדשים המדווחים בשנה2.

לישמניה spp. הם פרוטוזואנים תוך-תאיים מחייבים ששורדים בתוך התאים המארחים, כולל מונוציטים, מקרופאגים ותאים דנדריטיים3. אינטראקציה לישמניה-מקרופאגים היא תהליך מורכב הכולל קולטנים מרובים של תאים מארחים וליגנדות טפילים באמצעות אינטראקציה ישירה או על ידי אופסוניזציה המערבת קולטני משלים 4,5. קולטני פני שטח קלאסיים, כגון CR1, CR3, מנוז-פוקוז, פיברונקטין, קולטנים דמויי אגרה ונבלות, מתווכים חיבור טפילים למקרופאגים 6,7,8. קולטנים אלה מזהים מולקולות על פני השטח של לישמניה, כולל גליקופרוטאין 63 kDa (gp63) וליפופוגליקן גליקוליפיד (LPG)9. אלה הן המולקולות הנפוצות ביותר על פני השטח של promastigotes וממלאות תפקיד חיוני בחתרנות של התגובה החיסונית המארחת, לטובת הקמת זיהום טפילי בתאי יונקים10. לאחר שליגנדות פני השטח של הטפילים נקשרות לקולטני מקרופאגים, F-אקטין מצטבר על פני השטח של תאי היונקים, ומקיף את הטפילים כשהם פאגוציטוזה. לאחר מכן, זה מוביל להיווצרות של תא המושרה על ידי טפיל המכונה vacuole טפילי (PV), אשר מציג תכונות phagolysosomal11. ברגע שהם נמצאים בתוך הפאגוליסוזומים האלה, הטפילים עוברים מספר שינויים החיוניים להישרדות ולכפל3.

הביוגנזה של PVs היא תהליך מווסת מאוד של סחר בממברנה החיוני להישרדות התוך-תאית של פתוגןזה 12. היווצרותו של תא זה נובעת מאירועי איחוי רציפים בין פאגוזומים ותאים של המסלול האנדוציטי המארח. מחקרים קלאסיים בביולוגיה של התא גילו כי הבשלה של PVs כרוכה ברכישת חלבונים מונומריים מסוג G חלבון Rab 5 ו-Rab 7, הקשורים בעיקר להבשלה מוקדמת ומאוחרת של האנדוזום,בהתאמה 13. בנוסף, תאים אלה רוכשים חלבוני ממברנה הקשורים לליזוזום 1 ו-2 (LAMP 1, LAMP 2), המרכיבים החלבוניים העיקריים של הממברנה הליזוזומלית וחלבון 1A/1B-light chain 3 (LC3) הקשור למיקרוטובול, סמן אוטופגוזום14. למרות הדמיון לכאורה, הקינטיקה של היווצרות PV15,16 והמורפולוגיה של תאים אלה משתנים בהתאם למיני לישמניה. לדוגמה, זיהום הנגרם על ידי L. mexicana או L. amazonensis גורם להיווצרות של תאים גדולים המכילים מספר רב של טפילים17. לעומת זאת, מינים אחרים, כגון L. braziliensis ו– L. infantum, יוצרים vacuoles קטנים יותר המכילים בדרך כלל רק טפיל אחד או שניים בכל vacuole18.

למרות הידע הזה סביב האינטראקציה בין התא המארח ללישמניה, האירועים הראשוניים המופעלים על ידי מגע בין קולטני פונדקאי לליגנדות טפילים לא הובהרו במלואם. אירועים אלה ידועים כגורמים הקובעים את תוצאות ההדבקה בטפילים והם תלויים במיני טפילים, בסוג הקולטנים של תאי המארח שגויסו לזיהוי טפילים ובהפעלת מסלולי איתות מקרופאגים19,20. לכן, חיוני לזהות את המולקולות המעורבות בביוגנזה של PVs הנגרמים על ידי לישמניה ולקבוע את התפקידים שממלאות מולקולות אלה בהתבססות הזיהום ובתוצאותיו. במאמר זה נתאר שיטה לניטור אירועים מוקדמים המתרחשים במהלך הפאגוציטוזה של לישמניה, כולל קשירה, הפנמה, היווצרות פאגוסומים והבשלה. עבודה זו יכולה לסייע בהבהרת השתתפותם של PLC, Akt, Rab5, Rab7 ו- LC3 בהיווצרות PVs המושרים על ידי מיני לישמניה שונים. חשוב לציין שניתן להשתמש בפרוטוקול זה כדי לחקור את השתתפותם של חלבונים אחרים המעורבים בהבשלת PV. מחקרים עתידיים ירחיבו את הידע סביב מנגנונים המעורבים באינטראקציה בין לישמניה לתא המארח ויתרמו לתכנון אסטרטגיות כימותרפיות חדשניות.

Protocol

התאים התקבלו מתורמים בריאים לאחר אישור נהלים על ידי ועדות האתיקה הלאומיות למחקר (ID: 94648218.8.0000.0040). 1. תרביות תאים מקרופאגים שמקורם במונוציטים אנושייםהערה: כדי להשיג מקרופאגים שמקורם במונוציטים אנושיים להתמיינות במבחנה למקרופאגים, לאסוף דם מתורמים בריאים ולטהר ת?…

Representative Results

דו”ח זה נועד להעריך את האירועים המוקדמים המתרחשים במהלך הפאגוציטוזה של L. braziliensis שבודדה מחולים המציגים L. braziliensis-LCL או L. braziliensis-DL צורה של CL. באמצעות מיקרוסקופיה קונפוקלית, חקרנו את האירועים העיקריים הקשורים לפאגוציטוזה של טפילים: קשירה, הפנמה והבשלה של פגוזומים. הערכנו לראשונ?…

Discussion

אינטראקציה בין לישמניה-מקרופאגים היא תהליך מורכב וכולל מספר שלבים שיכולים להשפיע על התפתחות המחלה5. כדי להבין טוב יותר את המנגנונים המעורבים באינטראקציה של לישמניה לא מנוצלת ותאים מארחים, תיארנו פרוטוקול המשתמש במיקרוסקופיה פלואורסצנטית קונפוקלית כדי להעריך פאגו…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים למכון גונסאלו מוניז, פיוקרוז באהיה, ברזיל ולמחלקת המיקרוסקופיה על הסיוע. עבודה זו נתמכה על ידי INOVA-FIOCRUZ מספר 79700287000, P.S.T.V. מחזיקה במענק לפרודוקטיביות במחקר מ- CNPq (305235/2019-2). פלסמידים סופקו בחביבות על ידי מאוריציו טרביזניק, אוניברסיטת טורונטו, קליפורניה. המחברים רוצים להודות לאנדריס ק. וולטר על התיקון בשפה האנגלית ועל הסיוע בהעתקת כתבי יד.

Materials

2-mercaptoethanol Thermo Fisher Scientific 21985023
AlexaFluor 488-conjugated goat anti-rabbit IgG Thermo Fisher Scientific Tem varios no site
anti-LC3 antibody Novus Biologicals NB600-1384
Bovine serum albumin (BSA) Thermo Fisher Scientific X
CellStripper Corning 25-056-CI
CellTracker Red (CMTPX) Dye Thermo Fisher Scientific C34552
Centrífuga Thermo Fisher Scientific
Ciprofloxacin Isofarma X
CO2 incubator Thermo Fisher Scientific X
Confocal fluorescence microscope (Leica SP8) Leica Leica SP8
Fetal Bovine Serum (FBS) Gibco 10270106
Fluorescence microscope (Olympus Lx73) Olympus Olympus Lx73
Gentamicin Gibco 15750045
Glutamine Thermo Fisher Scientific 35050-061
HEPES (N- 2-hydroxyethyl piperazine-N’-2-ethane-sulfonic acid) Gibco X
Histopaque Sigma 10771
M-CSF Peprotech 300-25
NH4Cl Sigma A9434
Normal goat serum Sigma NS02L
Nucleofector 2b Device Lonza AAB-1001
Nucleofector solution Lonza VPA-1007
Paraformaldehyde Sigma 158127
Phalloidin Invitrogen A12379
Phorbol myristate acetate (PMA) Sigma P1585
Phosphate buffer solution (PBS) Thermo Fisher Scientific 10010023
ProLong Gold Antifade kit Life Technologies P36931
Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640 medium Gibco 11875-093
Saponin Thermo Fisher Scientific X
Schneider's Insect medium Sigma S0146
Sodium bicarbonate Sigma S5761
Sodium pyruvate Sigma S8636
Triton X-100 Sigma X

References

  1. Goto, H., Lauletta Lindoso, J. A. Cutaneous and mucocutaneous leishmaniasis. Infectious Disease Clinics of North America. 26 (2), 293-307 (2012).
  2. World Health Organization. Control of the leishmaniases. World Health Organization Technical Report Series. (949), 1 (2010).
  3. Alexander, J., Russell, D. G. The interaction of Leishmania species with macrophages. Advances in Parasitology. 31, 175-254 (1992).
  4. Mosser, D. M., Rosenthal, L. A. Leishmania-macrophage interactions: multiple receptors, multiple ligands and diverse cellular responses. Seminars in Cell Biology. 4 (5), 315-322 (1993).
  5. Awasthi, A., Mathur, R. K., Saha, B. Immune response to Leishmania infection. Indian Journal of Medical Research. 119 (6), 238-258 (2004).
  6. Blackwell, J. M. Role of macrophage complement and lectin-like receptors in binding Leishmania parasites to host macrophages. Immunology Letters. 11 (3-4), 227-232 (1985).
  7. Mosser, D. M., Edelson, P. J. The mouse macrophage receptor for C3bi (CR3) is a major mechanism in the phagocytosis of Leishmania promastigotes. Journal of Immunology. 135 (4), 2785-2789 (1985).
  8. Gough, P. J., Gordon, S. The role of scavenger receptors in the innate immune system. Microbes and Infection. 2 (3), 305-311 (2000).
  9. Russell, D. G., Wilhelm, H. The involvement of the major surface glycoprotein (gp63) of Leishmania promastigotes in attachment to macrophages. Journal of Immunology. 136 (7), 2613-2620 (1986).
  10. Handman, E., Goding, J. W. The Leishmania receptor for macrophages is a lipid-containing glycoconjugate. EMBO J. 4 (2), 329-336 (1985).
  11. Holm, A., Tejle, K., Magnusson, K. E., Descoteaux, A., Rasmusson, B. Leishmania donovani lipophosphoglycan causes periphagosomal actin accumulation: correlation with impaired translocation of PKCalpha and defective phagosome maturation. Cellular Microbiology. 3 (7), 439-447 (2001).
  12. Vergne, I., et al. Mechanism of phagolysosome biogenesis block by viable Mycobacterium tuberculosis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (11), 4033-4038 (2005).
  13. Courret, N., Lang, T., Milon, G., Antoine, J. C. Intradermal inoculations of low doses of Leishmania major and Leishmania amazonensis metacyclic promastigotes induce different immunoparasitic processes and status of protection in BALB/c mice. International Journal for Parasitology. 33 (12), 1373-1383 (2003).
  14. Gutierrez, M. G., et al. Autophagy induction favours the generation and maturation of the Coxiella-replicative vacuoles. Cellular Microbiology. 7 (7), 981-993 (2005).
  15. Dermine, J. F., Scianimanico, S., Prive, C., Descoteaux, A., Desjardins, M. Leishmania promastigotes require lipophosphoglycan to actively modulate the fusion properties of phagosomes at an early step of phagocytosis. Cellular Microbiology. 2 (2), 115-126 (2000).
  16. Desjardins, M., Descoteaux, A. Inhibition of phagolysosomal biogenesis by the Leishmania lipophosphoglycan. Journal of Experimental Medicine. 185 (12), 2061-2068 (1997).
  17. Antoine, J. C., Prina, E., Lang, T., Courret, N. The biogenesis and properties of the parasitophorous vacuoles that harbour Leishmania in murine macrophages. Trends in Microbiology. 6 (10), 392-401 (1998).
  18. Alexander, J., et al. An essential role for IL-13 in maintaining a non-healing response following Leishmania mexicana infection. European Journal of Immunology. 32 (10), 2923-2933 (2002).
  19. Aderem, A., Underhill, D. M. Mechanisms of phagocytosis in macrophages. Annual Review of Immunology. 17, 593-623 (1999).
  20. Olivier, M., Gregory, D. J., Forget, G. Subversion mechanisms by which Leishmania parasites can escape the host immune response: a signaling point of view. Clinical Microbiology Reviews. 18 (2), 293-305 (2005).
  21. English, D., Andersen, B. R. Single-step separation of red blood cells. Granulocytes and mononuclear leukocytes on discontinuous density gradients of Ficoll-Hypaque. Journal of Immunology Methods. 5 (3), 249-252 (1974).
  22. Petersen, A. L., et al. 17-AAG kills intracellular Leishmania amazonensis while reducing inflammatory responses in infected macrophages. PLoS One. 7 (11), 49496 (2012).
  23. Maess, M. B., Wittig, B., Lorkowski, S. Highly efficient transfection of human THP-1 macrophages by nucleofection. Journal of Visualized Experiments. (91), e51960 (2014).
  24. Berges, R., et al. End-binding 1 protein overexpression correlates with glioblastoma progression and sensitizes to Vinca-alkaloids in vitro and in vivo. Oncotarget. 5 (24), 12769-12787 (2014).
  25. Franco, L. H., et al. The Ubiquitin Ligase Smurf1 Functions in Selective Autophagy of Mycobacterium tuberculosis and Anti-tuberculous Host Defense. Cell Host & Microbe. 22 (3), 421-423 (2017).
  26. Corbett-Nelson, E. F., Mason, D., Marshall, J. G., Collette, Y., Grinstein, S. Signaling-dependent immobilization of acylated proteins in the inner monolayer of the plasma membrane. Journal of Cell Biology. 174 (2), 255-265 (2006).
  27. Yeung, T., et al. Receptor activation alters inner surface potential during phagocytosis. Science. 313 (5785), 347-351 (2006).
  28. Romano, P. S., Gutierrez, M. G., Beron, W., Rabinovitch, M., Colombo, M. I. The autophagic pathway is actively modulated by phase II Coxiella burnetii to efficiently replicate in the host cell. Cellular Microbiology. 9 (4), 891-909 (2007).
  29. Vieira, O. V., et al. Modulation of Rab5 and Rab7 recruitment to phagosomes by phosphatidylinositol 3-kinase. Molecular and Cellular Biology. 23 (7), 2501-2514 (2003).
  30. Roberts, R. L., Barbieri, M. A., Ullrich, J., Stahl, P. D. Dynamics of rab5 activation in endocytosis and phagocytosis. Journal of Leukocyte Biology. 68 (5), 627-632 (2000).
  31. Vitelli, R., et al. Role of the small GTPase Rab7 in the late endocytic pathway. Journal of Biological Chemistry. 272 (7), 4391-4397 (1997).
  32. Matte, C., et al. Leishmania major Promastigotes Evade LC3-Associated Phagocytosis through the Action of GP63. PLoS Pathogens. 12 (6), 1005690 (2016).
  33. Dias, B. R. S., et al. Autophagic Induction Greatly Enhances Leishmania major Intracellular Survival Compared to Leishmania amazonensis in CBA/j-Infected Macrophages. Frontiers in Microbiology. 9, 1890 (2018).
  34. Babcock, G. F. Quantitation of phagocytosis by confocal microscopy. Methods in Enzymology. 307, 319-328 (1999).
  35. Sanderson, M. J., Smith, I., Parker, I., Bootman, M. D. Fluorescence microscopy. Cold Spring Harbor Protocols. 2014 (10), 071795 (2014).
  36. Lennartz, M. R. Phospholipases and phagocytosis: the role of phospholipid-derived second messengers in phagocytosis. International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 31 (3-4), 415-430 (1999).
  37. Rashidfarrokhi, A., Richina, V., Tafesse, F. G. Visualizing the Early Stages of Phagocytosis. Journal of Visualized Experiments. (120), e54646 (2017).
  38. Ramarao, N., Meyer, T. F. Helicobacter pylori resists phagocytosis by macrophages: quantitative assessment by confocal microscopy and fluorescence-activated cell sorting. Infection and Immunity. 69 (4), 2604-2611 (2001).
  39. Bain, J., Gow, N. A., Erwig, L. P. Novel insights into host-fungal pathogen interactions derived from live-cell imaging. Seminars in Immunopathology. 37 (2), 131-139 (2015).

Play Video

Cite This Article
Paixão, A. R., Dias, B. R. S., Palma, L. C., Tavares, N. M., Brodskyn, C. I., de Menezes, J. P. B., Veras, P. S. T. Investigating the Phagocytosis of Leishmania using Confocal Microscopy. J. Vis. Exp. (173), e62459, doi:10.3791/62459 (2021).

View Video