Summary

Undersøgelse af fagocytose af Leishmania ved hjælp af konfokal mikroskopi

Published: July 29, 2021
doi:

Summary

Mekanismen forbundet med fagocytose i Leishmania-infektion forbliver dårligt forstået. Her beskriver vi metoder til at evaluere de tidlige begivenheder, der opstår under Leishmania-interaktionen med værtscellerne.

Abstract

Fagocytose er en orkestreret proces, der involverer forskellige trin: anerkendelse, binding og internalisering. Professionelle fagocytter optager Leishmania-parasitter ved fagocytose, der består i at genkende ligander på parasitoverflader af flere værtscellereceptorer. Binding af Leishmania til makrofagmembraner sker gennem komplementreceptor type 1 (CR1) og komplementreceptortype 3 (CR3) og mønstergenkendelsesreceptorer. Lipophosphoglycan (LPG) og 63 kDa glycoprotein (gp63) er de vigtigste ligander involveret i makrofag-Leishmania interaktioner. Efter den første anerkendelse af parasitligander af værtscellereceptorer bliver parasitter internaliseret, overlever og formerer sig inden for parasitoforiske vakuoler. Modningsprocessen af Leishmania-inducerede vakuoler involverer erhvervelse af molekyler fra intracellulære vesikler, herunder monomert G-protein Rab 5 og Rab 7, lysosomalt associeret membranprotein 1 (LAMP-1), lysosomalt associeret membranprotein 2 (LAMP-2) og mikrotubuli-associeret protein 1A / 1B-lyskæde 3 (LC3).

Her beskriver vi metoder til at evaluere de tidlige begivenheder, der forekommer under Leishmania-interaktion med værtscellerne ved hjælp af konfokal mikroskopi, herunder (i) binding (ii) internalisering og (iii) fagosommodning. Ved at tilføje til mængden af viden omkring disse determinanter for infektionsresultat håber vi at forbedre forståelsen af patogenesen af Leishmania-infektion og støtte den eventuelle søgning efter nye kemoterapeutiske mål.

Introduction

Leishmaniasis er en forsømt tropisk sygdom forårsaget af protozoiske parasitter af slægten Leishmania, hvilket resulterer i et bredt spektrum af kliniske manifestationer hos hvirveldyrværten, herunder kutan leishmaniasis, mucokutan leishmaniasis og visceral leishmaniasis1. Verdenssundhedsorganisationen (WHO) anslår, at over en milliard mennesker er i fare, med mere end en million nye tilfælde rapporteret om år2.

Leishmania spp. er obligatoriske intracellulære protozoer, der overlever inde i værtsceller, herunder monocytter, makrofager og dendritiske celler3. Leishmania-makrofaginteraktion er en kompleks proces, der involverer flere værtscellereceptorer og parasitligander enten gennem direkte interaktion eller ved opsonisering, der involverer komplementreceptorer 4,5. Klassiske overfladereceptorer, såsom CR1, CR3, mannose-fucose, fibronectin, toll-lignende og scavenger receptorer, medierer parasitbinding til makrofager 6,7,8. Disse receptorer genkender molekyler på overfladen af Leishmania, herunder 63 kDa glycoprotein (gp63) og glycolipid lipophosphoglycan (LPG)9. Disse er de mest rigelige molekyler på overfladen af promastigotes og spiller en væsentlig rolle i undergravningen af værtsimmunrespons, hvilket favoriserer etableringen af parasitinfektion i pattedyrceller10. Efter at parasitoverfladeligander binder sig til makrofagreceptorer, akkumuleres F-actin på pattedyrcelleoverflader, omgivende parasitter, når de fagocytoseres. Efterfølgende fører dette til dannelsen af et parasitinduceret rum kaldet parasitophorous vakuol (PV), som præsenterer fagolysosomale træk11. En gang inde i disse fagolysomer gennemgår parasitter flere ændringer, der er afgørende for overlevelse og multiplikation3.

Biogenese af PV’er er en stærkt reguleret membranhandelsproces, der er kritisk for den intracellulære overlevelse af dette patogen12. Dannelsen af dette rum skyldes sekventielle fusionshændelser mellem fagosomer og rum i værtsendocytisk vej. Klassiske cellebiologiske undersøgelser har afsløret, at modningen af PV’er involverer erhvervelse af monomere G-protein Rab 5- og Rab 7-proteiner, som hovedsageligt er forbundet med henholdsvis tidlig og sen endosommodning13. Derudover erhverver disse rum lysosomassocierede membranproteiner 1 og 2 (LAMP 1, LAMP 2), de vigtigste proteinbestanddele i den lysosomale membran og mikrotubulusassocieret protein 1A / 1B-lyskæde 3 (LC3), en autofagosommarkør14. På trods af tilsyneladende ligheder varierer kinetikken af PV-dannelse15,16 og morfologien af disse rum afhængigt af Leishmania-arter. For eksempel inducerer infektion forårsaget af L. mexicana eller L. amazonensis dannelsen af store rum indeholdende et stort antal parasitter17. I modsætning hertil danner andre arter, såsom L. braziliensis og L. infantum, mindre vakuoler, der normalt kun indeholder en eller to parasitter i hver vakuol18.

På trods af denne viden omkring værtscelle-Leishmania-interaktion er de indledende begivenheder udløst af kontakt mellem værtsreceptorer og parasitligander ikke blevet fuldt ud belyst. Disse hændelser vides at være determinanter for resultatet af parasitinfektion og er afhængige af parasitarter, typen af værtscellereceptorer, der rekrutteres til at genkende parasitter og aktiveringen af makrofagsignaleringsveje19,20. Derfor er det vigtigt at identificere de molekyler, der er involveret i biogenesen af Leishmania-inducerede PV’er, og bestemme den eller de roller, som disse molekyler spiller i infektionsetablering og -resultat. Her beskriver vi en metode til overvågning af tidlige begivenheder, der forekommer under fagocytose af Leishmania, herunder binding, internalisering, fagosomdannelse og modning. Dette arbejde kunne hjælpe med at afklare PLC’s, Akts, Rab5s, Rab7′ og LC3’s deltagelse i dannelsen af PC’er induceret af forskellige Leishmania-arter. Det er vigtigt, at denne protokol kan bruges til at undersøge deltagelsen af andre proteiner involveret i PV-modning. Fremtidige undersøgelser vil udvide viden omkring mekanismer involveret i Leishmania-værtscelleinteraktion og bidrage til udformningen af nye kemoterapeutiske strategier.

Protocol

Celler blev opnået fra raske donorer efter godkendelse af procedurer fra de nationale videnskabsetiske komitéer (ID: 94648218.8.0000.0040). 1. Cellekulturer Humane monocytafledte makrofagerBEMÆRK: For at opnå humane monocytafledte makrofager til in vitro-differentiering i makrofager skal der indsamles blod fra raske donorer og rense perifere blodmononukleære celler (PBMC) som beskrevet af D. English og B. R. Andersen21.Efter opsamling…

Representative Results

Denne rapport har til formål at evaluere de tidlige hændelser, der forekommer under fagocytose af L. braziliensis isoleret fra patienter, der præsenterer L. braziliensis-LCL eller L. braziliensis-DL form af CL. Ved hjælp af konfokal mikroskopi undersøgte vi de vigtigste begivenheder forbundet med parasitters fagocytose: binding, internalisering og fagosommodning. Vi evaluerede først L. braziliensis-LCL eller L. braziliensis-DL binding og fagocytose af humane monocytafled…

Discussion

Leishmania-makrofaginteraktion er en kompleks proces og involverer flere trin, der kan påvirke sygdomsudvikling5. For bedre at forstå de mekanismer, der er involveret i interaktionen mellem uponiserede Leishmania og værtsceller, har vi beskrevet en protokol, der anvender konfokal fluorescensmikroskopi til at vurdere fagocytose fra tidlige til sene stadier af Leishmania-infektion . Anvendelsen af fluorescensteknikker, der involverer to eller flere fluoroforer til at un…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Gonçalo Moniz Institute, Fiocruz Bahia, Brasilien og afdelingen for mikroskopi for hjælp. Dette arbejde blev støttet af INOVA-FIOCRUZ nummer 79700287000, P.S.T.V. har en bevilling til produktivitet i forskning fra CNPq (305235/2019-2). Plasmider blev venligst leveret af Mauricio Terebiznik, University of Toronto, CA. Forfatterne vil gerne takke Andris K. Walter for engelsk oversættelse og hjælp til kopiering af manuskripter.

Materials

2-mercaptoethanol Thermo Fisher Scientific 21985023
AlexaFluor 488-conjugated goat anti-rabbit IgG Thermo Fisher Scientific Tem varios no site
anti-LC3 antibody Novus Biologicals NB600-1384
Bovine serum albumin (BSA) Thermo Fisher Scientific X
CellStripper Corning 25-056-CI
CellTracker Red (CMTPX) Dye Thermo Fisher Scientific C34552
Centrífuga Thermo Fisher Scientific
Ciprofloxacin Isofarma X
CO2 incubator Thermo Fisher Scientific X
Confocal fluorescence microscope (Leica SP8) Leica Leica SP8
Fetal Bovine Serum (FBS) Gibco 10270106
Fluorescence microscope (Olympus Lx73) Olympus Olympus Lx73
Gentamicin Gibco 15750045
Glutamine Thermo Fisher Scientific 35050-061
HEPES (N- 2-hydroxyethyl piperazine-N’-2-ethane-sulfonic acid) Gibco X
Histopaque Sigma 10771
M-CSF Peprotech 300-25
NH4Cl Sigma A9434
Normal goat serum Sigma NS02L
Nucleofector 2b Device Lonza AAB-1001
Nucleofector solution Lonza VPA-1007
Paraformaldehyde Sigma 158127
Phalloidin Invitrogen A12379
Phorbol myristate acetate (PMA) Sigma P1585
Phosphate buffer solution (PBS) Thermo Fisher Scientific 10010023
ProLong Gold Antifade kit Life Technologies P36931
Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640 medium Gibco 11875-093
Saponin Thermo Fisher Scientific X
Schneider's Insect medium Sigma S0146
Sodium bicarbonate Sigma S5761
Sodium pyruvate Sigma S8636
Triton X-100 Sigma X

References

  1. Goto, H., Lauletta Lindoso, J. A. Cutaneous and mucocutaneous leishmaniasis. Infectious Disease Clinics of North America. 26 (2), 293-307 (2012).
  2. World Health Organization. Control of the leishmaniases. World Health Organization Technical Report Series. (949), 1 (2010).
  3. Alexander, J., Russell, D. G. The interaction of Leishmania species with macrophages. Advances in Parasitology. 31, 175-254 (1992).
  4. Mosser, D. M., Rosenthal, L. A. Leishmania-macrophage interactions: multiple receptors, multiple ligands and diverse cellular responses. Seminars in Cell Biology. 4 (5), 315-322 (1993).
  5. Awasthi, A., Mathur, R. K., Saha, B. Immune response to Leishmania infection. Indian Journal of Medical Research. 119 (6), 238-258 (2004).
  6. Blackwell, J. M. Role of macrophage complement and lectin-like receptors in binding Leishmania parasites to host macrophages. Immunology Letters. 11 (3-4), 227-232 (1985).
  7. Mosser, D. M., Edelson, P. J. The mouse macrophage receptor for C3bi (CR3) is a major mechanism in the phagocytosis of Leishmania promastigotes. Journal of Immunology. 135 (4), 2785-2789 (1985).
  8. Gough, P. J., Gordon, S. The role of scavenger receptors in the innate immune system. Microbes and Infection. 2 (3), 305-311 (2000).
  9. Russell, D. G., Wilhelm, H. The involvement of the major surface glycoprotein (gp63) of Leishmania promastigotes in attachment to macrophages. Journal of Immunology. 136 (7), 2613-2620 (1986).
  10. Handman, E., Goding, J. W. The Leishmania receptor for macrophages is a lipid-containing glycoconjugate. EMBO J. 4 (2), 329-336 (1985).
  11. Holm, A., Tejle, K., Magnusson, K. E., Descoteaux, A., Rasmusson, B. Leishmania donovani lipophosphoglycan causes periphagosomal actin accumulation: correlation with impaired translocation of PKCalpha and defective phagosome maturation. Cellular Microbiology. 3 (7), 439-447 (2001).
  12. Vergne, I., et al. Mechanism of phagolysosome biogenesis block by viable Mycobacterium tuberculosis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (11), 4033-4038 (2005).
  13. Courret, N., Lang, T., Milon, G., Antoine, J. C. Intradermal inoculations of low doses of Leishmania major and Leishmania amazonensis metacyclic promastigotes induce different immunoparasitic processes and status of protection in BALB/c mice. International Journal for Parasitology. 33 (12), 1373-1383 (2003).
  14. Gutierrez, M. G., et al. Autophagy induction favours the generation and maturation of the Coxiella-replicative vacuoles. Cellular Microbiology. 7 (7), 981-993 (2005).
  15. Dermine, J. F., Scianimanico, S., Prive, C., Descoteaux, A., Desjardins, M. Leishmania promastigotes require lipophosphoglycan to actively modulate the fusion properties of phagosomes at an early step of phagocytosis. Cellular Microbiology. 2 (2), 115-126 (2000).
  16. Desjardins, M., Descoteaux, A. Inhibition of phagolysosomal biogenesis by the Leishmania lipophosphoglycan. Journal of Experimental Medicine. 185 (12), 2061-2068 (1997).
  17. Antoine, J. C., Prina, E., Lang, T., Courret, N. The biogenesis and properties of the parasitophorous vacuoles that harbour Leishmania in murine macrophages. Trends in Microbiology. 6 (10), 392-401 (1998).
  18. Alexander, J., et al. An essential role for IL-13 in maintaining a non-healing response following Leishmania mexicana infection. European Journal of Immunology. 32 (10), 2923-2933 (2002).
  19. Aderem, A., Underhill, D. M. Mechanisms of phagocytosis in macrophages. Annual Review of Immunology. 17, 593-623 (1999).
  20. Olivier, M., Gregory, D. J., Forget, G. Subversion mechanisms by which Leishmania parasites can escape the host immune response: a signaling point of view. Clinical Microbiology Reviews. 18 (2), 293-305 (2005).
  21. English, D., Andersen, B. R. Single-step separation of red blood cells. Granulocytes and mononuclear leukocytes on discontinuous density gradients of Ficoll-Hypaque. Journal of Immunology Methods. 5 (3), 249-252 (1974).
  22. Petersen, A. L., et al. 17-AAG kills intracellular Leishmania amazonensis while reducing inflammatory responses in infected macrophages. PLoS One. 7 (11), 49496 (2012).
  23. Maess, M. B., Wittig, B., Lorkowski, S. Highly efficient transfection of human THP-1 macrophages by nucleofection. Journal of Visualized Experiments. (91), e51960 (2014).
  24. Berges, R., et al. End-binding 1 protein overexpression correlates with glioblastoma progression and sensitizes to Vinca-alkaloids in vitro and in vivo. Oncotarget. 5 (24), 12769-12787 (2014).
  25. Franco, L. H., et al. The Ubiquitin Ligase Smurf1 Functions in Selective Autophagy of Mycobacterium tuberculosis and Anti-tuberculous Host Defense. Cell Host & Microbe. 22 (3), 421-423 (2017).
  26. Corbett-Nelson, E. F., Mason, D., Marshall, J. G., Collette, Y., Grinstein, S. Signaling-dependent immobilization of acylated proteins in the inner monolayer of the plasma membrane. Journal of Cell Biology. 174 (2), 255-265 (2006).
  27. Yeung, T., et al. Receptor activation alters inner surface potential during phagocytosis. Science. 313 (5785), 347-351 (2006).
  28. Romano, P. S., Gutierrez, M. G., Beron, W., Rabinovitch, M., Colombo, M. I. The autophagic pathway is actively modulated by phase II Coxiella burnetii to efficiently replicate in the host cell. Cellular Microbiology. 9 (4), 891-909 (2007).
  29. Vieira, O. V., et al. Modulation of Rab5 and Rab7 recruitment to phagosomes by phosphatidylinositol 3-kinase. Molecular and Cellular Biology. 23 (7), 2501-2514 (2003).
  30. Roberts, R. L., Barbieri, M. A., Ullrich, J., Stahl, P. D. Dynamics of rab5 activation in endocytosis and phagocytosis. Journal of Leukocyte Biology. 68 (5), 627-632 (2000).
  31. Vitelli, R., et al. Role of the small GTPase Rab7 in the late endocytic pathway. Journal of Biological Chemistry. 272 (7), 4391-4397 (1997).
  32. Matte, C., et al. Leishmania major Promastigotes Evade LC3-Associated Phagocytosis through the Action of GP63. PLoS Pathogens. 12 (6), 1005690 (2016).
  33. Dias, B. R. S., et al. Autophagic Induction Greatly Enhances Leishmania major Intracellular Survival Compared to Leishmania amazonensis in CBA/j-Infected Macrophages. Frontiers in Microbiology. 9, 1890 (2018).
  34. Babcock, G. F. Quantitation of phagocytosis by confocal microscopy. Methods in Enzymology. 307, 319-328 (1999).
  35. Sanderson, M. J., Smith, I., Parker, I., Bootman, M. D. Fluorescence microscopy. Cold Spring Harbor Protocols. 2014 (10), 071795 (2014).
  36. Lennartz, M. R. Phospholipases and phagocytosis: the role of phospholipid-derived second messengers in phagocytosis. International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 31 (3-4), 415-430 (1999).
  37. Rashidfarrokhi, A., Richina, V., Tafesse, F. G. Visualizing the Early Stages of Phagocytosis. Journal of Visualized Experiments. (120), e54646 (2017).
  38. Ramarao, N., Meyer, T. F. Helicobacter pylori resists phagocytosis by macrophages: quantitative assessment by confocal microscopy and fluorescence-activated cell sorting. Infection and Immunity. 69 (4), 2604-2611 (2001).
  39. Bain, J., Gow, N. A., Erwig, L. P. Novel insights into host-fungal pathogen interactions derived from live-cell imaging. Seminars in Immunopathology. 37 (2), 131-139 (2015).

Play Video

Cite This Article
Paixão, A. R., Dias, B. R. S., Palma, L. C., Tavares, N. M., Brodskyn, C. I., de Menezes, J. P. B., Veras, P. S. T. Investigating the Phagocytosis of Leishmania using Confocal Microscopy. J. Vis. Exp. (173), e62459, doi:10.3791/62459 (2021).

View Video