Este manuscrito describe un protocolo para la vitrificación de volumen mínimo de ovocitos de gato inmaduros con medios de laboratorio en soportes comerciales. Cubre cada paso desde el aislamiento de ovocitos desde las gónadas ex vivo hasta la vitrificación y el calentamiento.
En los programas de conservación de animales salvajes, la banca de gametos es crucial para salvaguardar los recursos genéticos de individuos valiosos y especies raras y para promover la preservación de la biodiversidad. En los delitos, la mayoría de las especies están amenazadas de extinción, y las razas domésticas se utilizan como modelo para aumentar la eficiencia de los protocolos para la banca por germoplasma. Entre las técnicas de criopreservación de ovocitos, la vitrificación es cada vez más popular en la reproducción asistida humana y veterinaria. La vitrificación de la criotop, que al principio se desarrolló para ovocitos y embriones humanos, ha demostrado ser adecuada para los ovocitos de gato. Este método ofrece varias ventajas, como la viabilidad en las condiciones de campo y la velocidad del procedimiento, que puede ser útil cuando es necesario procesar varias muestras. Sin embargo, la eficiencia depende en gran medida de las habilidades del operador, y se necesita estandarización entre laboratorios e intra-laboratorios, así como capacitación del personal. Este protocolo describe la vitrificación de volumen mínimo de ovocitos felinos inmaduros en un soporte comercial en un protocolo paso a paso favorable al campo, desde la colección de ovocitos hasta el calentamiento. Siguiendo el protocolo, preservación de la integridad de los ovocitos y viabilidad en el calentamiento (hasta 90%) puede esperarse, aunque todavía hay margen de mejora en la maduración posterior al calentamiento y los resultados del desarrollo embrionario.
La criopreservación se ha convertido en un paso clave de las técnicas de reproducción asistida (AT). En los seres humanos, permite la preservación de la fertilidad o el aplazamiento de la paternidad por razones médicas o personales. En animales, es necesario superar la distancia y el tiempo en apareamientos planificados, especialmente en animales de granja y mascotas, o preservar material genético de sujetos valiosos en programas de conservación, particularmente en especies silvestres en peligro de extinción. La criopreservación de gametos es la mejor opción cuando los individuos a criar aún no han sido elegidos o para evitar problemas éticos asociados con la congelación de embriones, especialmente en la medicina humana1. Los espermatozoides son relativamente fáciles de preservar y dan resultados satisfactorios después de la descongelación, pero los ovocitos, debido a sus características estructurales, podrían ser más complejos de almacenar. De hecho, la baja relación superficie/volumen, así como la presencia de la zona pellucida que rodea el ooplasma, limita el movimiento de crioprotectores y agua a través de la célula2. Además, en los animales domésticos, incluidos los feminidos, se caracterizan por un citoplasma rico en lípidos, que se cree que los hace más sensibles a la criopreservación3.
La mayoría de los fetas están amenazados, y el gato doméstico se utiliza como modelo para desarrollar protocolos para la preservación del germoplasma gracias a la disponibilidad de gónadas de la ovariectomía de rutina. En animales salvajes, las gónadas se pueden obtener después de cirugías electivas o (más frecuentemente) se pueden recuperar gametos post morteme inmaduros (vesícula germinal). La estimulación hormonal destinada a obtener ovocitos maduros (metafase II) no es tan común como en los ÁRT humanos debido a las cuestiones éticas y a la respuesta específica de las especies e individuos a los tratamientos4.
Por lo tanto, el desarrollo de estrategias de criopreservación se ha centrado en los gametos inmaduros, que generalmente se pueden recuperar después de la muerte inesperada o repentina de individuos raros. Desde un punto de vista biológico, hay algunas diferencias en la criopreservación de gametos inmaduros o maduros, cada uno con sus ventajas. En primer lugar, el ADN está más protegido en ovocitos inmaduros, cuya vesícula germinal contiene cromosomas rodeados por una membrana nuclear, mientras que el husillo meótico de los ovocitos metafase II podría ser más vulnerable a los criocinitos5. En segundo lugar, los daños por citoesqueleto inducidos por el frío pueden afectar la rotación del husillo, la extrusión del cuerpo polar, la migración pronuclear y la citoquinesis, que podrían tener diferentes impactos según la fase de desarrollo de los ovocitos, influyendo en la progresión de la meiosis o en eventos posteriores a la fertilización. Por último, y tal vez lo más importante, mientras que los ovocitos maduros están listos para ser fertilizados, los gametos inmaduros confían en el apoyo de las células cúmulos circundantes para pasar por la maduración nuclear y citoplasma6,y esta es la razón por la que los complejos cúmulos-oocitos (COC) enteros son criopreservados. Sin embargo, la pérdida de células cúmulos y/o la pérdida de conexión funcional entre el gameto y las células somáticas circundantes son probablemente el efecto más perjudicial de la criopreservación de COCs inmaduros.
Entre las técnicas de criopreservación, la vitrificación es una que se puede aplicar más fácilmente en condiciones de campo. En comparación con la congelación lenta (o de velocidad controlada), la vitrificación es más rápida y no requiere equipos específicos, como un congelador programable. Con el fin de satisfacer los tres principios fundamentales de la vitrificación (es decir, alta viscosidad, conectado a alta concentración crioprotectora, pequeños volúmenes y disminución ultrarráptica de la temperatura), varios medios y soportes especialmente se han desarrollado y utilizado en gatos tanto para ovocitos inmaduros como maduros. A partir de pajitas simples7, los dispositivos se desarrollaron para alcanzar el objetivo de “Volumen mínimo”. Cryoloop8, pajitas abiertas (OPS)9, canalones de plástico (paja modificada)10 y criotubos11 se han utilizado, hasta que se emplee un dispositivo más eficiente (es decir, Cryotop)11, mejorando la supervivencia y la reanudación de la meiosis. Cryotop(Figura Suplementaria 1) es un soporte disponible comercialmente que se ha convertido en el sistema abierto electivo para la vitrificación. Desarrollado para la vitrificación de ovocitos y embriones humanos, consiste en una pequeña tira de película unida a un soporte de plástico duro, protegido por una tapa de tubo de plástico durante el almacenamiento12. Gracias a su facilidad de uso y a la extrema reducción del volumen de vitrificación (tan solo 0,1 l), lo que también conduce a tasas de enfriamiento y calentamiento extremadamente rápidas, este soporte de vitrificación se ha aplicado cada vez más en varias especies, incluido el gato doméstico, en el que se ha utilizado con una variedad de medios13,,14,,15,,16,,17.
El propósito de este manuscrito es describir un protocolo de calentamiento de la vitrificación de colección, con pequeñas modificaciones del desarrollado originalmente para ovocitos humanos, que emplea medios de laboratorio y soportes comerciales para la vitrificación de volumen mínimo y se puede aplicar fácilmente en condiciones de campo para la criopreservación de COC felinos inmaduros.
La criopreservación de ovocitos es una técnica crucial de conservación del germoplasma, especialmente en taxones donde muchas especies están en peligro de extinción, como la familia Felidae. En este manuscrito, se presentó un protocolo sencillo y amigable con el campo para la vitrificación de ovocitos de gato inmaduros. Los medios de laboratorio, los soportes mínimos de vitrificación de volumen y el personal capacitado son los factores clave para el éxito de este método, que permite obtener ovocitos viables de…
The authors have nothing to disclose.
Este trabajo fue apoyado en parte por la beca EVSSAR (European Veterinary Society for Small Animal Reproduction) 2016 y por la Universidad degli Studi di Milano, Piano di Sostegno alla Ricerca 2019 (Linea 2 Azione A). También queremos agradecer a la Dra. MariaGiorgia Morselli por su contribución a los experimentos que se describen y a la adquisición de imágenes.
Amphotericin B | Sigma-Aldrich | A2942 | / |
Automatic pipettes & tips | / | / | Needed to pipette 20, 100, 240 and 300 µL |
Surgical scalpels | / | / | Size 10 is usually ok |
Bunsen beak | / | / | / |
Clamps | / | / | Some small (Mosquito clamp) for ovary isolation, some bigger (Klemmer clamp) to work in liquid nitrogen |
Cryotop | Kitazato (distributor: MBT – Medical Biological Technologies) | 01.CR | Distributors and catalog number may change in different countries |
Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Sigma-Aldrich | D2650 | / |
Ethylene glycol (EG) | Sigma-Aldrich | E9129 | / |
Fetal bovine serum (FBS) | Sigma-Aldrich | F9665 | / |
Glass Pasteur pipettes | / | / | Advised lenght 230 mm (100+130) |
Gobelets | / | / | According to the canisters of the storage tank |
Heating stage | / | / | All heating stages are ok, as long as they can keep 38ºC |
Liquid nitrogen | / | / | / |
Medium 199 | Sigma-Aldrich | M4530 | / |
Phosphate-buffered saline (PBS) | Sigma-Aldrich | D8662 | / |
Penicillin G sodium | Sigma-Aldrich | P3032 | / |
Polyvinyl alcohol (PVA) | Sigma-Aldrich | P8136 | / |
Repro plate | Kitazato (distributor: MBT – Medical Biological Technologies) | 01.K-2 | Distributors and catalog number may change in different countries |
Stereomicroscope | / | / | As long as the operator can select the oocytes, other stereomicroscopes are ok |
Storage tank | / | / | Any regularly filled tank is ok |
Streptomycin sulphate | Sigma-Aldrich | S9137 | / |
Styrofoam/nitrogen resistant box | / | / | All boxes which can contain liquid nitrogen are ok, as long as the operator is comfortable. Kitazato box is called "Cooling Rack" |
Sucrose | Sigma-Aldrich | S1888 | / |
Timers | / | / | All timers which can be set on times until 9 minutes are ok |