Summary

قياس النشاط شبه الخلوي يوبيكويتين بروتياسوم في الدماغ القوارض

Published: May 21, 2019
doi:

Summary

تم تصميم هذا البروتوكول لتحديد قدر ة نشاط نظام يوبيكويتين بروتياسوم (UPS) بكفاءة في مقصورات خلوية مختلفة من الدماغ القوارض. ويتمكن المستخدمون من فحص أداء شركة UPS في الكسور النووية والسيتوبلازمية ومتشابكة في نفس الحيوان، مما يقلل من مقدار الوقت وعدد الحيوانات اللازمة لإجراء هذه التحليلات المعقدة.

Abstract

نظام فيوكويتين بروتياسوم هو منظم رئيسي لتدهور البروتين ومجموعة متنوعة من العمليات الخلوية الأخرى في eukaryotes. في الدماغ، ترتبط الزيادات في النشاط في يوبيكويتين بروتياسوم حاسمة للدونة متشابك وتكوين الذاكرة والتغيرات الشاذة في هذا النظام مع مجموعة متنوعة من الاضطرابات العصبية والعصبية والنفسية. واحدة من القضايا في دراسة العمل في كل مكان بروتيسوم في الدماغ هو أنه موجود في جميع المقصورات الخلوية, التي أهداف البروتين, دور وظيفي وآليات التنظيم يمكن أن تختلف على نطاق واسع. ونتيجة لذلك، فإن القدرة على المقارنة المباشرة لاستهداف بروتين في وبيكوتين الدماغ والنشاط الحفاز البروتياسوم في مقصورات تحت الخلية المختلفة داخل نفس الحيوان أمر بالغ الأهمية لفهم كامل كيف يساهم UPS في اللدونة متشابك، الذاكرة والمرض. الطريقة الموصوفة هنا تسمح بجمع الكسور النووية والسيتوبلازمية والخام متشابك من نفس القوارض (الفئران) الدماغ، تليها القياس الكمي في وقت واحد من النشاط الحفاز بروتياسوم (بشكل غير مباشر، وتوفير نشاط من جوهر بروتياسوم فقط) والربط محددة في كل من يوبيكويتين وضع العلامات البروتين. وهكذا، يمكن استخدام هذه الطريقة لمقارنة مباشرة التغيرات دون الخلوية في النشاط في يوبيكويتين بروتياسوم في مناطق الدماغ المختلفة في نفس الحيوان خلال اللدونة متشابك، وتشكيل الذاكرة وحالات المرض المختلفة. ويمكن أيضا استخدام هذه الطريقة لتقييم التوزيع دون الخلوي ووظيفة البروتينات الأخرى داخل نفس الحيوان.

Introduction

نظام ubiquitin-proteasome (UPS) هو شبكة معقدة من هياكل البروتين المترابطة والأربطة التي تتحكم في تدهور معظم البروتينات قصيرة الأجل في الخلايا1. في هذا النظام، يتم وضع علامة على البروتينات للتحلل أو غيرها من العمليات الخلوية / مصائر من قبل فيوكويتين المعدل الصغيرة. يمكن للبروتين المستهدف الحصول على 1-7 تعديلات يوبيكويتين، والتي يمكن أن تربط معا في واحد من سبعة مواقع يسين (K) (K6، K11، K27، K29، K33، K48 و K63) أو ميثيونين N-الطرفية (M1؛ كما هو معروف باسم الخطي) في ubiquitin السابقة2. بعض من هذه العلامات polyubiquitin هي تدهور محددة (K48)3, في حين أن البعض الآخر مستقلة إلى حد كبير عن عملية تدهور البروتين (M1)4,5,6. وهكذا، فإن عملية انتشار البروتين معقدة بشكل لا يصدق والقدرة على قياس التغيرات في علامة بوليوبيكتين محددة أمر بالغ الأهمية لفهم دور ذلك التعديل في الأداء الخلوي في نهاية المطاف. زيادة تعقيد دراسة هذا النظام، وبروتياسوم، وهو الهيكل الحفاز للUPS7، على حد سواء يتحلل البروتينات ولكن يمكن أيضا أن تشارك في عمليات أخرى غير بروتيوليتيك8،9. ليس من المستغرب بعد ذلك، منذ اكتشافه الأولي، وقد تورط النشاط العادي والشاذ في ubiquitin-proteasome في تكوين الذاكرة على المدى الطويل ومجموعة متنوعة من حالات المرض، بما في ذلك العديد من العصبية، العصبية والنفسية اضطرابات10,11. ونتيجة لذلك، فإن الأساليب التي يمكن أن تحدد بشكل فعال وفعال نشاط UPS في الدماغ حاسمة لفهم في نهاية المطاف كيف يتم تنظيم هذا النظام في حالات المرض والتطوير النهائي لخيارات العلاج التي تستهدف في كل مكان و / أو أداء بروتياسوم.

هناك عدد من القضايا في قياس النشاط في كل مكان بروتيسوم في أنسجة الدماغ من الفئران والفئران، والتي هي النظم النموذجية الأكثر شيوعا المستخدمة لدراسة وظيفة يو بي سي، بما في ذلك 1) تنوع التعديلات ubiquitin، و 2) توزيع و التنظيم التفاضلي لUPS يعمل عبر المقصورات دون الخلوية12،13،14. على سبيل المثال، العديد من المظاهرات المبكرة من وظيفة ubiquitin-بروتياسوم في الدماغ أثناء تكوين الذاكرة تستخدم lysates الخلية بأكملها وأشار إلى زيادات تعتمد على الوقت في كل من البروتين في كل مكان والنشاط بروتياسوم15، 16 سنة , 17 سنة , 18 سنة , 19 سنة , 20.ومع ذلك، وجدنا مؤخرا أن النشاط ubiquitin-proteasome تختلف على نطاق واسع عبر المقصورات دون الخلوية استجابة للتعلم، مع زيادات متزامنة في بعض المناطق والانخفاض في مناطق أخرى، وهو نمط يختلف اختلافا كبيرا من ما تم الإبلاغ عنه سابقا في خلية كاملة lysates21. وهذا يتسق مع الحد من نهج الخلية بأكملها، كما أنه لا يمكن فصل مساهمة التغييرات في نشاط UPS عبر مقصورات دون الخلوية المختلفة. على الرغم من أن الدراسات الحديثة قد استخدمت بروتوكولات الكسور متشابك لدراسة UPS على وجه التحديد في نقاط الاشتباك العصبي استجابة للتعلم22،23،24، والأساليب المستخدمة occlude القدرة على قياس النووية والسيتوبلازمية في كل مكان بروتياسوم التغيرات في نفس الحيوان. وهذا يؤدي إلى حاجة لا لزوم لها لتكرار التجارب عدة مرات، وجمع كسر دون الخلوية مختلفة في كل. وهذا لا يؤدي فقط إلى خسارة أكبر في الأرواح الحيوانية، ولكنه يلغي القدرة على مقارنة نشاط يو بي سي مباشرة عبر مقصورات دون خلوية مختلفة استجابة لحدث معين أو أثناء حالة مرض معين. وبالنظر إلى أن أهداف البروتين من ubiquitin وبروتياسوم تختلف على نطاق واسع في جميع أنحاء الخلية، وفهم كيف يختلف الإشارات ubiquitin-proteasome في مقصورات دون الخلوية متميزة أمر بالغ الأهمية لتحديد الدور الوظيفي للUPS في الدماغ أثناء تكوين الذاكرة والاضطرابات العصبية والعصبية والنفسية.

لتلبية هذه الحاجة، قمنا مؤخرا بتطوير إجراء حيث يمكن جمع الكسور النووية والسيتوبلازمية ومتشابك لمنطقة الدماغ معينة من نفس الحيوان21. بالإضافة إلى ذلك، لحساب كمية محدودة من البروتين التي يمكن الحصول عليها من جمع كسور دون الخلوية متعددة من نفس العينة، ونحن الأمثل البروتوكولات المنشأة سابقا لفحص في المختبر نشاط بروتياسوم والربط محددة البروتين في كل مكان في الخلايا اللمعة التي تم جمعها من أنسجة الدماغ القوارض. باستخدام هذا البروتوكول، تمكنا من جمع ومقارنة مباشرة التغيرات تعتمد على التعلم في النشاط بروتياسوم، K48، K63، M1 ومستويات تعدد النقاط البروتينية الشاملة في النواة والسيتوبلازم وفي نقاط الاشتباك العصبي في اللوزة الجانبية للفئران. هنا، ونحن نصف بالتفصيل إجراءنا ( الشكل1)،والتي يمكن أن تحسن بشكل كبير فهمنا لكيفية مشاركة UPS في تشكيل الذاكرة على المدى الطويل ومختلف حالات المرض. ومع ذلك، تجدر الإشارة إلى أن النشاط البروتياسوم في المختبر التي نوقشت في بروتوكولنا، على الرغم من استخدامها على نطاق واسع، لا يقيس مباشرة نشاط المجمعات بروتياسوم 26S كاملة. بدلا من ذلك، يقيس هذا الفحص نشاط جوهر 20S، وهذا يعني أنه يمكن أن يكون فقط بمثابة وكيل لفهم نشاط الأساسية نفسها بدلا من مجمع 26S بروتياسوم بأكمله.

Protocol

وقد تمت الموافقة على جميع الإجراءات بما في ذلك المواضيع الحيوانية من قبل معهد فرجينيا للفنون التطبيقية وجامعة الولاية المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها (IACUC). 1. جمع وتشريح أنسجة الدماغ القوارض ملاحظة: يمكن تطبيق هذا البروتوكول على مجموعة متنوعة م…

Representative Results

باستخدام الإجراء الموضح هنا، تم جمع الكسور النووية والسيتوبلازمية ومتشابك من اللوزة الجانبية لدماغ الفئران (الشكل 1). تم تأكيد نقاء الكسور الفردية عن طريق النشاف الغربي، والتحقيق مع الأجسام المضادة ضد البروتينات التي ينبغي إثراؤها أو استنفادها في lysate. ف?…

Discussion

هنا، نقوم بتوضيح طريقة فعالة لتحديد التغيرات في النشاط في كل مكان-بروتياسوم عبر مقصورات تحت الخلوية المختلفة في نفس الحيوان. وفي الوقت الراهن، اقتصرت معظم المحاولات الرامية إلى قياس التغيرات دون الخلوية في نشاط النظام البروتيسوم في كل من يوبيكويتين على مقصورة واحدة لكل عينة، مما أدى إلى …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وقد تم دعم هذا العمل من قبل صناديق بدء التشغيل من كلية العلوم الزراعية والحياة وكلية العلوم في فرجينيا للتكنولوجيا.

Materials

0.5M EDTA Fisher 15575020 Various other vendors
20S Proteasome Activity Kit Millipore Sigma APT280 Other vendors carry different versions
ATP Fisher FERR1441 Various other vendors
Beta-actin antibody Cell signaling 4967S Various other vendors
Beta-tubulin antibody Cell signaling 2128T Various other vendors
BioTek Synergy H1 plate reader BioTek VATECHH1MT3 Other vendors carry different versions
B-mercaptoethanol Fisher ICN19024280 Various other vendors
clasto lactacystin b-lactone Millipore Sigma L7035 Various other vendors
Cryogenic cup Fisher 033377B Various other vendors
DMSO DMSO D8418 Varous other vendors
DTT Millipore Sigma D0632 Various other vendors
Glycerol Millipore Sigma G5516 Various other vendors
H3 antibody Abcam ab1791 Various other vendors
HEPES Millipore Sigma H3375 Various other vendors
Hydrochloric acid Fisher SA48 Various other vendors
IGEPAL (NP-40) Millipore Sigma I3021 Various other vendors
K48 Ubiquitin Antibody Abcam ab140601 Various other vendors
K63 Ubiquitin Antibody Abcam ab179434 Various other vendors
KCl Millipore Sigma P9541 Various other vendors
KONTES tissue grinder VWR KT885300-0002 Various other vendors
Laemmli sample buffer Bio-rad 161-0737 Various other vendors
Linear Ubiquitin Antibody Life Sensors AB-0130-0100 Only M1 antibody
MgCl Millipore Sigma 442611 Various other vendors
Microcentrifuge Eppendorf 2231000213 Various other manufacturers/models
myr-AIP Enzo Life Sciences BML-P212-0500 Carried by Millipore-Sigma
NaCl Millipore Sigma S3014 Various other vendors
Odyssey Fc Imaging System LiCor 2800-02 Other vendors carry different versions
Phosphatase Inhibitor Millipore Sigma 524625 Various other vendors
Precision Plus Protein Standard Bio-rad 161-0373 Various other vendors
Protease Inhibitor Millipore Sigma P8340 Various other vendors
PSD95 antibody Cell signaling 3450T Various other vendors
SDS Millipore Sigma L3771 Various other vendors
Sodium hydroxide Fisher SS255 Various other vendors
Sucrose Millipore Sigma S0389 Various other vendors
TBS Alfa Aesar J62938 Varous other vendors
Tris Millipore Sigma T1503 Various other vendors
Tween-20 Fisher BP337-100 Various other vendors
Ubiquitin Antibody Enzo Life Sciences BML-PW8810 Various other vendors

References

  1. Hershko, A., Ciechanover, A. The ubiquitin system. Annu Rev Biochem. 67, 425-479 (1998).
  2. Akutsu, M., Dikic, I., Bremm, A. Ubiquitin chain diversity at a glance. Journal of Cell Science. 129 (5), 875-880 (2016).
  3. Ravid, T., Hochstrasser, M. Diversity of degradation signals in the ubiquitin-proteasome system. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 9 (9), 679-690 (2008).
  4. Erpapazoglou, Z., Walker, O., Haguenauer-Tsapis, R. Versatile roles of k63-linked ubiquitin chains in trafficking. Cells. 3 (4), 1027-1088 (2014).
  5. Iwai, K., Fujita, H., Sasaki, Y. Linear ubiquitin chains: NF-kappaB signalling, cell death and beyond. Nature Review Molecular Cell Biology. 15 (8), 503-508 (2014).
  6. Rieser, E., Cordier, S. M., Walczak, H. Linear ubiquitination: a newly discovered regulator of cell signalling. Trends in Biochemical Sciences. 38 (2), 94-102 (2013).
  7. Collins, G. A., Goldberg, A. L. The Logic of the 26S Proteasome. Cell. 169 (5), 792-806 (2017).
  8. Bhat, K. P., et al. The 19S proteasome ATPase Sug1 plays a critical role in regulating MHC class II transcription. Molecular Immunology. 45 (8), 2214-2224 (2008).
  9. Ezhkova, E., Tansey, W. P. Proteasomal ATPases link ubiquitylation of histone H2B to methylation of histone H3. Molecular Cell. 13 (3), 435-442 (2004).
  10. Jarome, T. J., Helmstetter, F. J. The ubiquitin-proteasome system as a critical regulator of synaptic plasticity and long-term memory formation. Neurobiology of Learning and Memory. 105, 107-116 (2013).
  11. Hegde, A. N., Upadhya, S. C. The ubiquitin-proteasome pathway in health and disease of the nervous system. Trends in Neuroscience. 30 (11), 587-595 (2007).
  12. Adori, C., et al. Subcellular distribution of components of the ubiquitin-proteasome system in non-diseased human and rat brain. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 54 (2), 263-267 (2006).
  13. Upadhya, S. C., Ding, L., Smith, T. K., Hegde, A. N. Differential regulation of proteasome activity in the nucleus and the synaptic terminals. Neurochemistry International. 48 (4), 296-305 (2006).
  14. Enenkel, C., Lehmann, A., Kloetzel, P. M. Subcellular distribution of proteasomes implicates a major location of protein degradation in the nuclear envelope-ER network in yeast. EMBO Journal. 17 (21), 6144-6154 (1998).
  15. Jarome, T. J., Kwapis, J. L., Ruenzel, W. L., Helmstetter, F. J. CaMKII, but not protein kinase A, regulates Rpt6 phosphorylation and proteasome activity during the formation of long-term memories. Frontiers in Behavioral Neuroscience. 7, 115 (2013).
  16. Jarome, T. J., Werner, C. T., Kwapis, J. L., Helmstetter, F. J. Activity dependent protein degradation is critical for the formation and stability of fear memory in the amygdala. PLoS One. 6 (9), e24349 (2011).
  17. Lopez-Salon, M., et al. The ubiquitin-proteasome cascade is required for mammalian long-term memory formation. European Journal of Neuroscience. 14 (11), 1820-1826 (2001).
  18. Reis, D. S., Jarome, T. J., Helmstetter, F. J. Memory formation for trace fear conditioning requires ubiquitin-proteasome mediated protein degradation in the prefrontal cortex. Frontiers in Behavior Neuroscience. 7, 150 (2013).
  19. Rosenberg, T., Elkobi, A., Rosenblum, K. mAChR-dependent decrease in proteasome activity in the gustatory cortex is necessary for novel taste learning. Neurobiology of Learning and Memory. 135, 115-124 (2016).
  20. Rosenberg, T., Elkobi, A., Dieterich, D. C., Rosenblum, K. NMDAR-dependent proteasome activity in the gustatory cortex is necessary for conditioned taste aversion. Neurobiology of Learning and Memory. 130, 7-16 (2016).
  21. Orsi, S. A., et al. Distinct subcellular changes in proteasome activity and linkage-specific protein polyubiquitination in the amygdala during the consolidation and reconsolidation of a fear memory. Neurobiology of Learning and Memory. 157, 1-11 (2019).
  22. Cullen, P. K., Ferrara, N. C., Pullins, S. E., Helmstetter, F. J. Context memory formation requires activity-dependent protein degradation in the hippocampus. Learning and Memory. 24 (11), 589-596 (2017).
  23. Jarome, T. J., Ferrara, N. C., Kwapis, J. L., Helmstetter, F. J. CaMKII regulates proteasome phosphorylation and activity and promotes memory destabilization following retrieval. Neurobiology of Learning and Memory. 128, 103-109 (2016).
  24. Lee, S. H., et al. Synaptic protein degradation underlies destabilization of retrieved fear memory. Science. 319 (5867), 1253-1256 (2008).
  25. Dunah, A. W., Standaert, D. G. Dopamine D1 receptor-dependent trafficking of striatal NMDA glutamate receptors to the postsynaptic membrane. Journal of Neuroscience. 21 (15), 5546-5558 (2001).
  26. Kelly, P. T., Cotman, C. W. Synaptic proteins. Characterization of tubulin and actin and identification of a distinct postsynaptic density polypeptide. Journal of Cell Biology. 79 (1), 173-183 (1978).
  27. Mengual, E., Arizti, P., Rodrigo, J., Gimenez-Amaya, J. M., Castano, J. G. Immunohistochemical distribution and electron microscopic subcellular localization of the proteasome in the rat CNS. Journal of Neuroscience. 16 (20), 6331-6341 (1996).

Play Video

Cite This Article
McFadden, T., Devulapalli, R. K., Jarome, T. J. Quantifying Subcellular Ubiquitin-proteasome Activity in the Rodent Brain. J. Vis. Exp. (147), e59695, doi:10.3791/59695 (2019).

View Video