Summary

Простая хирургическая индукция кондуктивной потери слуха с проверкой с использованием Otoscope Визуализация и поведенческие хлопать Startle ответ на крысы

Published: October 26, 2019
doi:

Summary

Здесь мы представляем протокол для создания репликативной кондуктивной индукции потери слуха через хирургический проколов ывана барабанная перепончатость и проверки по otoscope визуализации и поведенческой оценки хлопать startle.

Abstract

Кондуктивная потеря слуха (CHL) является распространенным нарушением слуха у людей. Целью протокола является описание простой хирургической процедуры для индуцирования КХЛ у грызунов. Протокол демонстрирует КХЛ по переплету барабанной оболочки. Проверка хирургии КХЛ была otoscope обследования и поведенческой оценки хлопать startle ответ, как репликати и надежные, и простые методы, чтобы продемонстрировать потерю слуха произошло. Простая процедура CHL выгодна из-за ее воспроизводимости и гибкости для различных занятий в исследовании потери слуха. Ограничения индуцирования CHL хирургическим подходом связаны с кривой обучения для выполнения хирургической процедуры и уверенностью в аудиологическом обследовании. Индуцирование нарушения слуха ч. 4 м. позволяет легко изучать нервные проявления и поведенческие исходы потери слуха.

Introduction

Распространенность потери слуха у детей и взрослых составляет примерно 19,5%1 и 15,2%соответственно. Тем не менее, примерно 39,3% всех новорожденных с ненормальным скринингслух не получают лечения, как сообщили Центры по контролю заболеваний3. Потеря слуха является широко изученным состоянием, и грызун является надежной моделью для изучения нормальных нарушений слуха и слуха4,5,6,7,8,9 ,10,11,12,13,14,15. Слуховые расстройства, такие как кондуктивная потеря слуха (CHL) приводят к увеличению краткосрочной синаптической депрессии в слуховой коре4, что приводит к более мелким психометрическим склонам, связанным с порогами обнаружения частотной модуляции 5. Кондуктивные модели потери слуха путем хирургического удаления /смещения Malleus, тимпанической мембраны (TM) прокол или затычка для ушей легко используются и позволяют быстро индукции модели потери слуха5,14 ,15,16,17,18. Целью настоящего протокола и метода является демонстрация простой и воспроизводимой модели КХЛ у грызунов.

Настоящий протокол является недорогим (300 долларов США со всеми инструментами), и легко изменить для различных исследований. Крыса была подробная оценка анатомии среднего уха19,20,21,22,23, хирургические подходы24, модели в отит СМИ25, 26,27 и ТМ прокол регенерации16,17,18,28,29,30, что делает его идеальной моделью для изучения потеря слуха. Здесь, простая процедура индукции CHL описана с проверкой otoscope и поведенческой оценкой с реакцией хлопать startle в крысе, которая после этого может быть использована для того чтобы исследовать дополнительные sequelae потери слуха. Процедура КХЛ индуцируется хирургическим проколом ТМ. Проверка процедуры КХЛ осуществляется с помощью визуализации отоскопа для определения отсутствия ТМ. Поведенческая оценка осуществляется высоким уровнем децибел (dB) уровня звукового давления (SPL) ручной хлопок. Этот метод был применен ранее в различных грызунов. Легко размножается, производит надежные психометрические различия и изменения в нервных физиологических реакциях4,5,16,17,18.

Protocol

Настоящее исследование и процедуры были одобрены комитетами по этике исследований в отношении животных Городского университета Гонконга, Университета Гонконга и Департамента здравоохранения Специального административного района Гонконга. 1. Звери Используйте К…

Representative Results

Простая процедура CHL была выполнена на 90 крыс и из этой группы 2 было значительное кровотечение и 2 не имеют потери слуха на следующий день, как оценивается поведенческие хлопок startle. Эти четыре крысы были отброшены. Крысы должны быть отброшены, как описано в причинах в о?…

Discussion

Мы описываем простую хирургическую индукцию КХЛ с проверкой с использованием визуализации отоскопа и поведенческой реакции хлопания у крыс. Здесь мы демонстрируем метод на крысах и ранее этот метод был применен к песчанки и мышей. Этот метод может быть легко принят к другим грызунам. И…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была частично поддержана Гонконгнаучной гранты Совета, Ранняя карьера Схема, проект #21201217 К. Л., для проекта мозга картирования управляемой электрофизиологии с приложениями в области слуха и исследования шумового загрязнения. Мы благодарим Посградо ан Сьенсиас Биомидикас, Институт нейробиологии Национального университета Aut’noma де Мексика (УНАМ), Consejo Nacional де Ciencia у Tecnologa (ConACyT) Мексика для аспирантов 578458 в FAM.

Materials

Latex, polyvinyl or nitrile gloves AMMEX Use unpowdered gloves 8-mil
Micro spring scissors (see Fig. 1b) RWD Life Science S11035-08 8.0 cm total length, with 3.5mm cutting edge, or similar micro forceps. Standard tweezers with spring action will suffice
Otoscope mini 3000 HEINE  D-008.70.120M Standard LED otoscope will suffice
Rat or mouse JAX labs Any small rodent 
Small rodent cage Tecniplast 1284L Need two cages to separate CHL rodent from hearing rodent. If rodent are in direct contact with one-another, they will startle each other. Cage dimensions 365 x 207 x 140 mm, floor area: 530 cm2/82.15 in2

References

  1. Shargorodsky, J., Curhan, S. G., Curhan, G. C., Eavey, R. Change in prevalence of hearing loss in US adolescents. The Journal of the American Medical Association. 304 (7), 772-778 (2010).
  2. Lucas, J. W., Schiller, J. S., Benson, V. Summary health statistics for U.S. adults: National health interview survey, 2001. National Center for Health Statistics. Vital and health statistics. 10 (218), 1-134 (2004).
  3. Gaffney, M., Green, D. R., Gaffney, C. Newborn hearing screening and follow-up: Aare children receiving recommended services?. Public Health Reports. 125 (2), 199-207 (2010).
  4. Xu, H., Kotak, V. C., Sanes, D. H. Conductive hearing loss disrupts synaptic and spike adaptation in developing auditory cortex. The Journal of Neuroscience. 27 (35), 9417-9426 (2007).
  5. Buran, B. N., et al. A sensitive period for the impact of hearing loss on auditory perception. The Journal of Neuroscience. 34 (6), 2276-2284 (2014).
  6. Finck, A., Sofouglu, M. Auditory sensitivity of the Mongolian gerbil. The Journal of Auditory Research. 6, 313-319 (1966).
  7. Finck, A. Auditory sensitivity of the Mongolian Gerbil (Merionesunguiculatus). The Journal of the Acoustical Society of America. 41 (60), 1579 (1967).
  8. Finck, A., Schneck, C. D., Hartman, A. F. Development of auditory function in the Mongolian gerbil. The Journal of the Acoustical Society of America. 46 (1A), 107 (1969).
  9. Ryan, A. Hearing sensitivity of the Mongolian gerbil, Meriones Unguiculatis. The Journal of the Acoustical Society of America. 59, 1222-1226 (1976).
  10. Dallos, P., Harris, D., Ozdamar, O., Ryan, A. Behavioral, compound action potential, and single unit thresholds: relationship in normal and abnormal ears. The Journal of the Acoustical Society of America. 64 (1), 151-157 (1978).
  11. Kelly, J. B., Potash, M. Directional responses to sounds in young gerbils (Meriones unguiculatus. Journal of Comparative Psychology. 100 (1), 37-45 (1986).
  12. Heffner, H. E., Koay, G., Heffner, R. S. Behavioral assessment of hearing in mice–conditioned suppression. Current Protocols in Neuroscience. , (2006).
  13. Heffner, R. S., Koay, G., Heffner, H. E. Audiograms of five species of rodents: implications for the evolution of hearing and the perception of pitch. Hearing Research. 157 (1-2), 138-152 (2001).
  14. Lupo, E. J., Koka, K., Thornton, J. L., Tollin, D. J. The effects of experimentally induced conductive hearing loss on spectral and temporal aspects of sound transmission through the ear. Hearing Research. 272 (1-2), 30-41 (2011).
  15. Liberman, M. C., Liberman, L. D., Maison, S. F. Chronic conductive hearing loss leads to cochlear degeneration. PLoS One. 10 (11), e0142341 (2015).
  16. Tucci, D. L., Cant, N. B., Durham, D. Conductive hearing loss results in a decrease in central auditory system activity in the young gerbil. Laryngoscope. 109, 1359-1371 (1999).
  17. Tucci, D. L., Cant, N. B., Durham, D. Effects of conductive hearing loss on gerbil central auditory system activity in silence. Hearing Research. 155, 124-132 (2001).
  18. Cook, R. D., Hung, T. Y., Miller, R. L., Smith, D. W., Tucci, D. L. Effects of conductive hearing loss on auditory nerve activity in gerbil. Hearing Research. 164, 127-137 (2002).
  19. Albuquerque, A. A., Rossato, M., Oliveira, J. A., Hyppolito, M. A. Understanding the anatomy of ears from guinea pigs and rats and its use in basic otologic research. Brazilian Journal of Otorhinolaryngology. 75, 43-49 (2009).
  20. Li, P., Gao, K., Ding, D., Salvi, R. Characteristic anatomical structures of rat temporal bone. Journal of Otology. 10, 118-124 (2015).
  21. Judkins, R. F., Li, H. Surgical anatomy of the rat middle ear. Otolaryngology-Head and Neck Surgery. 117, 438-447 (1997).
  22. Hellström, S., Salén, B., Stenfors, L. E. Anatomy of the rat middle ear. A study under the dissection microscope. Acta Anatomica (Basel). 112, 346-352 (1982).
  23. Albiin, N., Hellström, S., Salén, B., Stenfors, L. E., Wirell, S. The vascular supply of the rat tympanic membrane. The Anatomical Record. 212, 17-22 (1985).
  24. Li, P., Ding, D., Gao, K., Salvi, R. Standardized surgical approaches to ear surgery in rats. Journal of Otology. 10, 72-77 (2015).
  25. Johansson, U., Hellström, S., Anniko, M. Round window membrane in serous and purulent otitis media. Structural study in the rat. Annals of Otology, Rhinology & Laryngology. 102, 227-235 (1993).
  26. Magnuson, K., Hellström, S. Early structural changes in the rat tympanic membrane during pneumococcal otitis media. European Archives of Oto-Rhino-Laryngology. 251, 393-398 (1994).
  27. Hellström, S., Salén, B., Stenfors, L. E. The site of initial production and transport of effusion materials in otitis media serosa. A study on rat middle ear cavity. Acta Oto-Laryngologica. 93, 435-440 (1982).
  28. Shen, Y., et al. Scaffolds for tympanic membrane regeneration in rats. Tissue Engineering Part A. 19, 657-668 (2013).
  29. Wang, A. Y., et al. Rat model of chronic tympanic membrane perforation: Ventilation tube with mitomycin C and dexamethasone. International Journal of PediatricOtorhinolaryngology. 80, 61-68 (2016).
  30. Stenfeldt, K., Johansson, C., Hellström, S. The collagen structure of the tympanic membrane: collagen types I, II, and III in the healthy tympanic membrane, during healing of a perforation, and during infection. Archives of Otolaryngology–Head & Neck Surgery. 132, 293-298 (2006).
  31. Zhao, H., et al. Temporary conductive hearing loss in early life impairs spatial memory of rats in adulthood. Brain and Behavior. 8, e01004 (2018).

Play Video

Cite This Article
Manno, F. A. M., Manno, S. H. C., Ma, V., Barrios, F. A., Cho, W. C., Cheng, S. H., Lau, C. Simple Surgical Induction of Conductive Hearing Loss with Verification Using Otoscope Visualization and Behavioral Clap Startle Response in Rat. J. Vis. Exp. (152), e57993, doi:10.3791/57993 (2019).

View Video