Summary

Microprobe capillaire elektroforese massaspectrometrie voor eencellige metabolomica in Live kikker (Xenopus laevis) embryo 's

Published: December 22, 2017
doi:

Summary

We worden stappen beschreven waarmee snel in situ bemonstering van een klein gedeelte van een afzonderlijke cel met hoge precisie en minimale invasie met behulp van capillaire gebaseerde micro-sampling, ter vergemakkelijking van chemische karakterisering van een momentopname van de metabole activiteit in levende embryo’s met behulp van een custom-built eencellige capillaire elektroforese en massaspectrometrie platform.

Abstract

De kwantificering van kleine molecules in afzonderlijke cellen werpt nieuwe mogelijkheden om beter inzicht te krijgen in de fundamentele processen die ten grondslag liggen aan de ontwikkeling van het embryo. Inschakelen eencellige onderzoeken rechtstreeks in levende embryo’s, nieuwe analytische benaderingen nodig zijn, met name die gevoelige, selectieve kwantitatieve, robuust en schaalbaar naar de andere cel maten. Hier presenteren we een protocol waarmee de in situ -analyse van het metabolisme in afzonderlijke cellen in vrij ontwikkeling van embryo’s van de Zuid-Afrikaanse klauwkikker kikker (Xenopus laevis), een krachtig model in cel en ontwikkelingsbiologie. Deze aanpak gebruikt een capillaire microprobe om een bepaald gedeelte uit één geïdentificeerde cellen in het embryo, verlaten naburige cellen intact voor latere analyse gecombineerd. De verzamelde celinhoud wordt geanalyseerd door een microscale capillaire elektroforese electrospray ionisatie (CE-ESI) interface gekoppeld aan een massaspectrometer high-resolution tandem. Deze aanpak is schaalbaar tot verschillende groottes van de cel en compatibel met de complexe driedimensionale structuur van het zich ontwikkelende embryo. Als voorbeeld tonen we dat microprobe die eencellige CE-ESI-MS in staat de opheldering van metabolische cel heterogeniteit dat zich ontvouwt stelt als een progenitor cel aanleiding tot nakomelingen tijdens de ontwikkeling van het embryo geeft. Naast cel en ontwikkelingsbiologie zijn de protocollen van de analyse van de eencellige hier beschreven vatbaar voor andere cel formaat, celtypes of diermodellen.

Introduction

Een grondig inzicht in de embryonale ontwikkeling vereist karakterisering van alle moleculaire veranderingen die in elke cel van het ontwikkelende organisme ontvouwen. Next-Generation Sequencing met moleculaire versterking maakt diepe meting van eencellige transcriptomes1 in ontwikkelende systemen2,3, aanzienlijk minder is bekend over de suite van kleinere moleculen geproduceerd in één embryonale cellen, met inbegrip van eiwitten en, vooral, metabolieten (moleculaire massa < ~ 1.500 Da). Met een snelle en dynamische respons op intrinsieke en extrinsieke gebeurtenissen fungeert de metabolome als een krachtige descriptor van moleculaire staat van een cel. De eencellige metabolome, roept daarom de mogelijkheden voor het bijhouden van de ruimtelijke en temporele ontwikkeling van cel heterogeniteit in de vroege embryo en identificeren van nieuwe moleculen voor functionele studies. Echter zonder moleculaire amplificatie beschikbaar voor deze moleculen vraagt detectie van de metabolome om uitzonderlijke gevoeligheid met behulp van spectrometrie van de massa (MS), die is de technologie van de keuze voor metaboliet analyse.

Eencellige MS is een verzameling van technologieën met voldoende gevoeligheid voor het meten van metabolieten in afzonderlijke cellen (Zie beoordelingen 4,5,6,7,8,9 ,10,11,12,13,14,15). Reproduceerbaar bemonstering van cellen en efficiënte winning van metabolieten zijn essentieel voor de succesvolle opsporing van metabolieten in afzonderlijke cellen. Geheel-cel dissectie van geïdentificeerde cellen uit Xenopus embryo’s heeft de karakterisatie van kleine moleculen en peptiden16ingeschakeld. Andere benaderingen hanteren micropipetten om te proeven van de individuele levende cellen gevolgd door detectie met behulp van electrospray ionisatie (ESI) MS. Bijvoorbeeld, de metabolieten in plant of zoogdiercellen werden gemeten door eencellige video MS17, druk sonde18, één sonde19en fluidic kracht microscopie20, onder andere technieken21, 22,23,24. Bovendien vereenvoudigt de opneming van chemische scheiding vóór ionisatie in de eencellige MS workflow efficiënt de metabolome, dus het verlichten van eventuele storingen tijdens ion generatie voor detectie. Bovenal biedt scheiding ook verbinding-specifieke informatie om te helpen in de moleculaire identificaties. Capillaire elektroforese (CE) is gebruikt voor het detecteren van metabolieten in één ontleed25,26 of microsampled27neuronen, vastleggen van kleine-molecuul verschillen tussen neuron fenotypen. We onlangs aangepast CE aan ESI tandem MS het traceringsniveau detectie van honderden metabolieten in afzonderlijke cellen die werden ontleed van vroege embryo’s van Xenopus laevis16,28inschakelen. Deze studies bleek verrassend metabole verschillen tussen embryocellen in een vroeg stadium van ontwikkeling en leidde tot de ontdekking van metabolieten met eerder onbekende developmental effecten16.

Wij bieden hier een protocol dat de detectie van metabolieten in afzonderlijke cellen rechtstreeks in een levende gewervelde embryo met behulp van microprobe eencellige CE-ESI-MS29,30ingeschakeld. De model-organisme gekozen is de 8-tot-32-cel X. laevis embryo, hoewel de aanpak ook voor de latere stadia van ontwikkeling en andere soorten modelorganismen geldt. Dit protocol maakt gebruik van aangescherpte haarvaten met multi-as vertalende controle onder begeleiding door een high-resolution imaging systeem naar een ~ 10 nL gedeelte van geïdentificeerde cellen in situ in het morfologisch complexe zich ontwikkelende embryo gecombineerd. Deze microprobe is schaalbaar naar kleinere cellen en opereert binnen seconden, dat is voldoende snel om bij te houden van de cel geslachten in het embryo. Na uitpakken polar of apolaire kleine molecules, zoals metabolieten en peptides, uit de verzamelde monster in ~ 4-5 µL extractievloeistof, een ~ 10 nL van de resulterende uittreksel wordt geanalyseerd in een op maat gemaakte CE-platform naar een massaspectrometer ESI afgebroken. Bouw en de exploitatie van het CE-ESI-multiple sclerose platform is gebaseerd op protocollen elders beschreven. 31 , 32 de co-axiale CE-ESI-interface wordt geconstrueerd zoals elders beschreven. 31 dit platform wordt onderhouden in het regime kegel-jet sproeien om het traceringsniveau gevoeligheid met een capaciteit voor kwantificering over een 4-5 log-volgorde dynamisch bereik (relatieve28,29,30 of absolute16). Het CE-ESI-MS platform biedt een 60-amol ondergrens voor detectie met 8% relatieve standaardafwijking (RSD) in kwantificatie over een geteste bereik van 10 nM tot 1 µM voor kleine molecules16, die toereikend zijn om te karakteriseren van endogene metabolieten in X. laevis cellen. Microprobed cellen blijven verdelen gaandeweg de embryo via ontwikkeling30, waardoor stoffelijk als ruimtelijk opgelost analyse van cellulaire metabolisme. Inderdaad, eencellige CE-ESI-MS kan worden gebruikt voor het vinden van metabole verschillen tussen cellen die de dorsal-ventrale16,29, dier-plantaardige16, links-rechts28 developmental assen alsmede cellen in beslag nemen die vormen het zenuwweefsel gedoemd dorsale afstamming van een gemeenschappelijk progenitor cel in X. laevis30. Naast het opvragen van metabole verschillen tussen afzonderlijke embryonale cellen op verschillende ontwikkelingsstadia van de X. laevis embryo30, wij verwachten dat de protocollen die hier worden beschreven zijn van toepassing op een breed scala van biomoleculen en de microsampled van de afzonderlijke cellen uit verschillende stadia van embryonale ontwikkeling, alsmede andere soorten cellen en modelorganismen. Bovendien, kan de microprobe worden gebruikt voor microsampling, terwijl een ander platform compatibel met minuscule monsters kan worden gebruikt voor scheiding en/of karakterisering van biomoleculen.

Protocol

Alle protocollen met betrekking tot het onderhoud en de behandeling van Xenopus laevis werden goedgekeurd door het institutionele Animal Care en gebruik Comité aan de George Washington Universiteit (IACUC geen. A311). 1. voorbereiding van de bemonstering van de instrumenten, Media, oplosmiddelen en bemonstering van gerechten 1 x Steinberg’s oplossing (SS) voor te bereiden door het oplossen van de volgende zouten in ultrazuiver water (~18.2 MΩ.cm bij 25 ° C) in de volgen…

Representative Results

Wij dienst onlangs microprobe eencellige CE-ESI-MS te karakteriseren van metabolieten in afzonderlijke geïdentificeerde cellen in vrij ontwikkelen Xenopus laevis embryo’s29,30. De microprobe maakt snel (~ 5 sec/cel), in situ aspiratie van ~ 10 nL van een afzonderlijke cel, meerdere aspiraties van dezelfde cel of meerdere andere cellen binnen de dezelfde of latere stadia van ontwikkeling van de levende embryo (<s…

Discussion

Microprobe CE-ESI-MS in staat stelt de directe karakterisering van metabolieten in afzonderlijke cellen in levend, vrij ontwikkeling van embryo’s. De kern van de aanpak zijn twee technische onderdelen, namelijk in situ capillaire microsampling en hoog-gevoeligheids CE-ESI-MS. vergeleken met geheel-cel dissectie, capillaire microsampling heeft het voordeel van snelle werking (enkele seconden vs. 5 min / cel door dissectie), compatibiliteit met de complexe driedimensionale morfologie van embryo’s en schaalbaarheid…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gesteund door de nationale instituten van gezondheid-subsidies GM114854 (tot P.N.) en CA211635 (tot P.N.), Arnold en Mabel Beckman Stichting Beckman Young Investigator toekennen (P.N.), de DuPont jonge Professor award (naar P.N.), de American Society for massa Spectrometrie Research Award (tot P.N.), en de Stichting van de Club van de kosmos-beurzen (aan R.M.O. en E.P.P.). De adviezen en conclusies in deze publicatie uitgedrukt zijn uitsluitend die van de auteurs en vertegenwoordigen niet noodzakelijk de officiële standpunten van de financieringsbronnen.

Materials

Reagents for Embryo Culture Media
Potasium chloride Fisher Scientific BP 366-1
Magnesium sulfate Fisher Scientific M 65-3
Calcium nitrate Sigma Aldrich C1396
Cysteine MP Biomedicals 101444
Trizma hydrochloride Sigma Aldrich T3253
Trizma base Sigma Aldrich T1503
Sodium chloride Fisher Scientific 5641-212
Name Company Catalog Number Comments
Metabolite Extraction Solvents
Acetonitrile (LC-MS-grade) Fisher Scientific A955
Methanol (LC-MS-grade) Fisher Scientific A456
Water (LC-MS-grade) Fisher Scientific W6
Name Company Catalog Number Comments
Solvents and Standards for CE-ESI-MS
Formic acid (LC-MS-grade) Fisher Scientific A11710X1-AMP
Methanol (LC-MS-grade) Fisher Scientific A456-4
Water (LC-MS-grade) Fisher Scientific W6
Sodium chloride Fisher Scientific 5641-212
Acetylcholine chloride Acros Organics 159170050
Name Company Catalog Number Comments
Microprobe Fabrication Setup
Micropippette puller Sutter Instrument Co. P-1000
Borosilicate capillaries Sutter Instrument Co. B100-50-10
Fine sharp forceps: Dumont #5, Biologie/Dumoxel Fine Science Tools (USA) Inc 11252-30 Corrosion resitant and autoclavable.
Name Company Catalog Number Comments
Microprobe Sampling Setup
Micromanipulator Eppendorf, Hauppauge, NY TransferMan 4r
Stereomicroscope Nikon SMZ18 Should be vibrationally isolated.
Illuminator e.g. Goosenecks Nikon C-FLED2
Microinjector Warner Instrument, Handem, CT PLI-100A
Transfer pipettes (Plastic, disposable) Fisher Scientific 13-711-7M
Petri dish 60 mm and 80 mm Fisher Scientific S08184
Glass Pasteur Pipets ( Borosilicate, disposable) Fisher Scientific 13-678-20A
Centrifuge Thermo Scientific Sorvall Legend X1R
Name Company Catalog Number Comments
CE-ESI-MS Setup
High voltage power supply Spellman CZE1000R The HVPS may be controlled remotely using a low-voltage program generated by a personal computer. Caution: High voltage presents electrical shock hazard; all connective parts must be grounded or carefully shielded to prevent users from accidental exposure.
Syringe pumps (2) Harvard Apparatus 704506
Stereomicroscope Amscope SM-3BZZ Stereomicroscope capable of 4.5× magnification, equipped with an illuminator to monitor the spraying mode of the CE-ESI interface.
XYZ translation stage Thorlabs PT3
XYZ translation stage Custom-built This platform is capable of loading nanoliter-amounts of sample into the separation capillary via hydrodynamic injection and supplying the BGE for CE. Both interfaces described in this work were able to inject 6–10 nL of sample within 1 min into a 1 m separation capillary
Stainless steel sample vials Custom-built
Stainless steel BGE vial Custom-built
Fused silica capillary (40 µm/105 µm ID/OD; 100 cm) Polymicro technologies TSP040105
Fused silica capillary (75 µm/360 µm ID/OD; 100 cm) Polymicro technologies TSP075375
Stainless steel emitter with blunt tips (130/260 µm ID/OD) Hamilton Co. 21031A For better performance, laser-cleave and fine-polish the emitter tip.
Syringes (gas-tight): 500 – 1000 µL Hamilton Co. 1750TTL
Digital multimeter Fluke Fluke 117
High-resolution Mass Spectrometer Bruker Daltonics Maxis Impact HD High-resolution tandem mass spectrometer equipped with an atmospheric-pressure interface configured for ESI
Tunning mixture for mass spectrometer calibration Agilent technologies ESI-L G1969-85000
Data Analysis ver. 4.3 software Bruker Daltonics
Name Company Catalog Number Comments
Ancillary Equipment
Vacuum concentrator capable of operation at 4–10°C Labconco 7310022
Analytical microbalance (XSE105DU) Fisher Scientific 01911005
Freezer (-20 °C) Fisher Scientific 97-926-1
Freezer (-80 °C) Fisher Scientific 88300ASP
Refrigerated Incubator Fisher Scientific 11475126
Vortex-mixer Benchmark BS-VM-1000

References

  1. Tang, F. C., Lao, K. Q., Surani, M. A. Development and applications of single-cell transcriptome analysis. Nat. Methods. 8 (4), S6-S11 (2011).
  2. Veselovska, L., et al. Deep sequencing and de novo assembly of the mouse oocyte transcriptome define the contribution of transcription to the DNA methylation landscape. Genome Biol. 16 (209), (2015).
  3. Tran, D. A., Bai, A. Y., Singh, P., Wu, X. W., Szabo, P. E. Characterization of the imprinting signature of mouse embryo fibroblasts by RNA deep sequencing. Nucleic Acids Res. 42 (3), 1772-1783 (2014).
  4. Wang, D. J., Bodovitz, S. Single cell analysis: the new frontier in ‘omics’. Trends Biotechnol. 28 (6), 281-290 (2010).
  5. Svatos, A. Single-cell metabolomics comes of age: new developments in mass spectrometry profiling and imaging. Anal. Chem. 83 (13), 5037-5044 (2011).
  6. Rubakhin, S. S., Romanova, E. V., Nemes, P., Sweedler, J. V. Profiling metabolites and peptides in single cells. Nat. Methods. 8 (4), S20-S29 (2011).
  7. Bodenmiller, B., et al. Multiplexed mass cytometry profiling of cellular states perturbed by small-molecule regulators. Nat. Biotechnol. 30 (9), 858-889 (2012).
  8. Rubakhin, S. S., Lanni, E. J., Sweedler, J. V. Progress toward single cell metabolomics. Curr. Opin. Biotechnol. 24 (1), 95-104 (2013).
  9. Kleparnik, K., Foret, F. Recent advances in the development of single cell analysis: A review. Anal. Chim. Acta. 800, 12-21 (2013).
  10. Zenobi, R. Single-cell metabolomics: Analytical and biological perspectives. Science. 342 (6163), 1243259 (2013).
  11. Gholipour, Y., Erra-Balsells, R., Nonami, H. In situ pressure probe sampling and UV-MALDI MS for profiling metabolites in living single cells. Mass Spectrom (Tokyo). 1 (1), A0003 (2012).
  12. Comi, T. J., Do, T. D., Rubakhin, S. S., Sweedler, J. V. Categorizing cells on the basis of their chemical profiles: progress in single-cell mass spectrometry. J. Am. Chem. Soc. 139 (11), 3920-3929 (2017).
  13. Lombard-Banek, C., Portero, E. P., Onjiko, R. M., Nemes, P. New-generation mass spectrometry expands the toolbox of cell and developmental biology. Genesis. 55, e23012 (2017).
  14. Yang, Y. Y., et al. Single-cell analysis by ambient mass spectrometry. Trac-Trends Anal. Chem. 90, 14-26 (2017).
  15. Lanni, E. J., Rubakhin, S. S., Sweedler, J. V. Mass spectrometry imaging and profiling of single cells. J. Proteomics. 75 (16), 5036-5051 (2012).
  16. Onjiko, R. M., Moody, S. A., Nemes, P. Single-cell mass spectrometry reveals small molecules that affect cell fates in the 16-cell embryo. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 112 (21), 6545-6550 (2015).
  17. Mizuno, H., Tsuyama, N., Harada, T., Masujima, T. Live single-cell video-mass spectrometry for cellular and subcellular molecular detection and cell classification. J. Mass Spectrom. 43 (12), 1692-1700 (2008).
  18. Nakashima, T., et al. Single-cell metabolite profiling of stalk and glandular cells of intact trichomes with internal electrode capillary pressure probe electrospray ionization mass spectrometry. Anal. Chem. 88 (6), 3049-3057 (2016).
  19. Pan, N., et al. The single-probe: A miniaturized multifunctional device for single cell mass spectrometry analysis. Anal. Chem. 86 (19), 9376-9380 (2014).
  20. Guillaume-Gentil, O., et al. Single-cell mass spectrometry of metabolites extracted from live cells by fluidic force microscopy. Anal. Chem. 89 (9), 5017-5023 (2017).
  21. Saha-Shah, A., Green, C. M., Abraham, D. H., Baker, L. A. Segmented flow sampling with push-pull theta pipettes. Analyst. 141 (6), 1958-1965 (2016).
  22. Hu, J., et al. Synchronized polarization induced electrospray: Comprehensively profiling biomolecules in single cells by combining both positive-ion and negative-ion mass spectra. Anal. Chem. 88 (14), 7245-7251 (2016).
  23. Zhang, L. W., Vertes, A. Energy charge, redox state, and metabolite turnover in single human hepatocytes revealed by capillary microsampling mass spectrometry. Anal. Chem. 87 (20), 10397-10405 (2015).
  24. Zhang, L. W., et al. In Situ metabolic analysis of single plant cells by capillary microsampling and electrospray ionization mass spectrometry with ion mobility separation. Analyst. 139 (20), 5079-5085 (2014).
  25. Lapainis, T., Rubakhin, S. S., Sweedler, J. V. Capillary electrophoresis with electrospray ionization mass spectrometric detection for single-cell metabolomics. Anal. Chem. 81 (14), 5858-5864 (2009).
  26. Nemes, P., Knolhoff, A. M., Rubakhin, S. S., Sweedler, J. V. Metabolic differentiation of neuronal phenotypes by single-cell capillary electrophoresis electrospray ionization mass spectrometry. Anal. Chem. 83 (17), 6810-6817 (2011).
  27. Aerts, J. T., et al. Patch clamp electrophysiology and capillary electrophoresis mass spectrometry metabolomics for single cell characterization. Anal. Chem. 86 (6), 3203-3208 (2014).
  28. Onjiko, R. M., Morris, S. E., Moody, S. A., Nemes, P. Single-cell mass spectrometry with multi-solvent extraction identifies metabolic differences between left and right blastomeres in the 8-cell frog (Xenopus) embryo. Analyst. 141 (12), 3648-3656 (2016).
  29. Onjiko, R. M., Plotnick, D. O., Moody, S. A., Nemes, P. Metabolic comparison of dorsal versus ventral cells directly in the live 8-cell frog embryo by microprobe single-cell CE-ESI-MS. Anal. Methods. , (2017).
  30. Onjiko, R. M., Portero, E. P., Moody, S. A., Nemes, P. In situ microprobe single-cell capillary electrophoresis mass spectrometry: Metabolic reorganization in single differentiating cells in the live vertebrate (Xenopus laevis) embryo. Anal. Chem. 89, 7069-7076 (2017).
  31. Nemes, P., Rubakhin, S. S., Aerts, J. T., Sweedler, J. V. Qualitative and quantitative metabolomic investigation of single neurons by capillary electrophoresis electrospray ionization mass spectrometry. Nat. Protoc. 8 (4), 783-799 (2013).
  32. Knolhoff, A. M., Nemes, P., Rubakhin, S. S., Sweedler, J. V., Wevers, R., Lutz, N., Sweedler, J. V. . Methodologies for Metabolomics. , 119-139 (2013).
  33. Sive, H. L., Grainger, R. M., Harland, R. M. . Early development of Xenopus laevis: a laboratory manual. , (2000).
  34. Moody, S. A. Cell lineage analysis in Xenopus embryos. Methods Mol Biol. 135, 331-347 (2000).
  35. Bowes, J. B., et al. Xenbase: a Xenopus biology and genomics resource. Nucleic Acids Res. 36, D761-D767 (2008).
  36. Karpinka, J. B., et al. Xenbase, the Xenopus model organism database; new virtualized system, data types and genomes. Nucleic Acids Res. 43 (D1), D756-D763 (2015).
  37. James-Zorn, C., et al. Xenbase: expansion and updates of the Xenopus model organism database. Nucleic Acids Res. 41 (D1), D865-D870 (2013).
  38. Moody, S. A. Fates of the blastomeres of the 16-cell stage Xenopus embryo. Dev. Biol. 119 (2), 560-578 (1987).
  39. Moody, S. A. Fates of the blastomeres of the 32-cell-stage Xenopus embryo. Dev. Biol. 122 (2), 300-319 (1987).
  40. Dale, L., Slack, J. M. W. Fate map for the 32-cell stage of Xenopus laevis. Development. 99 (4), 527-551 (1987).
  41. Klein, S. L. The first cleavage furrow demarcates the dorsal-ventral axis in Xenopus embryos. Dev. Biol. 120 (1), 299-304 (1987).
  42. Rollman, C. M., Moini, M. Ultrafast capillary electrophoresis/mass spectrometry of controlled substances with optical isomer separation in about a minute. Rapid Commun. Mass Spectrom. 30 (18), 2070-2076 (2016).
  43. Moini, M., Martinez, B. Ultrafast capillary electrophoresis/mass spectrometry with adjustable porous tip for a rapid analysis of protein digest in about a minute. Rapid Commun. Mass Spectrom. 28 (3), 305-310 (2014).
  44. Huhn, C., Ramautar, R., Wuhrer, M., Somsen, G. W. Relevance and use of capillary coatings in capillary electrophoresis-mass spectrometry. Anal. Bioanal. Chem. 396 (1), 297-314 (2010).
  45. Nemes, P., Marginean, I., Vertes, A. Spraying mode effect on droplet formation and ion chemistry in electrosprays. Anal. Chem. 79 (8), 3105-3116 (2007).
  46. Zhu, Z. J., et al. Liquid chromatography quadrupole time-of-flight mass spectrometry characterization of metabolites guided by the METLIN database. Nat. Protoc. 8 (3), 451-460 (2013).
  47. Wishart, D. S., et al. HMDB 3.0 The Human Metabolome Database in 2013. Nucleic Acids Res. 41 (D1), D801-D807 (2013).
  48. Liu, J. X., Aerts, J. T., Rubakhin, S. S., Zhang, X. X., Sweedler, J. V. Analysis of endogenous nucleotides by single cell capillary electrophoresis-mass spectrometry. Analyst. 139 (22), 5835-5842 (2014).
  49. Hubrecht, L., Nieuwkoop, P. D., Faber, J. . Normal table of Xenopus laevis (Daudin). A systematical and chronological survey of the development from the fertilized egg till the end of metamorphosis. , (1967).
  50. Grant, P. A., Herold, M. B., Moody, S. A. Blastomere explants to test for cell fate commitment during embryonic development. J. Vis. Exp. (71), (2013).
  51. Sellick, C. A., Hansen, R., Stephens, G. M., Goodacre, R., Dickson, A. J. Metabolite extraction from suspension-cultured mammalian cells for global metabolite profiling. Nat. Protoc. 6 (8), 1241-1249 (2011).

Play Video

Cite This Article
Onjiko, R. M., Portero, E. P., Moody, S. A., Nemes, P. Microprobe Capillary Electrophoresis Mass Spectrometry for Single-cell Metabolomics in Live Frog (Xenopus laevis) Embryos. J. Vis. Exp. (130), e56956, doi:10.3791/56956 (2017).

View Video