Summary

התעלה Excretory C. elegans כמודל עבור מורפוגנזה לומן תאיים ו Vivo ב מקוטב ממברנה להן בתא יחיד: תיוג על ידי התכה GFP, RNAi אינטראקציה עם המסך הדמיה

Published: October 03, 2017
doi:

Summary

התעלה excretory C. elegans הוא מודל תא בודד ייחודית לניתוח חזותי ויוו של דה נובו מקוטב ממברנה להן. פרוטוקול זה מתאר שילוב של גישות, וישימה זיהוי ואפיון של מולקולות בימוי חד־תאיות tubulogenesis, הפסגה להן קרום ו לומן סטנדרטי גנטי/RNAi והדמיה.

Abstract

התעלות excretory 4 C. elegans הינם צינורות צרים מורחב לכל אורך החיה של תא בודד, עם endotubes תאיים כמעט באותה מידה רחוק מורחב זה לבנות ולייצב את לומן עם קרום, submembraneous שלד התא אופי הפסגה. התא excretory מרחיבה את אורכו כ 2000 פעמים ליצירת תעלות אלו, מכין מודל זה ייחודי להערכה ויוו של דה נובו מקוטב ממברנה להן, מורפוגנזה לומן תאיים ו חד־תאיות tubulogenesis. פרוטוקול המוצגת כאן מראה כיצד לשלב תקן תיוג, רווח, הפסד-של-פונקציה גנטית או התערבות ב RNA (RNAi)-, וגישות מיקרוסקופיים לשימוש מודל זה כדי לנתח באופן חזותי ולנתח באופן פונקציונלי תהליכים אלה ברמה המולקולרית. כדוגמה של גישה תיוג, הפרוטוקול מתאר את הדור של חיות הטרנסגניים עם חלבונים פיוז’ן פלורסנט לניתוח בשידור חי של tubulogenesis. כדוגמה של גישה גנטיים, זה מדגיש את נקודות המפתח של חזותי מבוסס-RNAi אינטראקציה מסך המיועד לשינוי הפנוטיפ רווח-של-הפונקציה לתעלה פיברוזיס. הן השיטות הספציפיות תיאר כיצד: תווית והמחש התעלות בהבעת פלורסנט חלבונים; לבנות ספרייה RNAi יישוב ו אסטרטגיה RNAi הקרנת לניתוח מולקולרית של תעלת מורפוגנזה; מבחינה ויזואלית להעריך שינויים של תעלת פנוטיפים; ציון אותם על ידי לנתח פלורסצנטיות מיקרוסקופ; לאפיין את תעלת subcellular הרכיבים ברזולוציה גבוהה יותר על ידי מיקרוסקופיה קונפוקלית; ולכמת פרמטרים חזותי. הגישה היא שימושית עבור החוקר מעוניין ניצול תעלת excretory C. elegans עבור זיהוי ואפיון גנים המעורבים בתהליכי phylogenetically שנשמרת לומן תאיים ו חד־תאיות מורפוגנזה שפופרת.

Introduction

כל האיברים הפנימיים מורכבים של צינורות, חיונית עבור שלהם פונקציות שונות, כגון תחבורה, חילופי גזים, נוזלים וחומרים מזינים, את הפרשת פסולת מטבולית. אופיים מקוטב, עם ממברנות הפסגה, lumenal ברורים, מותאמת עבור פונקציות ספציפיות אלה, ויש פגמים להן המערכות שלהם אנדו – ואת קרום פלזמה הגורם השכיח של מחלות אנושיות1,2. הרוב המכריע של צינורות של להערכת ושל האיברים הפנימיים הם multicellular ויוצרים לומן intercellularly; עם זאת, חד־תאיות צינורות, היוצרים לומן intracellularly, ניתן, לדוגמה, לייצג בדיוק כמו 30%-50% של מיטות נימי האנושי2. הממברנות מקוטב של רב – וצינורות חד־תאיות דומים בהרכב, למרות microdomains שלהם עשויים להיות שונים בהתבסס על התפקוד המסוים של הצינור (למשל, תעלת excretory canaliculi לעומת microvilli מעיים ב Caenorhabditis elegans; ראה המלווה נייר על tubulogenesis מעיים C. elegans )3. עקרונות להן קרום מקוטב tubulogenesis נשמרים בין metazoans, מכונות מולקולרי דומה ומכוונת אותם1,2,4.

מערכת excretory C. elegans מורכב של חמישה תאים: תא excretory (EC), צינור תא (DC), הנקבוביות התא (PC) ואת שני תאים בלוטת. אבלציה של EC, DC או PC גורמת להצטברות נוזלים לתוך חלל הגוף ולמות חיות את הפרפרים והעשים מוקדם5. מסקרן, אלה שלושה צינורות חד־תאיות ליצור שלהם לומן בשלוש דרכים שונות: על ידי תא הולו (EC); תא גלישת בשילוב עם היווצרות צומת autocellular (PC); על-ידי גלישת תא ביחד עם autofusion (DC); מנגנונים שונים של לומן מורפוגנזה כי הם phylogenetically שנשמרת6,כל7. EC, הממוקם בצד הלטראלי השמאלי של הנורה בלוע האחורי, שולח שתי הרחבות לרוחב אשר התעלות ארבע להתרחב להאריך anteriorly, posteriorly (בצד שני מימין ומשמאל) קצה האף של התולעת וזנב , בהתאמה (איור 1)5,6,8. EC נמשך כ 1 מיקרומטר 2 x 1,000 מיקרומטר, שהופך אותו התא הגדול ביותר החיה. ברמה subcellular, התעלה excretory הוא צינור פשוטה, המופקים קרום הבסיס מכוונים את pseudocoelom, ואת חפר על ידי קרום lumenal (endotube). קרום lumenal תעלת מתחבר צינור קרום lumenal בצומת רק המערכת שלה; התעלות הן אחרת junctionless לאורך שלהם אורכי (איור 1). קרום lumenal תעלת excretory שלד התא שלו submembraneous הם הפסגה, שהוגדרו על-ידי ההרכב המולקולרי שלהם, הדומה ההרכב של קרום הפסגה, שלד התא submembraneous צינוריות multicellular, כגון המעי, ושל אחרים (למשל, שטוח) epithelia. Organelles cytoplasmic, כולל endosomal vesicular, אחרים (למשל, גולג’י) endomembranes מופצים לאורך התעלה. בנוסף, שלפוחית canalicular מרובים – מחובר ממברנה lumenal, ו/או מחוברים או מבודד – מושחלים דרך תעלת הציטופלסמה7,8,9,10 . חיבור פלזמה-ממברנה/canalicular דינמי זה עוד יותר מרחיבה את מערכת קרום של התעלה ותורם בשני לומן מורפוגנזה ו- osmoregulation10. התעלה excretory וכך מורכב כמעט כולו אנדו – ממברנות פלזמה, מתן מודל מצוין עבור הניתוח של קרום מקוטב להן ועל ויסות אנדו-ממשק קרום פלזמה. הרחבה דרמטית של קרום הפסגה במהלך מורפוגנזה תעלת – במערכת זו תא בודד חופפת לומן סיומת – גם מאפשרת לנתח את הבעיות אדריכלי הנובעים על ידי צורך לייצב ובאמצע של הממברנה lumenal תאיים . פרוטוקול זה מתמקדת על הניתוח של מורפוגנזה מבנית של התעלה צינור של לומן, את הדינמיקה ממברנה תאיים הדרושים עבור תהליך זה, ולא על האותות לכוון את התנועות תאים המייצרים בעמדה של EC מערכת excretory ולבנות אתהקשרים מורכב מאלמנטים אחרים התאית (נבדקה ב6).

יתרון נוסף של המערכת תעלה תא בודד C. elegans לניתוח של קרום מקוטב, לומן תאיים להן הוא היכולת להפריד, בזמן התפתחותית, הדור של מרכיבים שונים של ממברנות שלה לעיקולים ומעברים. הנציבות האירופית נולד בזמן הסגר הגחון לבין מתיישב ventro-רוחבית של הלוע במהלך אמצע מופרה5,6,8, שבמהלכן זמן לרוחב התעלה והסיומת מסעף לבצע. זה ואחריו תעלת הקדמי-אחוריים סיומת במהלך מופרה מאוחר, תהליך הנמשך אל תוך L1-הזחל (איור 1). זחל בימיו, הקצה האחורי התעלה מגיע בערך באמצע של התולעת, מלא לכיוון הזנב בסוף השלב L1, לאחר זמן תעלת מאריך יחד עם תולעת8. תעלת פעיל הצמיחה במהירות העולה על זה של הצמיחה של החיה ובכך מסתיימת בשלב הזחל הראשון, עם זאת, בהמשך צמיחה מתרחשת במקביל עם הצמיחה של כל החיות הזחל נוספים (L2 – 4). הגדרה זו מספקת את ההזדמנות כדי לנתח שלבים שונים של דה נובו מקוטב להן קרום עצמאית של חלוקת התא מקוטב או העברה. יתר על כן, הוא מאפשר את ההפרדה של תהליך זה מההרכבה של צמתי (אשר מתרחשים העובר לפני תחילתן לומן); דרישה המדויק שלהם בתוך הממברנה קיטוב הוא עדיין שאלה פתוחה בשטח קוטביות. בסופו של דבר, זה ייחודי מפריד הפסגה של התרחבות קרום הבסיס, התהליך האחרון שלפני לשעבר תעלות excretory10. המודל תעלת excretory C. elegans ולכן הוא מהווה השלמה אינפורמטיבי במיוחד למודל מעיים משתף מספר יתרונות אלה לניתוח של קרום מקוטב להן אך מבוצע זה באווירה multicellular (ראה העיתון הנלווה על מעיים tubulogenesis3).

למרות פראי-סוג תעלות בקוריאנית ודק במיוחד בתולעת קטנה זו, לומן שלהם יכול להיות השישיsualized ישירות על-ידי Nomarski אופטיים בחיה שקוף. למעשה, ניתן לאפיין מורפולוגיות תעלת פיברוזיס המוטציות בבעלי ללא תווית באמצעות הגדלה נמוכה לנתח מיקרוסקופ, אשר שימש אפקט נהדר במסכים גנטי קדימה כדי לזהות גנים המעורבים tubulogenesis11. ויזואליזציה משופרת של המורפולוגיה של תעלות, ההבחנה של הקרומים מקוטב שלהם, רכיבי cytoskeletal, organelles תאיים שונים ומבנים אחרים subcellular, עם זאת, דורש תיוג, גבוה יותר כוח פלורסנט ויבתר ו קונאפוקלית מיקרוסקופ. למרות המבנה הדק של התעלות מציב מספר קשיים על תיוג, מיקרוסקופ, ממברנות ורכיבים subcellular ניתן להבחין דרך ייחודית כל תא מולקולות ספציפיות, בעלי חיים יכול להיות בבטחה מותקן עבור מיקרוסקופ אם זהירות מסויימים נלקחים כדי למנוע החדרת חפצים (ראה פרוטוקול של דיון). תיוג יכול להיעשות אימונוהיסטוכימיה בדגימות קבוע, או על ידי יצירת תולעים הטרנסגניים המבטאים חלבונים פיוז’ן פלורסנט תחת השליטה של משלהם או excretory היזמים תעלת ספציפי עבור הדמיה ויוו . פרוטוקול זה מתאר את שיטת תיוג האחרון (ראה את העיתון הנלווה tubulogenesis מעיים עבור נוגדן מכתים3).

היכולת לשלב ויוו הפסד או רווח-של-פונקציה לימודים עם ויוו הדמיה האנליזה התא הבודד רמה לאורך כל גורם פיתוח התעלה excretory C. elegans מודל חזק במיוחד מולקולרית ו ניתוח הסלולר של חד־תאיות tubulogenesis. קדימה או אחורה מסכי גנטי יכול להתבצע החל חיה הטרנסגניים פראי-סוג או שכותרתו לזהות תעלת מורפוגנזה פנוטיפים (למשל, ציסטות) פגמים הגן הבסיסי שלהם. לחלופין, מסכי כזה ניתן להתחיל עם הפנוטיפ המוטנטי (למשל, תעלה פיברוזיס), לזהות מדכאי או משפרי של פנוטיפ זה לזיהוי גנים המקיימים אינטראקציה פונקציונלית עם הגן הגורם של פנוטיפ מוטציה. הפגם הגנטי גורם של פנוטיפ מוטציה יכולה לגרום לאובדן (למשל, via -ג’ין מחיקה) או רווח (למשל, באמצעות מוטציה הפעלת או דרך המבוא של ג’ין עודף עותקים) של הפונקציה ובדוקים. מוטגנזה מכוונת קדימה או מסכי RNAi שיטתית ללא דעות קדומות על תפקוד הגן, מאפשרות זיהוי גנים המעורבים בפונקציה של עניין לא משוחדת. לאור זמינותו של ברמת הגנום RNAi האכלה ספריות, כמעט בכל גן יכול להיות בקלות הפיל ידי RNAi ב- C. elegans, כך גנטית יחיד בכל עניין או כל קבוצה של גנים (למשל, במסכים יישוב) יכול גם להיות במהירות ובחן על השפעתם בגישה הפוכה גנטיקה. להפגין שילוב אפשרי של גישות, כאן נתאר מסך יישוב אינטראקציה RNAi, החל מוטנט רווח-של-הפונקציה לתעלה excretory פיברוזיס, המסומנת חלבון פלואורסצנטי ירוק cytoplasmic התעלה (GFP). פנוטיפ מוטציה נוצר על ידי ביטוי של אמ-1, שנשמרת מאוד C. elegans ortholog של משפחת מקשר ממברנה-אקטין אזרין-Radixin-Moesin (ERM), אשר היה מעורב מורפוגנזה לומן, ממברנה ארגון מינים רבים12. C. elegans ERM-1. רגישה לממברנות lumenal של איברים פנימיים, כגון excretory תעלת המעי, ו נדרש עבור לומן היווצרות שני13. ביטוי ERM-1 מגייס אקטין עודף ושלפוחיות על קרום תעלת lumenal, הגדלת השטף לתוך לומן, הפקת תעלה פיברוזיס קצר ואת קרום lumenal הכיווץ אקטין מעובה פרווה9. הפרוטוקול מתאר כיצד ליצור זנים הטרנסגניים עם excretory הביע תעלת שכותרתו פיוז’ן חלבונים (או חלבונים אחרים); כיצד לבצע יישוב מסכי RNAi החל זנים כאלה, כדי לזהות מודיפיקטורי הפנוטיפ התעלה; ואיך לנתח את התוצאות של מסכים כאלה באופן חזותי באמצעות מיקרוסקופ ויבתר ו קונאפוקלית פלורסצנטיות, כולל דרכים פשוטות כדי לכמת פנוטיפים tubulogenesis אינפורמטיבי. ניתן למצוא חלופה תיוג הפרטים של RNAi, התרגלו הגנים tubulogenesis לעתים מזומנות קטלנית, וטכניקות בעיתון הנלווה על מעיים tubulogenesis3. כל השיטות יכול לשמש בשילובים שונים עבור החקירה של שאלות נוספות על תעלת tubulogenesis.

Protocol

1. תיוג התעלה Excretory C. elegans מאת חלבונים פיוז’ן פלורסנט 14 הערה: לראות את הנייר הנלווה על מעיים tubulogenesis 3 סימון על-ידי בחיי עיר נוגדן מכתים הליכים ומצוידת התעלה excretory. ראו טבלה 1 לדוגמאות של מולקולות הוכח שימושית ליצירת אפקטים של C. eleg…

Representative Results

פרוטוקול זה מתאר כיצד להשתמש התעלות excretory C. elegans חזותי, מולקולרי לניתוח tubulogenesis חד־תאיות ו לומן תאיים מורפוגנזה בתא יחיד. במהלך השלוחה שלהם מימי אמצע מופרה לבגרות, התעלות excretory ארבע ממשיכים להרחיב שלהם basolateral וממברנות הפסגה/lumenal יחד עם שלהם canalicular endosomal endomembrane מערכת, מת…

Discussion

רב-תכליתיות גנטי של C. elegans , שקיפות, תוכנית פשוטה גוף וכל השושלת הקבועה תא שרד מודל מצוין עבור הניתוח של מורפוגנזה פרוטוקול זה מתאר כיצד לשלב מניפולציות גנטיות סטנדרטי הדמיה מחקרים כדי לנצל 2 מיקרון דק C. elegans תעלות excretory ללמוד ממברנה מקוטב ו לומן תאיים להן בשפופרת תא בודד.

<p class="jove…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים Buechner מ’ (אוניברסיטת קנזס, קנזס, ארצות הברית), Nehrke ק (מרכז רפואי אוניברסיטת רוצ’סטר, רוצ’סטר, ניו יורק, ארה ב), ומרכז Caenorhabditis גנטיקה, הממומן על ידי מכוני הבריאות הלאומיים, משרד התשתיות מחקר תוכניות (P40 OD010440). עבודה זו נתמכה על ידי מענקים NIH GM078653, 224570 הוא MGH, SAA 223809 כדי כלל

Materials

Cloning
Plasmid pPD95.75 Addgene Cat. No. 37464
PCR Kit Qiagen Cat. No. 27106
Ligation kit New England Biolabs Cat. No. E2611L
DNA marker Thermo Scientific Cat. No. SM1331
Agarose DNA grade Fisher Scientific Cat. No. BP164-100
Competent cells New England Biolabs Cat. No. C2987H
Tris Fisher Scientific Cat. No. BP154-1
EDTA Sigma Cat. No. ED-1KG
Acetic acid Fisher Scientific Cat. No. A38S-500
Ethidium bromide Fisher Scientific Cat. No. BP1302-10
Equipments
PCR machine  MJ Research Cat. No. PTG-200 
Centrifuge Eppendorf  Cat. No. 5415C
Water Bath Precision Scientific  Cat. No. 666A3 
Gel running instrument Fisher Scientific Cat. No. 09-528-165
Gel running power supply Fisher Scientific Cat. No. 45-000-465
Molecular Imager Gel Doc XR System Bio-Rad Cat. No. 1708195EDU
Nanodrop Spectrophotometer Thermo Scientific Cat. No. ND1000
C. elegans related1 1see reference27 for standard C. elegans culture and maintenance procedures.
LB Medium and plates2 2see reference24 for protocols.
Tryptone  Acros Organics Cat. no. 611845000
Yeast Extract BD Biosciences Cat. no. 212750
NaCl Sigma Cat. no. S7653
Bacto Agar  BD Biosciences Cat. no. 214040
Ampicillin Sigma Cat. no. A0116
Tetracycline Fisher Scientific Cat. no. BP912
M9 Medium2 2see reference24 for protocols.
NaCl Sigma Cat. no. S7653
KH2PO4 Sigma Cat. no. P0662
Na2HPO4 Sigma Cat. no. S7907
MgSO4 Sigma Cat. no. M2773
NGM plates 2 2see reference24 for protocols.
NaCl Sigma Cat. no. S7653
Peptone  BD Biosciences Cat. no. 211677
Tryptone  Acros Organics Cat. no. 611845000
Bacto Agar  BD Biosciences Cat. no. 214040
MgSO4 Sigma Cat. no. M2773
CaCl2 Sigma Cat. no. C3881
Cholesterol  Sigma Cat. no. C8667
K2HPO4  Sigma Cat. no. P3786
KH2PO4 Sigma Cat. no. P0662
RNAi plates3 3see reference60 for protocols.
NaCl Sigma Cat. no. S7653
Peptone  BD Biosciences Cat. no. 211677
Tryptone  Acros Organics Cat. no. 611845000
Bacto Agar  BD Biosciences Cat. no. 214040
MgSO4 Sigma Cat. no. M2773
CaCl2 Sigma Cat. no. C3881
Cholesterol  Sigma Cat. no. C8667
K2HPO4  Sigma Cat. no. P3786
KH2PO4 Sigma Cat. no. P0662
IPTG  US Biological Cat. no. I8500
Carbenicillin Fisher Scientific Cat. no. BP2648
NaOH Fisher Scientific Cat. no. SS266-1
Sodium hypochlorite Fisher Scientific Cat. no. 50371500
Bacteria
OP50 bacteria CGC
HT115 bacteria CGC
Genome-wide RNAi libraries
Ahringer genome-wide RNAi feeding library (ref29,49) Source BioScience
C. elegans ORF-RNAi feeding library (ref50) Source BioScience
Imaging related
Lidocaine MP Biomedicals,LLG Cat. no. 193917
Materials
Vacuum Grease Silicone Beckman Cat. no. 335148
Microscope slides  Fisher Scientific Cat. no. 4448
Microscope coverslips (22×22-1) Fisher Scientific Cat. no. 12-542-B
Tissue culture plate, 6 well  Corning Inc. Cat. no. 08-772-33
Equipment
SMZ-U dissecting microscope (Nikon)
SZX12 dissecting microscope (Olympus), equipped with a high-power stereo fluorescence attachment (Kramer Scientific), CCD camera with Q capture software and X-Cite fluorescent lamp (Photonic Solutions).
TCS SL Laser-scanning confocal microscope (Leica Microsystem)
C2 laser-scanning confocal mounted on an ECLIPSE Ti-E inverted microscope (Nikon)

References

  1. Lubarsky, B., Krasnow, M. A. Tube morphogenesis: making and shaping biological tubes. Cell. 112 (1), (2003).
  2. Sundaram, M. V., Cohen, J. D. Time to make the doughnuts: Building and shaping seamless tubes. Semin. Cell Dev. Biol. S1084-9521, 30130-30136 (2016).
  3. Zhang, N. The C. elegans intestine as a model for intercellular lumen morphogenesis and in vivo polarized membrane biogenesis at the single-cell level. JoVE. , (2017).
  4. Andrew, D. J., Ewald, A. J. Morphogenesis of epithelial tubes: Insights into tube formation, elongation, and elongation. Dev. Biol. 341 (1), 34-55 (2010).
  5. Nelson, F. K., Albert, P. S., Riddle, D. L. Fine structure of the Caenorhabditis elegans secretory-excretory system. J. Ultrastruct. Res. 82 (2), 156-171 (1983).
  6. Sundaram, M. V., Buechner, M. The Caenorhabditis elegans Excretory System: A Model for Tubulogenesis, Cell Fate Specification, and Plasticity. Genetics. 203 (1), 35 (2016).
  7. Altun, Z. F., Hall, D. H. Excretory system. WormAtlas. , (2009).
  8. Buechner, M. Tubes and the single C. elegans excretory cell. Trends Cell Biol. 12 (10), 479-484 (2002).
  9. Khan, L. A. Intracellular lumen extension requires ERM-1-dependent apical membrane expansion and AQP-8-mediated flux. Nat. Cell Biol. 15 (2), 143-156 (2013).
  10. Kolotuev, I., Hyenne, V., Schwab, Y., Rodriguez, D., Labouesse, M. A pathway for unicellular tube extension depending on the lymphatic vessel determinant Prox1 and on osmoregulation. Nat. Cell Biol. 15 (2), 157-168 (2013).
  11. Buechner, M., Hall, D. H., Bhatt, H., Hedgecock, E. M. Cystic canal mutants in Caenorhabditis elegans are defective in the apical membrane domain of the renal (excretory) cell. Dev. Biol. 214 (1), 227-241 (1999).
  12. Fehon, R. G., McClatchey, A. I., Bretscher, A. Organizing the cell cortex: the role of ERM proteins. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 11 (4), 276-287 (2010).
  13. Gobel, V., Barrett, P. L., Hall, D. H., Fleming, J. T. Lumen morphogenesis in C. elegans requires the membrane-cytoskeleton linker erm-1. Dev. Cell. 6 (6), 865-873 (2004).
  14. Sambrook, J., Sambrook, J., DW, R. u. s. s. e. l. l. . Molecular cloning: a laboratory manual. , (2006).
  15. Fire, A., Harrison, S. W., Dixon, D. A modular set of lacZ fusion vectors for studying gene expression in Caenorhabditis elegans. Gene. 93 (2), 189-198 (1990).
  16. Kamath, R. S., Ahringer, J. Genome-wide RNAi screening in Caenorhabditis elegans. Methods. 30 (4), 313-321 (2003).
  17. Timmons, L., Court, D. L., Fire, A. Ingestion of bacterially expressed dsRNAs can produce specific and potent genetic interference in Caenorhabditis elegans. Gene. 263 (1-2), 103-112 (2001).
  18. Pawley, J. B. . Handbook of Biological Confocal Microscopy. , (2006).
  19. Hibbs, A. R. . Confocal Microscopy for Biologists. , (2004).
  20. Bankhead, P. . Analyzing fluorescence microscopy images with ImageJ. , (2014).
  21. Praitis, V., Casey, E., Collar, D., Austin, J. Creation of low-copy integrated transgenic lines in Caenorhabditis elegans. Genetics. 157 (3), 1217-1226 (2001).
  22. Frøkjaer-Jensen, C. Single-copy insertion of transgenes in Caenorhabditis elegans. Nat. Genet. 40 (11), 1375-1383 (2008).
  23. Mello, C. C., Kramer, J. M., Stinchcomb, D., Ambros, V. Efficient gene transfer in C. elegans: extrachromosomal maintenance and integration of transforming sequences. EMBO J. 10 (12), 3959-3970 (1991).
  24. Barrangou, R. Cas9 Targeting and the CRISPR Revolution. Science. 344 (6185), 707-708 (2014).
  25. Dickinson, D. J., Goldstein, B. CRISPR-Based Methods for Caenorhabditis elegans Genome Engineering. Genetics. 202 (3), 885-901 (2016).
  26. Esposito, D., Garvey, L. A., Chakiath, C. S. Gateway cloning for protein expression. Methods Mol. Biol. 498, 31-54 (2009).
  27. Gibson, D. G. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nat. Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  28. Hobert, O. PCR fusion-based approach to create reporter gene constructs for expression analysis in transgenic C. elegans. Biotechniques. 32 (4), 728-730 (2002).
  29. Jorgensen, E. M., Mango, S. E. The art and design of genetic screens: caenorhabditis elegans. Nat. Rev. Genet. 3 (5), 356-369 (2002).
  30. Berry, K. L., Bulow, H. E., Hall, D. H., Hobert, O. A. C. elegans CLIC-like protein required for intracellular tube formation and maintenance. Science. 302 (5653), 2134-2137 (2003).
  31. Mattingly, B. C., Buechner, M. The FGD homologue EXC-5 regulates apical trafficking in C. elegans tubules. Dev. Biol. 359 (1), 59-72 (2011).
  32. Shaye, D. D., Greenwald, I. The disease-associated formin INF2/EXC-6 organizes lumen and cell outgrowth during tubulogenesis by regulating F-actin and microtubule cytoskeletons. Dev. Cell. 32 (6), 743-755 (2015).
  33. Lant, B. CCM-3/STRIPAK promotes seamless tube extension through endocytic recycling. Nat. Commun. 6 (6), 6449 (2015).
  34. Paupard, M. C., Miller, A., Grant, B., Hirsh, D., Hall, D. H. Immuno-EM localization of GFP-tagged yolk proteins in C. elegans using microwave fixation. J. Histochem. Cytochem. 49 (8), 949-956 (2001).
  35. Lukyanov, K. A., Chudakov, D. M., Lukyanov, S., Verkhusha, V. V. Photoactivatable fluorescent proteins. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 6 (11), 885-891 (2005).
  36. Bates, M., Huang, B., Dempsey, G. T., Zhuang, X. Multicolor super-resolution imaging with photo-switchable fluorescent probes. Science. 317 (5845), 1749-1753 (2007).
  37. Sherman, T. The abts and sulp families of anion transporters from Caenorhabditis elegans. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 289 (2), C341-C351 (2005).
  38. . Transgeneome website Available from: https://transgeneome.mpi-cbg.de/transgeneomics/index.html (2017)
  39. . National BioResource Project (NBRP)::C. elegans Available from: https://shigen.nig.ac.jp/c.elegans/ (2017)
  40. Heppert, J. K. Comparative assessment of fluorescent proteins for in vivo imaging in an animal model system. Mol. Biol. Cell. 27 (22), 3385-3394 (2016).
  41. Shaner, N. C., Steinbach, P. A., Tsien, R. Y. A guide to choosing fluorescent proteins. Nat Methods. 2 (12), 905-909 (2005).
  42. . BLAST Available from: https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi (2017)
  43. Kamath, R. S., Martinezcampos, M., Zipperlen, P., Fraser, A. G., Ahringer, J. Effectiveness of specific RNA-mediated interference through ingested double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Genome Biol. 2 (1), RESEARCH0002 (2001).
  44. Kamath, R. S. Systematic functional analysis of the Caenorhabditis elegans genome using RNAi. Nature. 421 (6920), 231-237 (2003).
  45. Rual, J. F. Toward improving Caenorhabditis elegans phenome mapping with an ORFeome-based RNAi library. Genome research. 14 (10B), 2162-2168 (2004).

Play Video

Cite This Article
Zhang, N., Membreno, E., Raj, S., Zhang, H., Khan, L. A., Gobel, V. The C. elegans Excretory Canal as a Model for Intracellular Lumen Morphogenesis and In Vivo Polarized Membrane Biogenesis in a Single Cell: labeling by GFP-fusions, RNAi Interaction Screen and Imaging. J. Vis. Exp. (128), e56101, doi:10.3791/56101 (2017).

View Video