Combinant la microscopie intravitale Fluorescent (IVFM) avec des modèles génétiques pour étudier la dynamique de la prise de greffe de cellules hématopoïétiques à des Niches de la moelle osseuse

La microscopie intravitale fluorescence multiphotonique (IVFM) est une puissante technique d’imagerie qui permet l’imagerie haute résolution, en temps réel de tissus avec la profondeur jusqu’à 1mm, selon le tissu. Lorsqu’elle est appliquée à la voûte crânienne de souris, il permet d’observer le comportement des cellules hématopoïétiques au sein de la BM de manière non invasive vers le haut à 60-100 μm¹¹. Cette approche est utilisée ici pour déterminer la cinétique de prise de greffe des progéniteurs myéloïdes normales dans les souris knock-out BM de RBPJ manque de signalisation canonique de Notch.

Des travaux récents de notre groupe a démontré cette signalisation Notch canonique défectueux dans le microenvironnement BM entraîne une maladie myéloproliférative semblable ๲. Perte de la signalisation Notch a été obtenu par suppression conditionnelle de la domaine obligatoire d’ADN de RBPJ, le facteur de transcription critique en aval de la protéine Notch canonique, de signalisation, à l’aide de Mx1-Cre induite par recombinaison¹⁰. Dans cette étude, on a utilisé le modèle de souris de^lox/lox de Mx1-Cre/RBPJ. Suppression conditionnelle du motif de liaison à l’ADN de RBPJ entraîne la perte de la signalisation de tous les récepteurs Notch. Dans le modèle de Mx1-Cre, Cre expression est entraînée par le promoteur de Mx1 activé par voie de c résultant dans l’induction de la délétion de gène ciblé en cellules de sang ainsi que dans composants stromales d’organes multiples, y compris les BM, rate et le foie.

MX1-Cre⁺/RBPJ^lox/lox et Mx1-Cre^–/RBPJ^lox/lox souris induite avec c (indiqué sur le connaissement comme RBPJKO et RBPJWT, respectivement) ont été mortellement irradiés et transplantées avec cellules hématopoïétiques normales, type sauvage. À partir de la semaine 4 après la transplantation, destinataires RBPJKO développé leucocytose importante suivie d’une splénomégalie. Bien que souris RBPJKO présenté augmentation du pourcentage des progéniteurs myéloïdes dans le BM en semaine 8 après la transplantation et à des moments plus tard, analyse de la BM aux semaines 4 et 6 n’ont pas révélé de différences marquantes dans leur contenu cellulaire myéloïde par rapport au contrôle RBPJWT bénéficiaires. Cette observation, combinée au fait que Mx1-Cre est exprimé dans les différents organes hématopoïétiques, a demandé si le microenvironnement de la BM avait un impact direct sur l’initiation du phénotype syndromes myéloprolifératif.

Pour déterminer si la BM a un site critique initial du développement de la maladie, IVFM de la voûte crânienne de souris a été utilisé en combinaison avec la BM transplantation (BMT), le modèle de knock out RBPJ et une lignée de système de suivi. Des souris transgéniques exprimant EGFP sous le contrôle du promoteur (Lys-GFP) lysozyme spécifique⁹ ont été utilisés pour obtenir des cellules du donneur qui pourraient être visualisés au cours de la BM d’imagerie après BMT. Expression de lysozyme est spécifique aux cellules myéloïdes et Lys-GFP marque cellules du progéniteur myéloïde commun (CMP) pour les granulocytes mature¹³.

IVFM de la BM à des moments différents a démontré que les cellules de Lys-GFP Hébergement de la même façon aux destinataires BM de RBPJWT et RBPJKO, mais développé et implanté plus rapidement chez les receveurs de BM de RBPJKO. Cette différence a été dramatique au point antérieur dans le temps (semaine 2) et diminuait avec le temps (semaines 4 et 6). Cependant, à ces moments plus tard, évaluation du compartiment hématopoïétique chez le receveur même a montré une augmentation constante du nombre de cellules myéloïdes circulant dans le PB et localisée dans la rate des souris RBPJKO, indiquant une augmentation de la production de cellules de la BM dans la circulation. Analyse de la localisation de cellules Lys-GFP dans le BM de souris transplantées à 6 semaines a révélé que les cellules myéloïdes résidaient plus éloigné de la vascularisation dans le microenvironnement de la RBPJKO que dans le contrôle.

Collectivement, la combinaison de IVFM avec ces modèles animaux spécifiques fournies aperçus dans la dynamique de la prise de greffe de cellules myéloïdes dans le microenvironnement RBPJKO BM. La conception expérimentale et l’approche quantitative décrit ici est proposé comme un paradigme qui peut être appliqué pour répondre à des questions similaires. Par exemple, l’utilisation d’une autre lignée de cellule spécifique suivi de modèles, tels que RAG1-GFP¹⁴ ou¹⁵ souris Gata1-GFP peut permettre à la suite du comportement de lymphoïdes ou progéniteurs érythroïdes, respectivement, à la BM.