We describe the fabrication and characterization of nano-biological systems interfacing nanostructured substrates with immobilized proteins and aptamers. The relevant experimental steps involving lithographic fabrication of nanostructured substrates, bio-functionalization, and surface-enhanced Raman spectroscopy (SERS) characterization, are reported. SERS detection of surface-immobilized proteins, and probing of protein-ligand and aptamer-ligand binding is demonstrated.
固定化生体分子と固体支持体上の金属ナノ構造をインターフェース共役ナノ生物学的システムの作製と特性評価が報告されている。関連する実験手順の全配列は、電子ビームリソグラフィー、基板上の生体分子の固定化、およびそれらの特徴付けを利用表面増強ラマン分光法(SERS)を使用して、ナノ構造の基材の製造を含む、記載されている。ナノ生物学的システムの三つの異なる設計は、プロテインA、グルコース結合タンパク質、およびドーパミン結合DNAアプタマーを含む、使用されている。後者の2つのケースでは、それぞれのリガンドの結合を、D-グルコースおよびドーパミンは、も含まれる。生体分子の3種類の異なる方法によってナノ構造の基板上に固定され、SERSイメージングの結果を報告する。 SERSの能力は、表面固定化されたタンパク質からの振動モードを検出するため、ならびにタンパク質 – リガンドのANをキャプチャするDアプタマー – リガンド結合が実証されている。結果はまた、表面ナノ構造の形状、生体分子固定化戦略、分子のラマン活性及び取得SERSスペクトルに結合するリガンドの存在または非存在の影響を示している。
固体ナノ構造と生体高分子をインタフェース共役ナノ生物学的システムを開発し、特性化する能力は、次世代のバイオセンシング、バイオ作動技術の1,2のさらなる進歩にますます重要になってきている。これは、適切な固体素子(マイクロまたはナノ電極、ナノエンジニアリングコーティング、ナノワイヤー、またはナノ粒子)2,3,4の製作などの研究分野、数にわたる学際的研究を伴う。希望するバイオコンジュゲート5,6,7を作成するには、表面上の生体分子の固定化。ナノ生物学のインターフェイス1を監視する。ほとんどの場合、最適な製造、生体機能化、および特徴付け方法の選択は、強く相互に関連している。明らかに、ナノファブリケーション技術の選択は、システムの固相構成要素の要件によって駆動される検出方法に大きく依存しているtuの中rnは関連するバイオポリマーの性質およびインターフェースを監視する目的で決定される。
バイオコンジュゲートシステム1,3、表面増強ラマン分光法(SERS)特徴付けるために適用される技術は、幅広い種類の外表面8,9,10,11上に化学的及び生物学的種を検出するための非常に有望な方法として出現した。 SERSは、分子振動に対応する固有の署名の捕捉を可能にする表面固定化生体分子( 図1)による単色光の非弾性散乱を利用する。ラベル、錯体化学、または時間のかかるステップを伴うことなく、異なる分子を区別するために、この機能は、SERSバイオ検出の可能性が非常に効率的な方法になります。 SERSの別の重要な利点は、その高い感度である。貴金属ナノ構造体(SERS基板)と相互作用する光による局在表面プラズモンの励起が劇的整数を増加ラマン単層からの単一分子制限8,9,10,11まで、分子が非常に少量の検出を可能にする、検体によって散乱ensity。最後に、ほとんどの生体分子は、水溶液は安定であることが必要です。水は、多くの場合、制限されたラマン活性を有するので、水性サンプルからのバックグラウンド信号9を最小限に抑えられる。 SERSのアプリケーションは、最後の十年間10以上の指数関数的な増加を示している。しかしながら、SERSの多くの議論の課題は、ラマン散乱の電磁増強は、プラズモン波が11,12,13に誘導される金属ナノ構造のサイズ、形状、及び間隔に決定的に依存することである。効率的かつ再現可能なSERS測定を達成するために、基板形状の制御は、ナノスケール寸法で必要とされる。
図1. Scは表面増強ラマン分光法のヘム。
SERS基板11,12,13を製造するために用いられる多くの方法は、大きくボトムアップおよびトップダウン方法に分類することができる。第一のタイプの方法は、自己組織化又はナノ構造を生成する指向性化学合成の様々なプロセスを採用する。多くの場合、例としては、固体支持体11,12,13、熱、スパッタ、または粗い金属膜11,12の電気化学堆積、および種々の化学合成法13に単分散ナノ粒子の固定化を含む宛て。このような技術は、比較的単純かつ安価である傾向があるが、それらのほとんどは、構造物の位置、および限定されたサンプル間の再現性の制御の欠如によってチャレンジする。
対照的に、トップダウン·リソグラフィ技術は、表面上に所望のパターンを作成するなどの粒子ビームとして操作可能な器具を使用する。最も頻繁に使用されるのひとつ固体支持体11,12上の異なる基板の設計を可能にするためにも、10 nmおよび以下柔軟性まで備えにわたってナノリソグラフィ法は、電子ビームリソグラフィ(EBL)は、優れた制御を提供する。 EBLは、電子のビームは、露光された領域において化学変化を引き起こす電子感応性材料(レジスト)の表面を横切って直径スキャン数ナノメートルのスポットまで焦点を当てた。ポジティブトーンポリメチルメタクリレート(PMMA)、適切な溶媒(現像液)に対する溶解性が増大につながる、レジストを構成するポリマー鎖の切断で電子ビーム露光の結果として抵抗する。電子ビームリソグラフィのプロセスは、基板上のレジストの均一な層のスピンコーティングを含む。電子ビームを真空チャンバ内のターゲットとレジスト材料の露光。可溶性領域を除去するためにサンプルの開発。
溶融シリカなどの金属ナノ構造の下に誘電体支持体は、bとがあるのeenは著しく、シリコン14,15のような他の材料に比べて、プラズモン波の局在によるSERSにおける強度を増加させることが示さ。しかしEBLパターニングは、誘電体基板上に、特にナノスケールで、露光中のビルドアップを充電するのに起因する重大な課題を伴う。以前、我々はこれらの困難は、レジスト上に導電性高分子層を配置することによって克服できること16,17を示している。 図2融合上の金属ナノ構造を生成するために金属蒸着及びリフトオフ続いEBL露光および現像を使用して、全体的な製造プロセスの概略図を示すシリカ担体。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
Eの図2.スキームlectronビームリソグラフィ、金属堆積、及び誘電体基板16〜19上に金属ナノ構造を作製するために用いるリフトオフ工程段階。この論文では、EBL、基質のバイオ機能化によるSERS基板の製造を含むプロセスステップのシーケンス全体を提示し、そしてラマンスペクトルのコレクション。我々の最近の研究18,19で検討つの設計は、(参照図3および図4、および表1)アドレス指定される。デザイン1において、組換えタンパク質Aは、溶融シリカ(FS)支持体18上の生体機能を有する金ナノ構造体上に固定化され、タンパク質のSERS検出を実証する。デザイン2では、リガンド(D-グルコース)の有無による組換えグルコース結合タンパク質21,26,27を Niで被覆されたFS上にAgナノ構造間の空間にヒスチジンタグにより、固定化され、タンパク質への糖の結合検出された。デザイン3では、ドーパミン結合DNをチオール化アプタマー19,23は、FS上のAuナノ構造体上に固定され、固定化されたアプタマーによってドーパミンの結合が実証される。 SERSの発展にSERSにより、ナノ生物学のインターフェイスを問い合わせる探査研究から、基板のラマンスペクトルの取得に準備し、固定化の異なる生体分子と戦略の代表から、関連するすべての実験工程を含めて、これらの例はさまざまなアプリケーションのために有用である認識方法として、結合タンパク質-またはアプタマーリガンドを利用する小分子のバイオセンサー。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
異なる生体分子を用いた3つの代表的なデザインの図3のスキーム、immobiliza方法ン、および基板材料:DI水中の11-メルカプトデカン酸(MUA)の自己組織化単分子膜(SAM)で官能化貴金属ナノドット上に固定化された(A)タンパク質A;貴金属ナノドット間の基板表面に固定化されたD-グルコースと複合体を形成し(B)、ヒスチジンタググルコース結合タンパク質(GBP)。貴金属ナノドットに固定化されたドーパミンで完了(C)チオール末端ドーパミン結合アプタマー(DBA)。 表1のさらに詳しい情報を見る。パネル(B)で示した設計2では、対応するリガンドを含まないサンプルも比較のために用意した。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
図4。3の設計に用いられる生体分子:(A)タンパク質A; (B)グルコース結合タンパク質およびD-グルコース。 (C)DNAアプタマーとドーパミンを結合ドーパミン。タンパク質立体構造(a)および(b)はそれぞれ、及びLINUXAMD64ためのVMDで描かプロテインデータバンク、PDB ID 1BDD 20と2HPH 21、バージョン1.9.1 22から取られる。 (c)において、アプタマーの二次構造はValFold 24ソフトウェアを用いて配列23から予測及びPseudoViewer 3.0 25で描かれている。それぞれの文字G、A、T、およびCグアニン、アデニン、チミン、およびシトシンヌクレオチドに対応し、。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
デザイン1 </TD> | デザイン2 | デザイン3 | |
バイオポリマー | プロテインA | グルコース結合タンパク質(GBP) | ドーパミン結合アプタマー(DBA) |
バインダー | 11-メルカプトウンデカン酸(MUA)自己組織化単分子膜(SAM) | ヒスチジンタグ | チオールリンカー |
リガンド | なし | D-グルコース | ドーパミン |
ソリューション | 脱イオン(DI)水 | リン酸カリウム緩衝液 | トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン(TRIS)及びエチレンジアミン四酢酸(EDTA)緩衝液;リン酸緩衝生理食塩水(PBS) |
基板 | FS上のAu構造 | ニッケルコーティングされたFS上のAgの構造 | FS上のAu構造 |
パターン化されたAREA | 4ミクロン×10ミクロン | 4ミクロン×8ミクロン | 4ミクロン×10ミクロン |
パターン | 金ドット、50nmのピッチ | 銀ドット、40 nmのピッチ | 金六角形、200nmのピッチ |
銀六角形、200nmのピッチ | Auの構造化されていないパッド | ||
Agの構造化されていないパッド | |||
EBL被ばく線量 | ドット: | ドット:105μC/ cm 2程度 | 六角形:180μC/ cm 2程度 |
アレイのI 120μC/ cm 2程度 | 六角形:170μC/ cm 2程度 | ||
配列II 96μC/ cm 2程度 | |||
配列III 72μC/ cm 2程度 | |||
レーザー励起波長 | 532 nmの | 532 nmの | 780 nmの |
表1.ナノ生物系の三つのデザインを。
SERSは、多くのユニークな利点を提供バイオ検出の非常に強力な手法として認知を得ている。極めて高感度の分析物9,10,11,35の非常に少量を検出することが可能となり、一方、分子振動との関係は、選択的にSERSスペクトルから特定 の検体の「フィンガープリント」を同定することが可能である。さらに、SERSは、水に比較的鈍感で非破壊的技術であり、それによって、それらの天然の水性環境9に生物学的物質を探索するために非常に適している。提示された結果は、これらの利点を強調ならびにさらなるバイオ検出の非常に柔軟なラベルフリー技術としてSERSの強力な可能性を示す。異なる基板固定生体分子の単層を用いた3の設計では、ラマンモードは、自信を持って、特定の分析物に起因する可能性があることが検出されている。 O、これらの生体分子の検出ことRそれぞれのリガンドは、SERS基板の支持体として溶融シリカの平坦な表面を採用することが実証されている、電子の表面に生物学的材料をインタフェース新興バイオ電子アーキテクチャとの関係で多数のアプリケーションを約束し、現在のエレクトロニクス、マイクロフルイディクスの設定を使用したデザインの互換性が高まりますそして電気化学デバイス2,3。重要なことには、2〜3の設計においてSERS検出を認識要素として、それぞれ、表面固定タンパク質およびアプタマーの単層を用いた、グルコースおよびドーパミンなどの小分子の特異的結合のために実証されている。
しかし、いくつかの側面は、「オンチップ」設定における効率的なSERSバイオ検出を達成するために、世話をする必要がある。まず、ほとんどの生体分子に共通でよく知られている課題は、ドライENVIのような非自然条件にさらされる場合は特に、分解するそれらの傾向である境や強烈なレーザー光。プロトコルを通じて、我々は常にラマンスペクトルの取得試料の調製から、全体の実験中に適切なソリューションに浸漬し、生体機能を有するサンプルを維持することの重要性を強調してきた。後者については、カスタム防水チャンバは、レーザー露光中の液体の蒸発を避けるために( 図7)が設計されている。プロトコールのステップ5.3に記載のように露光及びレーザ強度の持続時間はまた、サンプルの損傷を避けるために制限されるべきである。
SERS検出の結果は、使用基板、及び金属ナノ構造、特に、フィーチャー間の分離の形状に敏感で見出される。それは図8および図9から次のように、設計1の試料のSERS強度は、溶融シリカ上のAuナノドット間の隙間の幅に強く依存する。私はテストされたAuナノドットの3つの配列のうち、nは、この設計( 図8)は 、最も高いラマン強度は金フィーチャ間の狭い隙間を有し、したがって、より効率的な電磁場増強を提供する配列Iによって達成される。 図9に示すように、10〜20ナノメートル以下のレベルで、フィーチャー間の分離の制御が必要である。 SERS基板を製造するためのEBLを採用し、ここで示されたように、フィーチャー間のギャップの幅を制御するために特別に効率的な解像度を提供しています。ポジ型EBLとPMMAなどのレジストPMMAマスクの孔のサイズは、単に、露光量を変化させることによって変えることができる。リフトオフ後に、これは金属加工ドットの異なるサイズになり、適切なEBL露出18用量を選択することによって所望のようにドット間の隙間の幅を調整することができる。
他の課題は、特定の生物の検出アプリケーションのためのSERS基板の幾何学的形状の最適化である。増強効果のIもののフィーチャー間のギャップの減少にncreasesは、生体分子の比較的大きなサイズは、ギャップがいかに狭い上の制限を課す。これは、固定化方法は、タンパク質を効率的に( 図3B参照 )は、貴金属点の間の表面にではなく、ドット自体に結合するようなものである場合に、デザイン2の結果から明らかである。それは、図10から次のように、構造化されていない銀パッド用のSERSスペクトルは、分析物からのバンドを示していない。パッドは非常に薄いアイランド間のギャップと、ナノ結晶構造を示すが、これらのギャップは、タンパク質分子を収容するのには狭すぎる( 図6F参照 )。まだ複雑さの別の次元は、タンパク質 – リガンド結合を検出する必要があるときに添加される。 図10に、SERS CH帯域が仮にGBPのコンホメーションの変化によって説明することができるリガンドを含まないか1つに比べてリガンド結合GBPからのスペクトルにおいてより顕著である増加したラマン活性を有する、より剛性構造が得られる、D-グルコース2 7,27の結合に依存する。一つは2ナノ構造の基板を比較した場合、リガンド結合タンパク質からのタンパク質およびグルコースCHバンドの両方がナノ六角形でより顕著であるのに対し、リガンドを含まないタンパク質からのCHバンドは、ナノドットの基質を用いて得られたSERSスペクトルにおいて強いこと基板。二つの要因がこれらの違いをもたらすことが期待されて、Agの間のスペースの可用性は、GBPは、Niと結合することができる場合があります、そして「ホットスポット」のラマン散乱電磁増強へのリガンド結合およびリガンド遊離タンパク質の感受性これらの機能の間。一方では、ナノドットパターンは、Niコーティングは、Agナノドット基板上のグルコースを含まGBPについて観測より顕著CHバンドを説明する可能性がある、と結合するタンパク質のために利用可能である比較的大きな特徴間のエリアを提供しています。一方、それらの不均一なSTRUCによるトゥーレ( 図6Dを参照)、銀ナノ六角形は、ナノ六角形基板上のグルコース結合GBPから強いCH振動帯で生じたナノ六角形の中のAgの島の間の狭い隙間に強い電磁強化を表示するために生じる可能性があります。この相互作用のいくつかの項目は、さらなる検証が必要であり、そのようなポンドなどの大きなタンパク質が関与する複雑な分析物のためのSERS基板の最適化は、パイプラインのままです。
他の構成要素ではないのに対し、唯一のリガンドは、選択された領域内のラマン活性がある場合、明らかに、認識要素として固定化された生体分子を用いたリガンド結合のSERS検出が容易になる。これは、アプタマーに結合したドーパミンの顕著なSERSバンドが得られ、設計3( 図11)の場合である。アプタマードーパミンペアは、優れた特異性を示すとSERSスペクトルは、有意なバックグラウンドシグナルなしで顕著なバンドを含む。
<p class="jove_content">ラベル·手数料SERS技術の将来の進歩は、異なる表面ナノ構造の設計の広い範囲を持つ生体分子」のSERS信号増強の広範なテストを伴うだろう。サイズ、形状、およびここに提示試料調製プロトコルと組み合わせフィーチャー間の分離、制御の素晴らしいレベルの様々なナノ構造を製造する直接描画電子ビームリソグラフィの使用は、比較した結果の相互検証を容易にする異なる研究グループによる。 SERS基板は、メソッド11,12,13「ボトムアップ」の代替を採用して作製されたとき、これは広範な種類のに最適な基板設計の信頼性の高い識別に向かって金属ナノ構造のサイズと位置のよりよい制御を可能にする、再現性の主要な課題に対処するアプリケーション。これらの技術の拡張性は、続いて、ナノ相補ナノリソグラフィー法とEBLとを組み合わせることによって改善することができる調整可能なEBL技術を採用する最適化されたナノスケールのデザインの将来の量産に向けたインプリントリソグラフィ19。The authors have nothing to disclose.
The authors would like to thank: David Wishart, Valentyna Semenchenko, Mark McDermott, Michael Woodside, and Albert Cao for their help in developing and preparing the protein conjugates as well as the DNA aptamer; T. M. Fahim Amin, Mosa Sharmin Aktar, and Trevor Olsen for their assistance in the sample preparation, Jonathan Mane for his assistance in generating images of the molecular structures; and the funding sources including the National Research Council of Canada – National Institute for Nanotechnology (NRC-NINT), Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC), and the University of Alberta for supporting the work.
11-Mercaptoundecanoic acid (MUA) | Sigma Aldrich (www.sigmaalrich.com) |
450561 ALDRICH | Used for surface functionalization in Design 1 |
Conductive polymer | Mitsubishi Rayon (www.mrc.co.jp) |
aquaSAVE-57xs | A 70 nm thick layer is used as anti-charging coating for EBL exposures |
D-glucose | Collaborator Lab. | Ligand in Design 2 | |
Dopamine | Collaborator Lab. | Ligand in Design 3 | |
Dopamine binding aptamer (DBA) | Integrated DNA Technologies Inc. (www.idtdna.com) |
5'- /Thiol Modifier C6 S-S/ AAAAAAAAAA GTCTCTGTGT GCGCCAGAGA ACACTGGGGC AGATATGGGC CAGCACAGAA TGAGGCCC-3' | Biopolymer in Design 3 |
Fused silica wafers | Mark Optics www.markoptics.com |
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Glucose binding protein (GBP) | Collaborator Lab. (www.ncbi.nlm.nih.gov/protein/gi|145579532) |
PDB ID 2HPH | Biopolymer in Design 2 |
High vacuum grease | Dow Corning (www.dowcorning.com) |
Used to seal water-proof chamber, step 5.1 | |
Hydrogen Peroxide 30%, H2O2 | J.T. Baker | Used for pirahna solution, step 1.2 | |
N-ethyl-N'-(3-(dimethylamino) propyl) carbodiimide (EDC) | Sigma Aldrich www.sigmaaldrich.com |
03450 FLUKA | Used for immobilization of biopolymer in Design 1 |
N-Hydroxysuccinimide (NHS) | Sigma Aldrich (www.sigmaaldrich.com) |
130672 ALDRICH | Used for immobilization of biopolymer in Design 1 |
Potassium phosphate buffer | Collaborator Lab. | Buffer used in Raman sampling | |
Phosphate buffered | Collaborator Lab. | Solvent in Design 3 | |
saline (PBS) | |||
Polymethylmethacrylate (PMMA) 950 A2 | MicroChem (www.microchem.com) |
A 90 nm thick layer is used as EBL positive tone resist | |
Recombinant protein A | Protein Mods Inc (www.proteinmods.com) |
PDB ID 1BDD (www.rcsb.org/pdb/explore/explore.do?structureId=1bdd) |
Biopolymer in Design 1 |
Sulfuric acid 96%, H2SO4 | J.T. Baker | Used for pirahna solution, step 1.2 | |
Tris(hydroxymethyl)aminomethane (TRIS) and ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) buffer | Sigma Aldrich (www.sigmaaldrich.com) |
T9285 SIGMA | Buffer in Design 3 |
Dicing saw | Diamond Touch Technology Inc. | Used to cut FS wafer, step 1.1 | |
(17301 W Colfax Ave # 152, Golden, CO) | |||
Electron beam evaporator | Kurt J. Lesker (www.lesker.com) |
Used for Au and Ag evaporation | |
Electron beam evaporator | Johnsen Ultravac (JUV) (www.ultrahivac.com) |
JuV E-gun | Used for Ni evaporation |
Microscope cover slips (25 mm) | Fisher Scientific (www.fishersci.ca) |
12-545-102 | Used in water-proof chamber, step 5.1 |
Microscope slides (3×1 in.) | Fisher Scientific (www.fishersci.ca) |
Used in water-proof chamber, step 5.1 | |
Raith 150TWO EBL exposure system | Raith Inc. (www.raith.com) |
Raith 150TWO system | Used for EBL exposures, step 2.2 |
Raman microscope | Thermo Scientific (www.thermoscientific.com) |
Nicolet Almega XR | Used for Raman spectroscopy, step 5.3 |
Sonicator system | Branson (www.bransonic.com) |
Used for liftoff and solutions mixing | |
Spinner | Brewer Spinner and Hotplate (www.brewerscience.com) |
Cee 200X and Cee 1300X | Used to spin-coat PMMA and conductive polymer, step 2.1 |