1. Процедуры Мышь Анестезия Животные будут удалены из их клетки и помещают в анестезии дооперационном индукции камеры для газовой индукции на уровне 2% изофлуран и 100% кислорода при расходе 0,5 л в минуту (испаритель управлением). Мыши седативные в камере индукции анестезии, удаляются из камеры и вентральной живот бритая с электрическими ножницами, либо поддерживать в камере, если волос для удаления волос используется (1 мин). Хотя до сих пор под действием успокоительного, они подняты, глаза смазываются мазью стерильные офтальмологические и, затем помещали в спинной recumbancy на теплые воды, циркулирующей нагревательного устройства под общим наркозом с использованием носового конуса изофлуран и кислорода. На данный момент кислорода ставка снижается до 0,2 литров в минуту. Живот опрыскивают решение хлоргексидина (хлоргексидин диацетат быстро bacterialcidal и стойкие) и протирают стерильной марли в три раза или до места операции чист. 2. Мышь микро-хирургических и процедур восстановления Вентральной срединной линии разреза (2 см) производится с диафрагмой ножницами через кожу и брюшной стенки подвергая живот. Стерильного физиологического раствора пропитанной 2×2 в марлю используется для отражения кишечника в левой части животного. Мышь фиксатор ставится на место позволяет визуализации нижней полой вены (НПВ). На данный момент, изофлуран сводится к прежнем уровне в 2% и кислорода ставка остается на уровне 0,2 литров в минуту в течение оставшейся части хирургического вмешательства. Блант рассечение облегчается использованием стерильного тампона аппликатор и дополнительные тонкие half диафрагмы изогнутые щипцы ткани. Необходимо соблюдать осторожность при обращении мыши тканей они очень хрупкие. Все побочные IVC отраслей, от почечной вены подвздошной бифуркации, лигируют с 7-0 нереактивный швов проленовой. Вернуться ветви остался патент. В электролитических IVC модели (EIM), 25G нержавеющей стальной иглой, прикрепленной к серебряной проволоки, покрытой медью (KY-30-1-GRN, Electrospec, Дувр, штат Нью-Джерси) вставляется в подвергается хвостового IVC, (рис. 1) и расположены против передней стенки (анод). Другой провод имплантируется подкожно завершения схемы (катод). Ток 250 μAmps в течение 15 минут была применена, используя травы S48 квадратных стимулятор волновой и постоянный ток единицы (Grass Technologies, Astro-Med, Inc, West Warwick, RI). Постоянного тока приводит к образованию токсичных продуктов электролиза, разъедающие эндотелиальной поверхности IVC содействия тромбогенного окружающей среды и последующее образование тромбов. Через 15 минут, игла удаляется и ватным тампоном, проводится осторожно в контакте с областью, чтобы предотвратить кровотечение У животных, обман, иглы помещается в IVC, а затем удален, без применения тока. Лапаротомия Сайт закрыт в двухслойной моды. Наша лаборатория использует 5-0 Викрил, синтетические шовные, в непрерывный узор, чтобы закрыть брюшной стенки. Клей клей кожа используется для закрытия кожи. Есть никаких внешних швов для удаления. Мыши затем восстановился в отдельные клетки мыши, внимательно наблюдал после операции (45 минут до 2 часов) под лампу нагрева (мин расстояние 24 см от клетки), а затем вернулся к своему первоначальному единиц жилья. Обезболивающие и противовоспалительные средства могут быть использованы, если она не вмешивается в исследовании цели. Научное обоснование отказать обезболивающие препараты, ветеринарные и ICUCA одобрение не требуется. Наша лаборатория обнаружила, что бупренорфин ,0.05-0 0,1 мг / кг SQ является отличным пред-и послеоперационного обезболивающего для мышей. Кроме того, лидокаин в 4mg/kg (0,4 мл / кг 1% раствора) могут вводиться в разрез сайт, когда системные анальгетики может вносить путаницу в результаты эксперимента. Мы обычно не испытывают послеоперационные неблагоприятные эффекты, связанные с ТГВ. Тем не менее, неблагоприятные послеоперационные эффекты могут включать спонтанные анестезии смерть, хирургические потери крови, и частичный парез из-за нервов травмы. Животные, которые не спешат восстанавливать можно подавать нутрии гель или влажные чау размещены на полу клетки, чтобы содействовать возвращению животного. Животные с разорвать послеоперационных осложнений должно быть гуманно усыпляют. В назначенный момент времени, эвтаназия осуществляется гуманно в соответствии с рекомендациями, изложенными Американской Ветеринарной Медицинской Ассоциации Руководство об эвтаназии для грызунов. 3. Представитель Результаты EIM является моделью, которая образует тромб в присутствии непрерывным потоком крови. На следующих рисунках показаны параметры исследованных в этом романе модели. Рисунок 1 definesthe анатомической области, в которых 25G из нержавеющей сталииглой, прикрепленной к серебряной проволоки, покрытой медью (KY-30-1-GRN, Electrospec, Дувр, штат Нью-Джерси) вставляется. Заметьте, что лимфатический узел почти настоящим и помогает в качестве ориентира, чтобы найти хвостового IVC. Рисунок 2: Тромб веса через 2 дня после EIM в различных штаммов. Как и ожидалось, тромб вес был ниже в PAI-1 мышей нокаутом и больше в гиперкоагуляции Delta CT мышей (^ КТ). Рисунок 3: Растворимый Р-селектина, мейкером тромбоз глубоких вен, была измерена в разных штаммов. Низкие уровни были найдены в PAI-1 мышей нокаутом в то время как высокие уровни были обнаружены в дельте гиперкоагуляции мышей КТ. Рисунок 4 Зависимость между тромба вес и растворимого P-селектина был найден в различных штаммов. Следует отметить, что в группе, вызвавшего короткое тромба размер, растворимого Р-селектина обнаружен был самым низким (ИАП-1 KO мышей). В группе, создавший крупнейший тромба размер, растворимого Р-селектина обнаружен был самым высоким (гиперкоагуляции дельта КТ). Рисунок 5: Для того, чтобы продемонстрировать наличие кровотока, УЗИ проводилось на мышах проходит EIM. На рисунке 5 показано ультразвуковое осуществляется в мышь через 2 дня после EIM. Затем образец был урожай. Обратите внимание, что тромб форме предложить тромба в присутствии потока