Summary

Lipidomics og transcriptomics i neurologiske sygdomme

Published: March 18, 2022
doi:

Summary

Denne artikel præsenterer en modulær protokol for vævlipidomik og transkriptomik og plasmalipidomik i neurologiske sygdomsmusmodeller rettet mod lipider, der ligger til grund for inflammation og neuronal aktivitet, membranlipider, nedstrøms budbringere og mRNA-kodende enzymer / receptorer, der ligger til grund for lipidfunktionen. Prøveudtagnings-, prøvebehandlings-, ekstraktions- og kvantificeringsprocedurer er skitseret.

Abstract

Lipider tjener som den primære grænseflade til hjernefornærmelser eller stimuli, der fremmer neurologiske sygdomme og er et reservoir til syntese af lipider med forskellige signal- eller ligandfunktion, der kan understrege sygdommens begyndelse og progression. Lipider, der ofte ændrer sig på det præsymptomatiske niveau, er en ny kilde til lægemiddelmål og biomarkører. Mange neurologiske sygdomme udviser neuroinflammation, neurodegeneration og neuronal excitabilitet som fælles kendetegn, delvis moduleret af specifikke lipidsignalsystemer. Den indbyrdes afhængighed og indbyrdes sammenhæng mellem syntese af forskellige lipider tilskynder til en multilipid-, multienzym- og multireceptoranalyse for at udlede fællestræk og specificiteter i neurologiske sammenhænge og for at fremskynde optrævlingen af mekanistiske aspekter af sygdomsdebut og progression. At tilskrive lipidroller til forskellige hjerneområder fremmer bestemmelsen af lipidmolekylær fænotype og morfologi forbundet med en neurologisk sygdom.

Præsenteret her er en modulær protokol, der er egnet til analyse af membranlipider og nedstrøms lipidsignaler sammen med mRNA af enzymer og mediatorer, der ligger til grund for deres funktionalitet, ekstraheret fra diskrete hjerneområder, der er relevante for en bestemt neurologisk sygdom og / eller tilstand. For at sikre nøjagtig komparativ lipidomisk profilering blev arbejdsgangene og driftskriterierne optimeret og standardiseret til: i) hjerneprøveudtagning og dissektion af regioner af interesse, ii) co-ekstraktion af flere lipidsignaler og membranlipider, iii) dobbelt lipid / mRNA-ekstraktion, iv) kvantificering ved væskekromatografi multiple reaction monitoring (LC / MRM) og v) standard mRNA-profilering. Denne arbejdsgang er egnet til de lave vævsmængder, der opnås ved prøveudtagning af de funktionelt diskrete hjerneunderregioner (dvs. ved hjernestansning), hvilket forhindrer bias i multimolekylær analyse på grund af vævsheterogenitet og / eller dyrevariabilitet. For at afsløre perifere konsekvenser af neurologiske sygdomme og etablere translationelle molekylære udlæsninger af neurologiske sygdomstilstande forfølges og beskrives også prøveudtagning af perifere organer, behandling og deres efterfølgende lipidomiske analyse samt plasmalipidomik. Protokollen er demonstreret på en akut epilepsimusemodel.

Introduction

Nylige fremskridt inden for lipidernes funktion og deres rolle i begyndelsen og udviklingen af neurologiske sygdomme åbner nye forsknings- og udviklingssteder for nye terapeutiske mål og sygdomsmekanismeudredning1. Dokumenterede forskelle i lipidsammensætning i forskellige hjerneområder, understreget af moderne molekylære billeddannelsesteknikker såsom massespektrometribilleddannelse og avanceret massespektrometriprofilering, skifter paradigmet for lipidundersøgelse fra hele hjernen mod funktionelt adskilte og diskrete hjerneområder. Det faktum, at lipidsammensætningen varierer i forskellige hjerneområder, medfører ny konceptualisering af både membranlipidfølsomhed og nedstrøms lipidsignalering som reaktion på en hjernefornærmelse eller stimuli på tværs af de funktionelt forskellige hjerneområder. Derfor kræver lipidprotokoller nye udviklinger for at imødegå udfordringen med lave vævsmængder til detektion og kvantificering af højere rumlig opløsning og samtidig analyse af flere lipidkomponenter i cellemembraner og signalveje. Bestemmelse af enzymer, lipidligander og receptorer, der er involveret i reguleringen af deres niveauer og funktion, er også afgørende for at belyse de signalveje, der er berørt af en neurologisk sygdom, og guide nye mekanistiske undersøgelser i en patofysiologisk sammenhæng.

Ud over den øgede hjerne rumlige opløsning er der to store vanskeligheder, der udfordrer udviklingen af nye neurolipidomiske tilgange. For det første er lipidsignalmolekylerne typisk af meget lav overflod sammenlignet med membrankonstitutive lipider. For det andet udviser lipidomet en høj strukturel heterogenitet, vanskelig at dissekere ved hjælp af en enkelt analytisk tilgang. Derfor er ekstraktions- og analysemetoder skræddersyet til forskellige lipidkategorier og udføres almindeligvis i forskellige vævsprøver2. Shotgun lipidomiske metoder3 er fremragende værktøjer til hurtigt at afsløre en bred profil af membranlipider, mens øget følsomhed og selektivitet, der ydes af de målrettede opdagelses- og kvantificeringsmassespektrometriske metoder, udnyttes til undersøgelse af lavt rigelige signallipider, herunder: i) inflammatoriske lipider og ii) lipider involveret i modulering af neuronal aktivitet, såsom endocannabinoider (eCB’er), aminosyrebundne lipider, osv.4,5. For at omfatte lipidændringer på både cellemembranen og signalniveau, der forekommer i hjerneområder af neurologiske sygdomsmodeller, udføres typisk lipidekstraktion og analyse i forskellige vævsprøver, opnået fra forskellige dyrepartier eller fra forskellige halvkugler eller ved at dissekere en større vævsregion i flere stykker. Når mRNA-niveauer af enzymreceptorer også er af interesse, kræver deres undersøgelse typisk indkøb af en særskilt vævsprøve. For eksempel ville undersøgelsen af membranlipider, endogene cannabinoider og mRNA kræve tre forskellige vævsprøver (f.eks. To prøver til de to lipidekstraktionsmetoder – membranlipider og signallipider – og efterfølgende to lipidanalysemetoder – og en prøve til mRNA-analyse). Undersøgelse af inflammatoriske lipider og endogene cannabinoider kræver henholdsvis to forskellige vævsprøver, ekstraktionsmetoder og analysemetoder. Et andet eksempel er undersøgelsen af mRNA og af enhver lipidkategori i en hjernestans eller lasermikrodissektionsprøve, som derfor kræver, at to forskellige dyr indkøber to prøver pr. Hjerne (sub)region. Der forekommer ofte en betydelig grad af variabilitet og/eller ringe reproducerbarhed af resultaterne i sådanne tilfælde som følge af biologisk variabilitet og/eller vævsheterogenitet. Styret af disse praktiske begrænsninger ved multimolekylær analyse, der især forekommer ved høj rumlig opløsning i hjernen, blev der designet en tre-modul neurolipidomics-protokol, der omfattede: 1) coextraktion og co-analyse af LC / MRM af inflammatoriske lipider (f.eks. Eicosanoider (eIC’er)) og lipider involveret i modulering af neuronal aktivitet, såsom eCC’er2; 2) co-ekstraktion af phospholipider (PL’er) og eCC’er med efterfølgende multiscan LC/MRM og precursor/neutral loss scan analyse2; og 3) dobbelt ekstraktion af membran (phospho)lipider og eCB’er samt mRNA med efterfølgende LC/MRM- og qPCR- eller RNA-sekventeringsanalyse6. Afhængigt af det biologiske spørgsmål, der skal behandles i en neurologisk sygdom, og hjerneområdet af interesse kan en kombination af den første og den anden protokol eller den første og den tredje protokol anvendes på den samme vævsprøve for væv, der vejer omkring 4 mg. Den første og tredje protokol kan anvendes uafhængigt for væv omkring 2 mg. Den anden protokol kan anvendes til væv, der vejer så lidt som 0,5 mg. Uanset hvilket neurolipidomisk protokolmodul der vælges, er vævsprøveudtagning og præanalytisk behandling, hjerneisolering og regionsdissektion samt proceduren for ofring af dyremodellen standardiseret og identisk for alle tre moduler i protokollen. I vores undersøgelse af neurologiske sygdomme indsamles og analyseres perifere organer, der er relevante for sygdommens patologiske konsekvenser, altid også ved hjælp af disse modulære protokoller. Derudover udtages der regelmæssigt prøver af blod til plasmalipidomik for at tjene som et udlæsningsværktøj for neurologiske sygdomme med henblik på potentielle translationelle anvendelser. Den her præsenterede modulære lipidomics-protokol er meget alsidig: skalerbar til større vævsmængder og let anvendelig til stort set enhver vævstype og sygdom. Til anvendelse af den modulære protokol (Figur 1) i neurologiske sygdomme er enhver standardiseret gnavermodel for debut og progression af neurologiske lidelser, såsom traumatisk hjerneskade, Parkinsons sygdom, Alzheimers sygdom eller epilepsi, modtagelige.

Disse protokoller er blevet anvendt i vid udstrækning til at studere ændringer i vævlipidomet og/eller transkriptomet i den akutte fase af epilepsi i den kainsyre (KA)-inducerede musemodel af epilepsi2,7, en model, der i vid udstrækning anvendes i prækliniske undersøgelser på grund af ligheden med human temporal lobe epilepsi (TLE)8,9,10,11. Ved hjælp af disse protokoller blev det terapeutiske potentiale af lægemidler som Palmitoylethanolamid (PEA)12,13 vurderet i den samme musemodel af epilepsi. Undersøgelsen identificerede lipid- og mRNA-ændringer ved høj og lav rumlig opløsning i hjernen og periferien, på tidspunktet for maksimale akutte anfaldsintensiteter (ved 60 minutters postbeslaglæggelsesinduktion) og ved subkronisk og akut behandling med PEA på fire forskellige tidspunkter (20, 60, 120 og 180 minutter) efter KA-anfaldsinduktion, et tidsvindue, der dækker den akutte fase af epilepsi. Plasma, hjerner og perifere organer fra ubehandlede KA-injicerede mus, akutte og subkronisk ærtebehandlede mus samt køretøjs- og PEA-køretøjskontrolmus blev indsamlet på hvert tidspunkt12,13 og undersøgt med denne molekylære analyse. De molekylære data var korreleret med adfærdsmæssige fænotyper opnået ved anfaldsscoring såvel som med immunohistokemi-afledte data om neurodegenerative processer for at optrævle progressionen af den akutte epilepsifase og PEA’s potentiale til at lindre den.

Protocol

Alle forsøgsprocedurer, der er beskrevet her, er i overensstemmelse med Det Europæiske Fællesskabs rådsdirektiv af 22. september 2010 (2010/63EU) og blev godkendt af den lokale dyrekomité i delstaten Rheinland-Pfalz, Tyskland (filreference: 23 177-07/G16-1-075). 1. Dyremodel af akut og profylaktisk behandlet KA-induceret epilepsi Udfør anfaldsinduktion, behandling og adfærdsmæssig scoring. Adskil mus (minimum n = 6 mus pr. gruppe) i enkeltbure. Der fremstil…

Representative Results

Sættet af beskrevne protokoller kan kombineres på forskellige niveauer på en målspecifik måde, f.eks. valg af dyremodel, prøveudtagningsvej, ekstraktionsmetode og profilering (figur 1). For at bestemme lipidniveauændringer i hjernen og periferien over et tidsforløb af en akut epileptisk anfaldstilstand og for at opklare den potentielle antiepileptiske virkning13 af PE…

Discussion

Den neurolipidomiske og transkriptomiske metode, der er beskrevet her, er et levedygtigt middel til at undersøge enhver sygdom eller sund udvikling ved høj og lav rumlig opløsning i hjernen og perifere organer. På grund af de optimerede plasmaprøveudtagnings- og håndteringsprocedurer kan plasmalipidomisk analyse også udføres fra de samme dyr, der ofres for vævlipidomik og transkriptomik, hvilket forbedrer pålideligheden af vævsblodmolekylære korrelater og biomarkøropdagelse. Tilvejebringelsen af et bredt dat…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi dedikerer denne artikel til Dr. Ermelinda Lomazzo. Under færdiggørelsen af dette manuskript døde Dr. Ermelinda Lomazzo. Hun er legemliggørelsen af lidenskab for videnskab og uselvisk engagement i teamwork for at opfylde et meningsfuldt forskningsformål. Hun har altid drømt om at bidrage meningsfuldt til menneskers større trivsel. Hendes godhjertede natur blev aldrig kompromitteret af videnskabens og livets anstrengende veje. Hun vil forblive uvurderlig og for evigt i vores hjerter.

Julia M. Post blev finansieret af Focus Program for Translational Neuroscience (FTN) ved University Medical Center ved Johannes Gutenberg University Mainz og er i øjeblikket finansieret af SPP-2225 EXIT-projektet til LB. Raissa Lerner blev delvist finansieret af DZHK-projekt 81X2600250 til LB og Lipidomics Core Facility. Delvis finansiering til disse undersøgelser blev ydet af Lipidomics Core Facility, Institut for Fysiologisk Kemi og Intramurale midler (til LB) fra University Medical Center ved Johannes Gutenberg University Mainz.

Materials

12(S)-HETE Biomol Cay10007248-25 Lipid Std
12(S)-HETE-d8 Biomol Cay334570-25 Lipid Std
1200 series LC System Agilent Instrumentation/LCMS
2100 Bioanalyzer Agilent Instrumentation/qPCR
5(S)-HETE-d8 Biomol Cay 334230 Lipid Std
ABI 7300 Real-Time PCR cycler Applied Biosystems Instrumentation/qPCR
Acetonitrile LC-MS Chroma Solv Honeywell 9814920 Solvent/LCMS
amber eppendorf tubes Eppendorf Sample Prep.
Analyst 1.6.2 Software AB SCIEX, Darmstadt Software
Analytical balance Mettler Toledo Instrumentation/Sample prep.
Arachidonic Acid-d8 MS Standard Biomol Cay-10007277 Lipid Std
Bessmann Tissue Pulverizer Spectrum Laboratories, Inc. (Breda, Netherlands) Instrumentation/Sample prep.
Bino Zeiss Microscopy
cleaved Caspase 3 antibody Cellsignaling 9661S Microscopy
Cryostat, Leica CM3050 S Leica Biosystems Instrumentation/Sample prep.
CTC HTC PAL autosampler CTC Analytics AG Instrumentation/LCMS
Dumont Curved Forceps Dumoxel #7 FST 11271-30 Surgical Tools
Dumont Forceps Super fine tip #5SF (x2) FST 11252-00 Surgical Tools
EDTA 1000 A Röhrchen Kabe Labortechnik 078001 Sample Prep.
EP-1 EconoPump BioRAD 700BR07757 Instrumentation/Sample prep.
Fine Forceps Mirror Finish FST 11412-11 Surgical Tools
Fine Iris Scissors straight sharp FST 14094-11 Surgical Tools
Fine Scissor Tungsten Carbide straight FST 14568-09 Surgical Tools
Iris Spatulae FST 10094-13 Surgical Tools
Kainic acid Abcam ab120100 Epileptic drug
Lipid View software AB SCIEX, Darmstadt Software
LPC 17:0 Avanis Polaris 855676P Lipid Std
LPC 18:0 Avanis Polaris 855775P Lipid Std
Luna 2,5µm C18(2)- HAST 100A LC column Phenomenex 00D-4446-B0 Instrumentation/LCMS
Magnifying lamp Maul GmbH Instrumentation/Sample prep.
Methanol LC-MS Chroma Solv 99.9% Honeywell 9814920 Solvent/LCMS
Motic Camara Motic Microscopy
MTBE Honeywell 34875-1L Solvent/LCMS
MultiQuant 3.0 quantitation software package AB SCIEX, Darmstadt Software
NanoDrop 2000c Spectrophotometer Thermo Scientific Instrumentation/qPCR
PA 16:0-18:1 Avanis Polaris 840857P Lipid Std
PA 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1404 Lipid Std
Palmitoyl Ethanolamide Biomol Cay90350-100 Lipid Std
Palmitoyl Ethanolamide-d5 Biomol Cay9000573-5 Lipid Std
PC 16:0-18:1 Avanis Polaris 850457P Lipid Std
PC 16:0-18:1 Avanis Polaris 850457P Lipid Std
PC 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1004 Lipid Std
PE 16:0-18:1 Avanis Polaris 850757P Lipid Std
PE 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1104 Lipid Std
PG 16:0-18:1 Avanis Polaris 840457P Lipid Std
PG 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1204 Lipid Std
PI 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1504 Lipid Std
Precelleys 24 Peqlab Instrumentation/Sample prep.
Precellys Keramik-Kügelchen Peqlab 91-pcs-ck14p Sample Prep.
Precellys Stahlkugeln 2,8mm Peqlab 91-PCS-MK28P Sample Prep.
Precellys-keramik-kit 1,4 mm VWR 91-PCS-CK14 Sample Prep.
Prostaglandin D2 Biomol Cay 12010 Lipid Std
Prostaglandin D2-d4 Biomol Cay 312010 Lipid Std
Prostaglandin E2 Biomol Cay10007211-1 Lipid Std
Prostaglandin E2-d9 Biomol Cay10581-50 Lipid Std
PS 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1304 Lipid Std
Q Trap 5500 triple-quadrupole linear ion trap MS AB SCIEX AU111609004 Instrumentation/LCMS
Real Time PCR System Appliert Biosystem Instrumentation/qPCR
Resolvin D1 Biomol Cay10012554-11 Lipid Std
Rneasy Mini Kit – RNAase-Free DNase Set (50) Qiagen 79254 Sample Prep.
Security Guard precolumn Phenomenex Instrumentation/LCMS
Shandon coverplates Thermo Fisher 72110017 Microscopy
Shandon slide rack and lid Thermo Fisher 73310017 Microscopy
SM 18:0 Avanis Polaris 860586P Lipid Std
SM d18:1/12:0 Avanis Polaris LM-2312 Lipid Std
Standard Forceps straight Smooth FST 11016-17 Surgical Tools
Surgical Scissor ToughCut Standard Pattern FST 14130-17 Surgical Tools
T3000 Thermocycler Biometra Instrumentation/qPCR
Thromboxane B2 Biomol Cay19030-5 Lipid Std
Thromboxane B2-d4 Biomol Cay319030-25 Lipid Std
Tissue Lyser II Qiagen/ Retsch 12120240804 Instrumentation/Sample prep.
Tissue Tek Sakura Finetek 4583 Microscopy
Toluidinblau Roth 0300.2 Microscopy
Vapotherm Barkey 4004734 Instrumentation/Sample prep.
Wasser LC-MS Chroma Solv VWR 9814920 Solvent/LCMS

Referências

  1. Aronica, E., et al. Neuroinflammatory targets and treatments for epilepsy validated in experimental models. Epilepsia. 58, 27-38 (2017).
  2. Lerner, R., Post, J., Loch, S., Lutz, B., Bindila, L. Targeting brain and peripheral plasticity of the lipidome in acute kainic acid-induced epileptic seizures in mice via quantitative mass spectrometry. Biochimica et Biophysica Acta – Molecular and Cell Biology of Lipids. 1862 (2), 255-267 (2017).
  3. Schuhmann, K., Almeida, R., Baumert, M., Herzog, R., Bornstein, S. R., Shevchenko, A. Shotgun lipidomics on a LTQ Orbitrap mass spectrometer by successive switching between acquisition polarity modes. Journal of Mass Spectrometry. 47 (1), 96-104 (2012).
  4. Puppolo, M., Varma, D., Jansen, S. A. A review of analytical methods for eicosanoids in brain tissue. Journal of Chromatography B: Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 964, 50-64 (2014).
  5. Blewett, A. J., Varma, D., Gilles, T., Libonati, J. R., Jansen, S. A. Development and validation of a high-performance liquid chromatography-electrospray mass spectrometry method for the simultaneous determination of 23 eicosanoids. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 46 (4), 653-662 (2008).
  6. Lerner, R., et al. Simultaneous lipidomic and transcriptomic profiling in mouse brain punches of acute epileptic seizure model compared to controls. Journal of Lipid Research. 59, 283-297 (2017).
  7. Lerner, R., et al. Simultaneous lipidomic and transcriptomic profiling in mouse brain punches of acute epileptic seizure model compared to controls. Journal of Lipid Research. , 1-48 (2018).
  8. Lévesque, M., Avoli, M., Bernard, C. Animal models of temporal lobe epilepsy following systemic chemoconvulsant administration. Journal of Neuroscience Methods. 260, (2016).
  9. Eyo, U. B., Murugan, M., Wu, L. J. Microglia-Neuron Communication in Epilepsy. Glia. 65 (1), 5-18 (2017).
  10. Zhu, J., Zheng, X. Y., Zhang, H. L., Luo, Q. Kainic acid-induced neurodegenerative model: Potentials and limitations. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 457079 (2011).
  11. Park, S. H., Sim, Y. B., Kim, C. H., Lee, J. K., Lee, J. H., Suh, H. W. Role of α-CGRP in the regulation of neurotoxic responses induced by kainic acid in mice. Peptides. 44, 158-162 (2013).
  12. Lerner, R., Cuadrado, D. P., Post, J. M., Lutz, B., Bindila, L. Broad lipidomic and transcriptional changes of prophylactic PEA administration in control mice. Frontiers in Neuroscience. 13, 527 (2019).
  13. Post, J. M., et al. Antiepileptogenic Effect of Subchronic Palmitoylethanolamide Treatment in a Mouse Model of Acute Epilepsy. Frontiers in Molecular Neuroscience. 11, (2018).
  14. Schauwecker, P. E., Steward, O. Genetic determinants of susceptibility to excitotoxic cell death: Implications for gene targeting approaches. Proceedings of the National Academy of Sciences. 94 (8), 4103-4108 (2002).
  15. Monory, K., et al. The Endocannabinoid System Controls Key Epileptogenic Circuits in the Hippocampus. Neuron. 51 (4), 455-466 (2006).
  16. Konsman, J. P. The mouse Brain in Stereotaxic Coordinates. Psychoneuroendocrinology. 28 (6), (2003).
  17. Spijker, S., Li, K. W. Dissection of Rondent Brain Regions. Neuroproteomics. 57, 13-27 (2011).
  18. Gross, R. W. The evolution of lipidomics through space and time. Biochimica et Biophysica Acta – Molecular and Cell Biology of Lipids. 1862 (8), 731-739 (2017).
  19. Wang, M., Wang, C., Han, R. H., Han, X. Novel advances in shotgun lipidomics for biology and medicine. Progress in Lipid Research. 61, 83-108 (2016).
  20. Abbott, S. K., et al. An improved high-throughput lipid extraction method for the analysis of human brain lipids. Lipids. 48 (3), 307-318 (2013).
  21. Matyash, V., Liebisch, G., Kurzchalia, T. V., Shevchenko, A., Schwudke, D. Lipid extraction by methyl-tert-butyl ether for high-throughput lipidomics. Journal of Lipid Research. 49 (5), 1137-1146 (2008).

Play Video

Citar este artigo
Post, J. M., Lerner, R., Schwitter, C., Lutz, B., Lomazzo, E., Bindila, L. Lipidomics and Transcriptomics in Neurological Diseases. J. Vis. Exp. (181), e59423, doi:10.3791/59423 (2022).

View Video