Summary

神经系统疾病中的脂质组学和转录组学

Published: March 18, 2022
doi:

Summary

本文提出了一种模块化方案,用于神经系统疾病小鼠模型中的组织脂质组学和转录组学以及血浆脂质组学,靶向炎症和神经元活性下的脂质,膜脂质,下游信使以及脂质功能下的mRNA编码酶/受体。概述了采样,样品处理,提取和定量程序。

Abstract

脂质是大脑损伤或刺激的主要接口,有利于神经系统疾病,是合成具有各种信号或配体功能的脂质的储存库,可以强调疾病的发作和进展。脂质通常在症状前水平发生变化,是药物靶标和生物标志物的新兴来源。许多神经系统疾病表现出神经炎症,神经变性和神经元兴奋性作为共同的标志,部分由特定的脂质信号系统调节。各种脂质合成的相互依赖性和相互关系促使进行多脂,多酶和多受体分析,以推导出神经学背景的共性和特异性,并加速疾病发作和进展的机制方面的解体。将脂质作用归因于不同的大脑区域,可以促进与神经系统疾病相关的脂质分子表型和形态的测定。

这里介绍的是一个模块化方案,适用于分析膜脂质和下游脂质信号以及酶和介体的mRNA,这些酶和介质的基础是其功能,从与特定神经系统疾病和/或病症相关的离散大脑区域中提取。为确保准确的比较脂质组学分析,工作流程和操作标准进行了优化和标准化,以实现:i)脑采样和感兴趣区域的解剖,ii)多种脂质信号和膜脂质的共同提取,iii)双重脂质/mRNA提取,iv)通过液相色谱多重反应监测(LC / MRM)定量,以及v)标准mRNA分析。该工作流程适用于通过对功能离散的大脑子区域(即通过脑打孔)进行采样而获得的低组织量,从而防止由于组织异质性和/或动物变异性而导致的多分子分析中的偏差。为了揭示神经系统疾病的外周后果并建立神经系统疾病状态的翻译分子读数,还进行了周围器官采样,处理及其随后的脂质组学分析以及血浆脂质组学。该协议在急性癫痫小鼠模型上得到验证。

Introduction

脂质功能及其在神经系统疾病发病和进展中的作用的最新进展为新治疗靶点和疾病机制的阐明开辟了新的研究和开发场所1。现代分子成像技术(如质谱成像和高级质谱分析)强调了不同大脑区域脂质组成的记录差异,将脂质研究的范式从整个大脑转向功能上不同和离散的大脑区域。脂质组成在不同大脑区域变化的事实促使人们对膜脂质敏感性和下游脂质信号传导的新概念化,以响应功能上不同的大脑区域的脑损伤或刺激。因此,脂质方案需要新的发展来解决低组织量的挑战,以进行更高的空间分辨率检测和定量,同时分析细胞膜和信号通路的多种脂质成分。此外,测定参与调节其水平和功能的酶、脂质配体和受体对于阐明神经系统疾病中受影响的信号通路和指导病理生理学背景下的新机制研究至关重要。

除了增加的大脑空间分辨率外,还有两个主要困难挑战着新的神经脂质组学方法的发展。首先,与膜构成性脂质相比,脂质信号分子的丰度通常非常低。其次,脂质组表现出很高的结构异质性,难以使用单一的分析方法进行解剖。因此,提取和分析方法针对不同的脂质类别量身定制,通常在不同的组织样品中进行2.霰弹枪脂质组学方法3 是快速揭示膜脂质的广泛特征的极好工具,而靶向发现和定量质谱方法提供的增强灵敏度和选择性被用于研究低丰度信号脂质,包括:i)炎症脂质和ii)参与调节神经元活性的脂质,如内源性大麻素(eCBs),氨基酸连接脂质, 等。4,5.为了涵盖神经系统疾病模型的大脑区域中发生的细胞膜和信号传导水平的脂质变化,通常脂质提取和分析在不同的组织样品中进行,从不同的动物批次或不同的半球获得,或者通过将较大的组织区域解剖成多个部分。当酶受体的mRNA水平也令人感兴趣时,他们的研究通常需要采购不同的组织样本。例如,膜脂质、内源性大麻素和mRNA的研究将需要三种不同的组织样品(例如,两种脂质提取方法的两个样品 – 膜脂质和信号脂质 – 以及随后的两种脂质分析方法 – 以及一种用于mRNA分析的样品)。炎症性脂质和内源性大麻素的研究需要两种不同的组织样本,分别是提取方法和分析方法。另一个例子是脑冲床或激光显微切割样品中mRNA和任何脂质类别的研究,因此需要两个不同的动物在每个大脑(子)区域采购两个样品。在这种情况下,由于生物变异性和/或组织异质性,结果的可变性和/或可重复性差经常发生。在多分子分析的这些实际局限性的指导下,特别是在大脑中的高空间分辨率下,设计了一个三模块神经脂质组学方案,包括:1)通过LC / MRM共吸和共分析炎症脂质(例如,类二十烷酸(eiCs))和参与调节神经元活性的脂质,例如eCBs2;2)磷脂(PLs)和eCB的共萃取,随后进行多重扫描LC / MRM和前体/中性损失扫描分析2;3)膜(磷酸)脂质和eCBs以及mRNA的双重提取,随后进行LC / MRM和qPCR或RNA测序分析6.根据神经系统疾病中要解决的生物学问题和感兴趣的大脑区域,第一和第二方案的组合,或第一和第三方案的组合,可以应用于重量约为4mg的组织的同一组织标本。第一和第三方案可以独立应用于2mg左右的组织。第二种方案可应用于重量低至0.5mg的组织。无论选择哪种神经脂质组方案模块,组织采样和预分析处理、脑分离和区域解剖以及牺牲动物模型的程序对于方案的所有三个模块都是标准化和相同的。在我们对神经系统疾病的调查中,与疾病的病理后果相关的外周器官也总是使用这些模块化方案进行收集和分析。此外,定期对血液进行血浆脂质组学采样,以作为神经系统疾病的读数工具,以期进行前瞻性的转化应用。这里提出的模块化脂质组学方案非常通用:可扩展到更大的组织量,并且易于适用于几乎任何组织类型和疾病。用于模块化协议(图 1在神经系统疾病中,任何神经系统疾病(如创伤性脑损伤,帕金森病,阿尔茨海默病或癫痫)的发病和进展的标准化啮齿动物模型都是可以接受的。

这些方案已被广泛用于研究凯尼克酸(KA)诱导的癫痫小鼠模型中癫痫急性期组织脂质组和/或转录组的变化27,由于与人类颞叶癫痫(TLE)相似该模型广泛用于临床前研究8,91011。使用这些方案,在同一个癫痫小鼠模型中评估了棕榈酰乙醇酰胺(PEA)1213等药物的治疗潜力。该研究确定了大脑和外周,在最大急性癫痫发作强度的时间点(在癫痫发作后60分钟诱导时)以及在KA癫痫发作诱导后的四个不同时间点(20,60,120和180分钟)用PEA进行亚慢性和急性治疗时,脂质和mRNA在高空间分辨率和低空间分辨率下的变化,这是一个覆盖癫痫急性期的时间窗口。在每个时间点收集未经处理的KA注射小鼠,急性和亚慢性PEA处理小鼠以及载体和PEA载体对照小鼠的血浆,大脑和外周器官1213,并通过该分子分析进行研究。分子数据与通过癫痫发作评分获得的行为表型以及神经退行过程的免疫组织化学衍生数据相关,以揭示急性癫痫期的进展和PEA缓解它的潜力。

Protocol

此处描述的所有实验程序均符合2010年9月22日欧洲共同体理事会指令(2010/63EU),并已获得德国莱茵兰 – 普法尔茨州当地动物委员会的批准(文件参考:23 177-07 / G16-1-075)。 1. 急性和预防性治疗KA诱导癫痫的动物模型 进行癫痫发作诱导、治疗和行为评分。 将小鼠(每组最少n = 6只小鼠)分开在单个笼子中。 制备诱导癫痫发作注射液和相应的载体(见 <stron…

Representative Results

所描述的方案集可以以特定目的的方式在不同水平上组合,例如动物模型的选择,采样途径,提取和剖析方法(图1)。 为了确定急性癫痫发作状态一段时间内大脑和外周的脂质水平变化,并揭示PEA的潜在抗癫痫作用13 及其对脑和外周脂质组变化的影响,对3个实验动物组进行了载体治疗…

Discussion

这里描述的神经脂质组学和转录组学方法是一种可行的方法,用于研究大脑和外周器官中以高和低空间分辨率的任何疾病或健康发育。由于优化了血浆采样和处理程序,血浆脂质组学分析也可以从相同的动物处死进行组织脂质组学和转录组学,从而提高组织血液分子相关性和生物标志物发现的可靠性。通过应用三种方案中的任何一种或其组合来提供广泛的数据集,不仅对于在上下文中(动物模型?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们将本文献给Ermelinda Lomazzo博士。在手稿定稿期间,Ermelinda Lomazzo博士去世了。她是对科学的热情和无私参与团队合作的化身,以实现有意义的研究目的。她一直梦想着为人类的福祉做出有意义的贡献。她善良的天性从未受到科学和生活艰难道路的影响。她将永远无价地留在我们心中。

Julia M. Post由约翰内斯·古腾堡大学美因茨大学医学中心的转化神经科学焦点计划(FTN)资助,目前由SPP-2225 EXIT项目资助给LB.Raissa Lerner由DZHK项目81X2600250资助给LB和脂质组学核心设施。这些研究的部分资金由脂质组学核心设施,生理化学研究所和约翰内斯古腾堡大学美因茨大学医学中心的校内资金(LB)提供。

Materials

12(S)-HETE Biomol Cay10007248-25 Lipid Std
12(S)-HETE-d8 Biomol Cay334570-25 Lipid Std
1200 series LC System Agilent Instrumentation/LCMS
2100 Bioanalyzer Agilent Instrumentation/qPCR
5(S)-HETE-d8 Biomol Cay 334230 Lipid Std
ABI 7300 Real-Time PCR cycler Applied Biosystems Instrumentation/qPCR
Acetonitrile LC-MS Chroma Solv Honeywell 9814920 Solvent/LCMS
amber eppendorf tubes Eppendorf Sample Prep.
Analyst 1.6.2 Software AB SCIEX, Darmstadt Software
Analytical balance Mettler Toledo Instrumentation/Sample prep.
Arachidonic Acid-d8 MS Standard Biomol Cay-10007277 Lipid Std
Bessmann Tissue Pulverizer Spectrum Laboratories, Inc. (Breda, Netherlands) Instrumentation/Sample prep.
Bino Zeiss Microscopy
cleaved Caspase 3 antibody Cellsignaling 9661S Microscopy
Cryostat, Leica CM3050 S Leica Biosystems Instrumentation/Sample prep.
CTC HTC PAL autosampler CTC Analytics AG Instrumentation/LCMS
Dumont Curved Forceps Dumoxel #7 FST 11271-30 Surgical Tools
Dumont Forceps Super fine tip #5SF (x2) FST 11252-00 Surgical Tools
EDTA 1000 A Röhrchen Kabe Labortechnik 078001 Sample Prep.
EP-1 EconoPump BioRAD 700BR07757 Instrumentation/Sample prep.
Fine Forceps Mirror Finish FST 11412-11 Surgical Tools
Fine Iris Scissors straight sharp FST 14094-11 Surgical Tools
Fine Scissor Tungsten Carbide straight FST 14568-09 Surgical Tools
Iris Spatulae FST 10094-13 Surgical Tools
Kainic acid Abcam ab120100 Epileptic drug
Lipid View software AB SCIEX, Darmstadt Software
LPC 17:0 Avanis Polaris 855676P Lipid Std
LPC 18:0 Avanis Polaris 855775P Lipid Std
Luna 2,5µm C18(2)- HAST 100A LC column Phenomenex 00D-4446-B0 Instrumentation/LCMS
Magnifying lamp Maul GmbH Instrumentation/Sample prep.
Methanol LC-MS Chroma Solv 99.9% Honeywell 9814920 Solvent/LCMS
Motic Camara Motic Microscopy
MTBE Honeywell 34875-1L Solvent/LCMS
MultiQuant 3.0 quantitation software package AB SCIEX, Darmstadt Software
NanoDrop 2000c Spectrophotometer Thermo Scientific Instrumentation/qPCR
PA 16:0-18:1 Avanis Polaris 840857P Lipid Std
PA 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1404 Lipid Std
Palmitoyl Ethanolamide Biomol Cay90350-100 Lipid Std
Palmitoyl Ethanolamide-d5 Biomol Cay9000573-5 Lipid Std
PC 16:0-18:1 Avanis Polaris 850457P Lipid Std
PC 16:0-18:1 Avanis Polaris 850457P Lipid Std
PC 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1004 Lipid Std
PE 16:0-18:1 Avanis Polaris 850757P Lipid Std
PE 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1104 Lipid Std
PG 16:0-18:1 Avanis Polaris 840457P Lipid Std
PG 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1204 Lipid Std
PI 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1504 Lipid Std
Precelleys 24 Peqlab Instrumentation/Sample prep.
Precellys Keramik-Kügelchen Peqlab 91-pcs-ck14p Sample Prep.
Precellys Stahlkugeln 2,8mm Peqlab 91-PCS-MK28P Sample Prep.
Precellys-keramik-kit 1,4 mm VWR 91-PCS-CK14 Sample Prep.
Prostaglandin D2 Biomol Cay 12010 Lipid Std
Prostaglandin D2-d4 Biomol Cay 312010 Lipid Std
Prostaglandin E2 Biomol Cay10007211-1 Lipid Std
Prostaglandin E2-d9 Biomol Cay10581-50 Lipid Std
PS 17:0-14:1 Avanis Polaris LM-1304 Lipid Std
Q Trap 5500 triple-quadrupole linear ion trap MS AB SCIEX AU111609004 Instrumentation/LCMS
Real Time PCR System Appliert Biosystem Instrumentation/qPCR
Resolvin D1 Biomol Cay10012554-11 Lipid Std
Rneasy Mini Kit – RNAase-Free DNase Set (50) Qiagen 79254 Sample Prep.
Security Guard precolumn Phenomenex Instrumentation/LCMS
Shandon coverplates Thermo Fisher 72110017 Microscopy
Shandon slide rack and lid Thermo Fisher 73310017 Microscopy
SM 18:0 Avanis Polaris 860586P Lipid Std
SM d18:1/12:0 Avanis Polaris LM-2312 Lipid Std
Standard Forceps straight Smooth FST 11016-17 Surgical Tools
Surgical Scissor ToughCut Standard Pattern FST 14130-17 Surgical Tools
T3000 Thermocycler Biometra Instrumentation/qPCR
Thromboxane B2 Biomol Cay19030-5 Lipid Std
Thromboxane B2-d4 Biomol Cay319030-25 Lipid Std
Tissue Lyser II Qiagen/ Retsch 12120240804 Instrumentation/Sample prep.
Tissue Tek Sakura Finetek 4583 Microscopy
Toluidinblau Roth 0300.2 Microscopy
Vapotherm Barkey 4004734 Instrumentation/Sample prep.
Wasser LC-MS Chroma Solv VWR 9814920 Solvent/LCMS

Referências

  1. Aronica, E., et al. Neuroinflammatory targets and treatments for epilepsy validated in experimental models. Epilepsia. 58, 27-38 (2017).
  2. Lerner, R., Post, J., Loch, S., Lutz, B., Bindila, L. Targeting brain and peripheral plasticity of the lipidome in acute kainic acid-induced epileptic seizures in mice via quantitative mass spectrometry. Biochimica et Biophysica Acta – Molecular and Cell Biology of Lipids. 1862 (2), 255-267 (2017).
  3. Schuhmann, K., Almeida, R., Baumert, M., Herzog, R., Bornstein, S. R., Shevchenko, A. Shotgun lipidomics on a LTQ Orbitrap mass spectrometer by successive switching between acquisition polarity modes. Journal of Mass Spectrometry. 47 (1), 96-104 (2012).
  4. Puppolo, M., Varma, D., Jansen, S. A. A review of analytical methods for eicosanoids in brain tissue. Journal of Chromatography B: Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 964, 50-64 (2014).
  5. Blewett, A. J., Varma, D., Gilles, T., Libonati, J. R., Jansen, S. A. Development and validation of a high-performance liquid chromatography-electrospray mass spectrometry method for the simultaneous determination of 23 eicosanoids. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 46 (4), 653-662 (2008).
  6. Lerner, R., et al. Simultaneous lipidomic and transcriptomic profiling in mouse brain punches of acute epileptic seizure model compared to controls. Journal of Lipid Research. 59, 283-297 (2017).
  7. Lerner, R., et al. Simultaneous lipidomic and transcriptomic profiling in mouse brain punches of acute epileptic seizure model compared to controls. Journal of Lipid Research. , 1-48 (2018).
  8. Lévesque, M., Avoli, M., Bernard, C. Animal models of temporal lobe epilepsy following systemic chemoconvulsant administration. Journal of Neuroscience Methods. 260, (2016).
  9. Eyo, U. B., Murugan, M., Wu, L. J. Microglia-Neuron Communication in Epilepsy. Glia. 65 (1), 5-18 (2017).
  10. Zhu, J., Zheng, X. Y., Zhang, H. L., Luo, Q. Kainic acid-induced neurodegenerative model: Potentials and limitations. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 457079 (2011).
  11. Park, S. H., Sim, Y. B., Kim, C. H., Lee, J. K., Lee, J. H., Suh, H. W. Role of α-CGRP in the regulation of neurotoxic responses induced by kainic acid in mice. Peptides. 44, 158-162 (2013).
  12. Lerner, R., Cuadrado, D. P., Post, J. M., Lutz, B., Bindila, L. Broad lipidomic and transcriptional changes of prophylactic PEA administration in control mice. Frontiers in Neuroscience. 13, 527 (2019).
  13. Post, J. M., et al. Antiepileptogenic Effect of Subchronic Palmitoylethanolamide Treatment in a Mouse Model of Acute Epilepsy. Frontiers in Molecular Neuroscience. 11, (2018).
  14. Schauwecker, P. E., Steward, O. Genetic determinants of susceptibility to excitotoxic cell death: Implications for gene targeting approaches. Proceedings of the National Academy of Sciences. 94 (8), 4103-4108 (2002).
  15. Monory, K., et al. The Endocannabinoid System Controls Key Epileptogenic Circuits in the Hippocampus. Neuron. 51 (4), 455-466 (2006).
  16. Konsman, J. P. The mouse Brain in Stereotaxic Coordinates. Psychoneuroendocrinology. 28 (6), (2003).
  17. Spijker, S., Li, K. W. Dissection of Rondent Brain Regions. Neuroproteomics. 57, 13-27 (2011).
  18. Gross, R. W. The evolution of lipidomics through space and time. Biochimica et Biophysica Acta – Molecular and Cell Biology of Lipids. 1862 (8), 731-739 (2017).
  19. Wang, M., Wang, C., Han, R. H., Han, X. Novel advances in shotgun lipidomics for biology and medicine. Progress in Lipid Research. 61, 83-108 (2016).
  20. Abbott, S. K., et al. An improved high-throughput lipid extraction method for the analysis of human brain lipids. Lipids. 48 (3), 307-318 (2013).
  21. Matyash, V., Liebisch, G., Kurzchalia, T. V., Shevchenko, A., Schwudke, D. Lipid extraction by methyl-tert-butyl ether for high-throughput lipidomics. Journal of Lipid Research. 49 (5), 1137-1146 (2008).

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Citar este artigo
Post, J. M., Lerner, R., Schwitter, C., Lutz, B., Lomazzo, E., Bindila, L. Lipidomics and Transcriptomics in Neurological Diseases. J. Vis. Exp. (181), e59423, doi:10.3791/59423 (2022).

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