Här presenterar vi en enkel metod för direkt observation och automatiserad mätning av klyvöppningarnas svar på bakterieinvasion i Arabidopsis thaliana. Denna metod utnyttjar en bärbar klyvöppning tillsammans med en bildanalyspipeline som är utformad för bladbilder som tas av enheten.
Klyvöppningar är mikroskopiska porer som finns i växtens bladepidermis. Reglering av klyvöppningar är avgörande inte bara för att balansera koldioxidupptaget för fotosyntes och transpirrationell vattenförlust utan också för att begränsa bakterieinvasionen. Medan växter stänger klyvöppningar vid igenkänning av mikrober, patogena bakterier, såsom Pseudomonas syringae pv. tomat DC3000 (PTO), öppna de stängda klyvöppningarna igen för att komma åt bladets inre. I konventionella analyser för att bedöma klyvöppningarnas svar på bakterieinvasion flyter bladepidermal peeling, bladskivor eller lossnade blad på bakteriell suspension, och sedan observeras klyvöppningar under ett mikroskop följt av manuell mätning av klyvöppningen. Dessa analyser är dock besvärliga och kanske inte återspeglar klyvöppningarnas reaktioner på naturlig bakterieinvasion i ett blad som är fäst vid växten. Nyligen utvecklades en bärbar bildenhet som kan observera klyvöppningar genom att nypa ett blad utan att lossa det från växten, tillsammans med en djupinlärningsbaserad bildanalyspipeline som är utformad för att automatiskt mäta klyvöppningar från bladbilder som fångats av enheten. Här, med utgångspunkt i dessa tekniska framsteg, introduceras en ny metod för att bedöma klyvöppningarnas svar på bakterieinvasion i Arabidopsis thaliana . Denna metod består av tre enkla steg: sprayinokulering av Pto som efterliknar naturliga infektionsprocesser, direkt observation av klyvöppningar på ett blad av den PTO-inokulerade växten med hjälp av den bärbara avbildningsenheten och automatiserad mätning av klyvöppningar med hjälp av bildanalyspipelinen. Denna metod användes framgångsrikt för att demonstrera klyvöppningar och återöppning under PTO-invasion under förhållanden som nära efterliknar den naturliga interaktionen mellan växter och bakterier.
Klyvöppningar är mikroskopiska porer omgivna av ett par skyddsceller på ytan av blad och andra luftiga delar av växter. I ständigt föränderliga miljöer är reglering av klyvöppningarna central för att växter ska kunna kontrollera det koldioxidupptag som krävs för fotosyntesen på bekostnad av vattenförlust via transpiration. Kvantifiering av klyvöppningen har därför varit avgörande för att förstå växternas miljöanpassning. Att kvantifiera klyvöppningen är dock i sig tidskrävande och besvärligt eftersom det kräver mänskligt arbete för att upptäcka och mäta klyvöppningarnas porer i en bladbild som fångats av ett mikroskop. För att kringgå dessa begränsningar har olika metoder utvecklats för att underlätta kvantifieringen av klyvöppningar i Arabidopsis thaliana, en modellväxt som i stor utsträckning används för att studera klyvöppningarnas biologi 1,2,3,4,5,6. Till exempel kan en porometer användas för att mäta transpirationshastigheten som ett mått på klyvöppningarnas konduktans. Denna metod ger dock ingen direkt information om klyvöppningarnas antal och bländare som bestämmer klyvöppningarnas konduktans. Vissa studier har använt konfokalmikroskopitekniker som belyser klyvöppningar med hjälp av en fluorescerande aktinmarkör, ett fluorescerande färgämne eller cellväggsautofluorescens 1,2,3,4,5. Även om dessa metoder underlättar detektion av klyvöppningar, kan kostnaden för att både driva en konfokalmikroskopianläggning och förbereda mikroskopiprover vara ett hinder för rutinmässig tillämpning. I ett banbrytande arbete av Sai et al. utvecklades en modell för djupa neurala nätverk för att automatiskt mäta klyvöppningar från ljusfältsmikroskopiska bilder av A. thaliana epidermal peeling6. Ändå befriar denna innovation inte forskare från uppgiften att förbereda en epidermal peeling för mikroskopisk observation. Nyligen övervanns detta hinder genom att utveckla en bärbar bildenhet som kan observera klyvöppningar genom att nypa ett blad av A. thaliana, tillsammans med en djupinlärningsbaserad bildanalyspipeline som automatiskt mäter klyvöppningar från bladbilder som tagits av enheten7.
Klyvöppningar bidrar till växtens medfödda immunitet mot bakteriella patogener. Nyckeln till detta immunsvar är klyvöppningar som begränsar bakteriens inträde genom den mikroskopiska poren in i bladets inre, där bakteriella patogener förökar sig och orsakar sjukdomar8. Klyvöppningar induceras vid igenkänning av mikrobassocierade molekylära mönster (MAMP), immunogena molekyler som ofta är gemensamma för en klass av mikrober, av plasmamembranlokaliserade mönsterigenkänningsreceptorer (PRR)9. En epitop med 22 aminosyror av bakterieflagellin som kallas flg22 är en typisk MAMP som inducerar klyvöppningar genom att den känns igen av PRR FLS210. Som en motåtgärd, bakteriella patogener som Pseudomonas syringae pv. tomat DC3000 (PTO) och Xanthomonas campestris pv. Vesitoria har utvecklat virulensmekanismer för att öppna klyvöppningar 9,11,12. Dessa klyvöppningar mot bakteriella patogener har konventionellt analyserats i analyser där antingen bladepidermal peeling, bladskivor eller lossnade blad flyter på bakteriell suspension, och sedan observeras klyvöppningar under ett mikroskop följt av manuell mätning av klyvöppningen. Dessa analyser är dock besvärliga och kanske inte återspeglar klyvöppningar på naturlig bakterieinvasion som uppstår i ett blad som är fäst vid växten.
Här presenteras en enkel metod för att undersöka klyvöppningar och återöppningar under PTO-invasion under förhållanden som nära efterliknar den naturliga interaktionen mellan växter och bakterier. Denna metod utnyttjar den bärbara avbildningsenheten för direkt observation av A. thaliana klyvöppningar på ett blad som är fäst vid växten inokulerad med PTO, tillsammans med bildanalyspipelinen för automatiserad mätning av klyvöppningar.
Tidigare studier använde epidermal peeling, bladskivor eller lossnade blad för att undersöka klyvöppningarnas svar på bakterieinvasioner 9,11,12. Däremot utnyttjar den metod som föreslås i denna studie den bärbara klyvöppningen för att direkt observera klyvöppningar på ett blad som är fäst vid växten efter sprayinokulering av PTO, vilket efterliknar naturliga förhållanden för bakterieinvasion. Dessuto…
The authors have nothing to disclose.
Vi tackar alla medlemmar i forskningsprojektet “Co-creation of plant adaptive traits via assembly of plant-microbe holobiont” för givande diskussioner. Detta arbete stöddes av Grant-in-Aid for Transformative Research Areas (21H05151 och 21H05149 till A.M. och 21H05152 till Y.T.) och Grant-in-Aid for Challenging Exploratory Research (22K19178 till A.M.).
Agar | Nakarai tesque | 01028-85 | |
Airbrush kits | ANEST IWATA | MX2900 | Accessory kits for SPRINT JET |
Biotron | Nippon Medical & Chemical Instruments | LPH-411S | Plant Growth Chamber with white fluorescent light |
Glycerol | Wako | 072-00626 | |
Half tray | Sakata | 72000113 | A set of tray and lid |
Hyponex | Hyponex | No catalogue number available | Dilute the solution of Hyponex at a ratio of 1:2000 in deionized water for watering plants |
Image J | Natinal Institute of Health | Download at https://imagej.nih.gov/ij/download.html | Used for manual measurement of stomatal aperture |
K2HPO4 | Wako | 164-04295 | |
KCl | Wako | 163-03545 | |
KOH | Wako | 168-21815 | For MES-KOH |
MES | Wako | 343-01621 | For MES-KOH |
Portable stomatal imaging device | Phytometrics | Order at https://www.phytometrics.jp/ | Takagi et al.(2023) doi: 10.1093/pcp/pcad018. |
Rifampicin | Wako | 185-01003 | Dissolve in DMSO |
Silwet-L77 | Bio medical science | BMS-SL7755 | silicone surfactant used in spray inoculation |
SPRINT JET | ANEST IWATA | IS-800 | Airbrush used for spray inoculation |
SuperMix A | Sakata seed | 72000083 | Mix with Vermiculite G20 in equal proportions for preparing soil |
Tryptone | Nakarai tesque | 35640-95 | |
Vermiculite G20 | Nittai | No catalogue number available | Mix with Super Mix A in equal proportions for preparing soil |
White fluorescent light | NEC | FHF32EX-N-HX-S | Used for Biotron |